薛海燕,秦婧,宋宏新,韓芳,潘潔
(陜西科技大學(xué) 生命科學(xué)與工程學(xué)院,西安 710021)
牛乳κ-酪蛋白(κ-CN)占總酪蛋白的13%,僅由169個(gè)氨基酸組成[1],主要分布在在酪蛋白膠束外部,起穩(wěn)定膠束作用[2],是牛乳保持乳濁液狀態(tài)的重要因子。它還是凝乳酶的特異性底物,所以乳中κ-CN的質(zhì)量濃度會(huì)影響凝乳時(shí)間和強(qiáng)度,同時(shí)乳中κ-酪蛋白質(zhì)量濃度較少受季節(jié)、飼料等的影響[3-4],相對比較穩(wěn)定,因此定量檢測κ-酪蛋白質(zhì)量濃度對牛乳原料及乳酪生產(chǎn)質(zhì)量控制等乳品加工過程具有重要意義。κ-CN抗原專一性較強(qiáng),熱處理對其抗原性影響較小,因此可用免疫學(xué)技術(shù)進(jìn)行特異性檢測。雞IgY屬IgG類抗體,是卵黃中唯一的Ig[5-6],具有不與補(bǔ)體結(jié)合,易對保守抗原產(chǎn)生應(yīng)答,收集方便,產(chǎn)量大等特點(diǎn),在免疫檢測方面應(yīng)用前景廣闊[7-9]。本研究針對牛乳κ-酪蛋白制備了IgG與IgY兩種抗體,將經(jīng)免疫吸收后的抗體用于間接ELISA檢測κ-CN,實(shí)現(xiàn)了κ-CN的定量檢測,為牛乳原料及產(chǎn)品控制提供技術(shù)支持。
實(shí)驗(yàn)動(dòng)物:新西蘭大白兔3只,雄性,17~18周齡,2~3 kg/只,無前期病史。免疫用雞為3個(gè)月臨產(chǎn)蛋母雞(狀態(tài)良好,生長整齊,重約1.2 kg,前期無病史)。
牛乳κ-酪蛋白(κ-CN)標(biāo)準(zhǔn)品,弗式完全佐劑及不完全佐劑,標(biāo)準(zhǔn)兔IgG,標(biāo)準(zhǔn)雞IgY,HRP酶聯(lián)羊抗兔IgG及HRP酶聯(lián)兔抗雞IgG,其他試劑均為優(yōu)級純或分析純。
儀器:Multiskan MK3酶標(biāo)儀,?KTA purifier 10快速純化系統(tǒng),HiTrapTM IgY Purification HP(柱體積5 mL),親和色譜HiTrap rProtein A FF(柱體積1 mL),96孔酶標(biāo)板孔,混合纖維素酯微孔濾膜 (0.45 μm,Φ50 mm)。
1.2.1 抗牛κ-CN特異性IgG和IgY的制備
抗牛κ-CN特異性兔血清抗體IgG參照文獻(xiàn)[10],標(biāo)準(zhǔn)κ-CN加等體積完全弗氏佐劑乳化,免疫新西蘭大白兔3只,每間隔12天加強(qiáng)免疫1次,加強(qiáng)免疫時(shí),κ-CN與等體積不完全弗氏佐劑乳化,共加強(qiáng)3次,檢測血清效價(jià),最終ELISA效價(jià)達(dá)到1:10 000,采血收集分離血清。采用硫酸銨分級沉淀及蛋白A親和色譜柱進(jìn)一步純化,獲得anti-κ-CN-IgG,冷凍干燥備用??古&?CN特異性卵黃抗體IgY制備,免疫方法與IgG制備方法類似,純化方法參照文獻(xiàn)[11],采用水稀釋-凍融-微濾-超濾-硫酸銨鹽析-IgY親和色譜的方法進(jìn)行,獲得anti-κ-CN-IgY,冷凍干燥備用。
1.2.2 兩種anti--κ-CN抗體的交叉反應(yīng)性
通過間接ELISA法分別檢測兩種抗體與乳中常見成分的交叉反應(yīng)性,分別用κ-CN、β-酪蛋白、α-乳白蛋白(α-LA)和乳清粉作抗原包被酶標(biāo)板,加入待測IgG或IgY (或免疫吸收后抗體),HRP酶聯(lián)羊抗兔IgG或HRP酶聯(lián)兔抗雞IgG為二抗,設(shè)置陰性對照包括空白孔和陰性血清(卵黃)孔,間接ELISA法測定A450nm值,分析各蛋白與所制備的anti-κ-CN抗體交叉反應(yīng)性的強(qiáng)弱。
1.2.3 兩種anti--κ-CN抗體的免疫吸收
為提高檢測的特異性,抗體在用于定量檢測前進(jìn)行抗體免疫吸收,步驟如下:①用PBST將anti-κ-CN-IgG及anti-κ-CN-IgY稀釋至質(zhì)量濃度為1 g/L;②牛乳β-酪蛋白 (β-CN質(zhì)量濃度為1 g/L)、α-乳白蛋白(α-LA質(zhì)量濃度為1 g/L)及乳清粉(質(zhì)量濃度10 g/L)等體積混合后,再與步驟①所得液體等體積混合,37℃孵育2 h后,4℃過夜放置,得到修飾的抗體(blocked anti-β-CN-IgG)。由于ELISA檢測中有較多的的洗滌步驟,形成的免疫復(fù)合為不必去除,直接用于定量檢測中。比較吸收前后IgG與IgY抗體特異性。
1.2.4 牛乳κ-酪蛋白間接ELISA檢測標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立
參見文獻(xiàn)[12],分別用包被稀釋液(濃度為0.05 mol/L,pH值為9.6碳酸鹽緩沖液)將標(biāo)準(zhǔn)κ-CN梯度稀釋(質(zhì)量濃度50~1.5625 mg/L)包被酶標(biāo)板,采用棋盤滴定法,間接ELISA測試確定最佳檢測條件后,建立標(biāo)準(zhǔn)曲線。檢測樣品時(shí),用樣品稀釋替代標(biāo)準(zhǔn)κ-CN。
根據(jù)A450 nm值,以IgG和IgY為檢測抗體時(shí),κ-CN最佳抗原包被質(zhì)量濃度分別為6.25 μg/mL和25 μg/mL。抗體起始質(zhì)量濃度為1g/L時(shí),免疫吸收后的anti-κ-CN-IgG及anti-κ-CN-IgY工作質(zhì)量濃度均分別為1:20和1:10。
2.1.1 兩種抗體純化結(jié)果的SDS-PAGE分析
經(jīng)不同方法分離,最后經(jīng)不同親和色譜柱純化后anti-κ-CN IgG及IgY用8%的分離膠進(jìn)行SDS-PAGE(不加β-巰基乙醇)電泳圖譜如圖1所示。圖1中,分別以標(biāo)準(zhǔn)兔IgG和雞IgG為對照品,采用凝膠成像儀分析可見經(jīng)親和色譜純化的IgG與IgY電泳純度可達(dá)90%。IgG (起始質(zhì)量濃度1 g/L)的ELISA效價(jià)在1:5120,IgY效價(jià)1:12800,可用于免疫檢測。
圖1 IgY與IgG分離純化效果電泳圖譜
2.1.2 兩種抗體的特異性與免疫吸收效果
抗體用于檢測不僅要求蛋白純度高,更重要的不與乳樣品中其他成分發(fā)生交叉反應(yīng),即具有較高的特異性。檢測兩種抗體對κ-CN的特異性,并比較免疫吸收前后兩者特異性的變化。由圖2a和圖2b可知,antiκ-CN-IgG抗體在未封閉前雖與κ-CN結(jié)合性較強(qiáng),遠(yuǎn)大于與β-CN、α-LA和乳清粉的結(jié)合能力,與乳清粉的交叉反應(yīng)性最強(qiáng),可能因?yàn)棣?酪蛋白分子較小不易沉淀,在乳清粉中存在微量小分子片段的緣故。未免疫吸收前,兩種抗體與其他三種非特異性抗原反應(yīng)后的A450nm值較高,大于陰性對照吸收值的2.1倍,在檢測中易出現(xiàn)假陽性現(xiàn)象。Anti-κ-CN-IgG抗體經(jīng)免疫吸收后,與乳清粉交叉反應(yīng)A450nm值從0.6左右降至0.3以下,而β-CN和α-LA的A450nm吸收值與陰性對照更為接近,大大提高了與κ-酪蛋白反應(yīng)的特異性。由圖2c和2d可知,anti-κ-CN-IgY抗體經(jīng)免疫吸收后,對κ-CN的特異性也大大增強(qiáng),減低了非特異性反應(yīng),可用于乳中κ-CN的檢測。
2.2.1 κ-CN檢測的標(biāo)準(zhǔn)曲線
將標(biāo)準(zhǔn)κ-酪蛋白(質(zhì)量濃度25 mg/L)按2n稀釋包被酶標(biāo)板并封閉,分別采用免疫吸收后的IgG和IgY進(jìn)行間接ELISA檢測。結(jié)果如圖3所示。用anti-κ-CNIgG建立的間接ELISA法,當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)κ-CN質(zhì)量濃度在0.098~3.125 mg/L時(shí),A450 nm值與κ-CN的質(zhì)量濃度具有較好線性相關(guān)性,線性系數(shù)R2為0.9992;用antiκ-CN-IgY建立的間接ELISA法,當(dāng)標(biāo)準(zhǔn)κ-CN質(zhì)量濃度在0.098~6.25 mg/L時(shí),A450 nm值與κ-CN的質(zhì)量濃度成良好的線性關(guān)系,線性系數(shù)R2為0.9987。
圖2 IgG和IgY抗體的交叉反應(yīng)及抗體封閉效果
2.2.2 κ-CN檢測方法的穩(wěn)定性
按間接ELISA操作程序重復(fù)檢測同濃度梯度κ-酪蛋白,用工作曲線計(jì)算κ-酪蛋白值,比較驗(yàn)檢結(jié)果的重復(fù)性,IgG及IgY所建立標(biāo)準(zhǔn)曲線測量結(jié)果分別如表1和2所示。
圖3 κ-酪蛋白間接ELISA標(biāo)準(zhǔn)曲線
由表1可以看出,應(yīng)用anti-κ-CN-IgG建立間接ELISA法板內(nèi)檢測的A450 nm值的變異系數(shù)小于1%,回收率在99.10%~101.1%之間;由表2可以看出,應(yīng)用anti-κ-CN-IgY建立間接ELISA法板內(nèi)檢測的A450 nm值的變異系數(shù)小于2%,回收率在98%~100.8%之間,說明兩種κ-CN抗體建立的間接法板內(nèi)檢測都有較好重復(fù)性,系統(tǒng)穩(wěn)定。免疫吸收后的anti-κ-CNIgY建立的間接ELISA法具有相似的重復(fù)性和穩(wěn)定性,可替代IgG用于乳品中κ-CN蛋白的檢測。所建立的方法能夠用于κ-CN定量,為以κ-CN為目標(biāo)的蛋白質(zhì)檢測及乳品的的質(zhì)量檢測提供快捷手段。
2.2.3 牛乳樣品三聚氰胺摻假檢測
以三聚氰胺為模擬摻假物將本方法用于牛乳摻假檢驗(yàn)中。 三聚氰胺按梯度0,5%,8%,10%,15%,20%,30%,40%摻入原料乳中作為待測樣品,建立間接ELISA試驗(yàn)。應(yīng)用IgG間接ELISA法檢測時(shí),當(dāng)三聚氰胺摻入量在0~20%的范圍時(shí),線性回歸方程為:y=-0.0013x+0.7218,R2=0.9993;應(yīng)用IgY間接ELISA法檢測時(shí),當(dāng)三聚氰胺摻入量在0~20%的范圍時(shí),其呈線性回歸方程為:y=-0.0031x+0.698, R2=0.9946。
用兩種抗體建立的間接ELISA法檢測牛乳樣品結(jié)果如表3所示。由表3可以看出,相對誤差分別在-0.9%~1.3%和-4.0%~2.7%范圍內(nèi),變異系數(shù)均小于5%;建立的各ELISA體系測定牛乳蛋白含量的準(zhǔn)確性及精密性均符合要求,可實(shí)現(xiàn)對牛乳含量的定性定量檢測。IgG抗體與IgY抗體建立間接ELISA法相比,在用于牛乳樣品檢測中,相對誤差較小,變異系數(shù)及回收率指標(biāo)均表明該系統(tǒng)穩(wěn)定性更好。
通過免疫動(dòng)物所制備的anti-κ-CN-IgG和anti-κ-CN-IgY抗體對牛乳κ-CN有一定特異性,但兩者均與牛乳β-CN、α-LA和乳清粉有交叉反應(yīng)性,通過免疫吸收能成功封閉其中交叉反應(yīng)成分,提高反應(yīng)特異性,且免疫吸收后的抗體用于ELISA檢測無須去除產(chǎn)生的免疫復(fù)合物,操作簡便。利用吸收后抗體建立以κ-CN為目標(biāo)蛋白檢測牛乳蛋白的定量間接ELISA方法,IgG和IgY分別在κ-CN質(zhì)量濃度 0.098~3.125 mg/L和0.098~6.25 mg/L范圍內(nèi)有良好線性關(guān)系,建立的定量間接法板內(nèi)檢測樣品變異系數(shù)小,有較好重復(fù)性,系統(tǒng)穩(wěn)定。IgY可作為IgG的檢測替代抗體。所建立的定量間接ELISA方法可用于κ-CN快速檢測與乳品質(zhì)量及摻假檢測控制中。
表1 基于IgG的κ-CN間接ELISA檢測重復(fù)性
表2 基于IgY的κ-CN間接ELISA檢測重復(fù)性
表3 牛乳三聚氰胺摻假樣品蛋白含量檢測
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