曹 曦 楊芳遠 史婷婷 謝榮榮 信 中 楊金奎*
(1.首都醫(yī)科大學(xué)附屬北京同仁醫(yī)院內(nèi)分泌科,北京100730;2.糖尿病防治研究北京市重點實驗室,北京100730)
腎素-血管緊張素系統(tǒng)(rennin-angiotensin system,RAS)已被證實參與并促進胰島素抵抗的發(fā)展[1-3]。血管緊張素轉(zhuǎn)換酶2(angiotensin-converting enzyme 2,ACE2)-血管緊張素(1-7)〔Ang-(1-7)〕-Ang-(1-7)受體(MAS)軸作為RAS的一個負調(diào)節(jié)軸,可能對2型糖尿病的發(fā)展起到一定的保護作用[3-4]。肝臟是胰島素抵抗發(fā)展過程中的主要器官之一,已經(jīng)證實ACE2在肝臟中表達[5]。本文將在細胞水平進一步研究ACE2/Ang-(1-7)對HepG2細胞糖代謝的影響。
HepG2細胞購自中國協(xié)和醫(yī)科大學(xué)細胞資源中心(Cell Resource Center,IBMS,CAMS/PUMC),用含10%胎牛血清(FBS)的DMEM進行體外培養(yǎng)(100 U/mL青霉素和0.1 mg/mL鏈霉素),接種并置37℃、5%CO2飽和濕度的CO2孵箱內(nèi)培養(yǎng),每2 d胰酶消化傳代。
大鼠ACE2基因構(gòu)建到pcDNA3.1/myc-His(-)B(PCDB)(Sino-Geno Max,China)載體上。質(zhì)粒DNA采用Lipofectamine TM 2000(Invitrogen公司,美國)脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染法,根據(jù)轉(zhuǎn)染試劑盒操作說明轉(zhuǎn)染HepG2細胞。以pcDNA3.1空載體轉(zhuǎn)染HepG2細胞作為對照組。細胞轉(zhuǎn)染48 h后用于后續(xù)實驗。
應(yīng)用Trizol法抽提HepG2細胞總RNA(Invitrogen公司,美國),以2 mg RNA為模板利用Rever TraAceq PCR RT試劑盒(Toyobo公司,日本)反轉(zhuǎn)出cDNA。利用ABI GeneAmp 5700PCR系統(tǒng)(Applied Biosystems公司,美國),SYBR Green PCR master mix反應(yīng)液檢測RNA的表達。經(jīng)分析系統(tǒng)進行相關(guān)表達的定量。引物序列如下表:
表1 RT-PCR引物Tab.1 Primers for RT-PCR
HepG2 細胞用 H2O2(250 μmol/L)刺激 5 min,之后用 Ang-(1-7)(10 nmol/L)或 A779(1 μmol/L)處理1 h。二氫乙啶(Dihydroethidium,DHE)檢測:培養(yǎng)的細胞用5 μmol/L DHE(Sigma公司,美國)在37℃黑暗中孵育40 min,磷酸緩沖鹽溶液(Phosphate Buffered Saline,PBS)洗滌2次,用胰蛋白酶消化,并懸浮在1 mL PBS,立即用流式細胞儀(Biosciences公司,美國)讀取熒光強度,激發(fā)光為500 nm,發(fā)射光為530 nm。
在4℃條件下,加入裂解液提取HepG2細胞蛋白。用BCA Protein Assay Kit測定樣品蛋白濃度。每個樣本取30~60 μg蛋白進行SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳并轉(zhuǎn)至聚偏二氟乙烯膜(polyvinylidene fluoride,PVDF)上,用含5%(質(zhì)量分數(shù))脫脂奶粉的TBST溶液封閉4 h,加入一抗于4℃孵育過夜。TBST漂洗2次,每次5 min,加入1∶5 000辣根過氧化物酶標記的二抗,室溫孵育1 h,TBST漂洗6次,每次5 min,肌動蛋白(actin)為內(nèi)參,將膜用化學(xué)發(fā)光試劑孵育1 min,于X膠片上曝光,常規(guī)顯影、定影。將結(jié)果用Gelpro3.2軟件進行密度分析。P67phox、p22phox購自美國Santa Cruz公司。
運用Prism5(GraphPad Software)進行統(tǒng)計分析。計量資料用均數(shù)±標準差(±s)表示,組間比較使用t檢驗或方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
RT-PCR檢測ACE2過表達細胞中PEPCK和G6Pase mRNA的表達量。結(jié)果顯示,ACE2過表達細胞中PEPCK的表達水平與對照組相比顯著降低(P<0.01),而G6Pase與對照組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義,詳見圖1。
RT-PCR檢測過表達細胞中 Glut2、IRS-2、AMPKα2和 SOCS-3 mRNA的表達量。結(jié)果顯示,ACE2過表達細胞中Glut2、IRS-2和AMPKα2的表達水平與對照組相比顯著增高(P<0.01),而SOCS-3與對照組相比表達量顯著降低,詳見圖2。
圖1 ACE2對HepG2細胞糖異生基因表達的影響Fig.1 The effect of ACE2 on gluconeogenesis genes expression in HepG2 cells
用DHE檢測HepG2細胞內(nèi)ROS濃度,用Ang-(1-7)或A779預(yù)處理細胞1 h后,用流式細胞儀檢測發(fā)現(xiàn),Ang-(1-7)顯著降低HepG2細胞內(nèi)ROS的濃度,A779顯著增加HepG2細胞內(nèi)ROS的濃度。在H2O2處理下,Ang-(1-7)顯著降低HepG2細胞內(nèi)ROS的濃度,詳見圖3。
圖2 ACE2對HepG2細胞糖代謝相關(guān)基因表達的影響Fig.2 The effect of ACE2 on glucose metabolism gene expression in HepG2 cells
圖3 Ang-(1-7)降低HepG2細胞內(nèi)ROS濃度Fig.3 Ang-(1-7)reduces ROS production in HepG2 cells
進一步研究顯示,Ang-(1-7)能顯著降低HepG2細胞內(nèi)NADPH亞基p67和p22的表達。此外,Western blotting檢測結(jié)果也顯示,ACE2過表達,也能顯著降低HepG2細胞中p67和p22的表達,同時,ACE2對氧化應(yīng)激的保護作用能被A779抑制,詳見圖4。
肝臟胰島素抵抗被認為是2型糖尿病的主要原因之一[6]。研究[7-8]表明,血管緊張素Ⅱ(AngⅡ)在胰島素抵抗的發(fā)生過程中發(fā)揮著重要作用。ACE2將AngⅡ分解為Ang-(1-7),Ang-(1-7)通過其受體MAS抑制AngⅡ信號。MAS缺乏的FVB/N小鼠表現(xiàn)出糖耐量受損,降低胰島素抵抗[9],提示Ang(1-7)信號在2型糖尿病和代謝綜合征中的作用。ACE2在多種疾病中起到負調(diào)節(jié)RAS的作用[10]。Zucker肥胖糖尿病大鼠的胰島中ACE2蛋白表達升高[11],高糖誘導(dǎo)下ACE2基因敲除的小鼠胰島素抵抗加?。?2]。這些數(shù)據(jù)提示ACE2在預(yù)防胰島素抵抗中的作用。本研究支持了這一觀點,ACE2改善肝臟糖代謝相關(guān)基因的表達。
圖4 ACE2/Ang-(1-7)降低HepG2細胞中NADPH相關(guān)亞基的表達Fig.4 ACE2/Ang-(1-7)reduce NADPH expression in HepG2 cells
ROS可通過多個過程產(chǎn)生,如線粒體電子傳遞鏈、一氧化氮合酶、黃嘌呤氧化酶,以及NOX家族的NADPH 氧化酶[13]。最近的很多研究[14-16]都在關(guān)注NOX酶在胰島素抵抗中的作用。在骨骼肌細胞,血管緊張素Ⅱ誘導(dǎo)的NADPH氧化酶的活化損害胰島素信號[14-15]。ACE2-Ang-(1-7)-MAS 軸,作為 RAS 的一個負調(diào)節(jié)軸,可能通過抗氧化作用以減少胰島素抵抗[16]。本研究結(jié)果支持這一觀點,在HepG2細胞中,ACE2/Ang-(1-7)能通過抑制NADPH氧化酶的表達減低氧化應(yīng)激作用,對肝臟氧化應(yīng)激有保護作用。
在本研究中,筆者使用HepG2細胞作為模型細胞研究ACE2/Ang-(1-7)對肝臟胰島素抵抗的影響。眾所周知,AMPK是一個能量傳感器,它調(diào)控糖脂代謝[17]。AMPKα2 的 活 性 與 胰 島 素 抵 抗 相 關(guān)[18]。HepG2細胞已被證實通過AMPK調(diào)節(jié)胰島素信號通路和糖代謝相關(guān)基因的表達[19]。本研究結(jié)果支持這一觀點,ACE2誘導(dǎo) AMPKα2的表達,糖異生基因(PEPCE和G6Pase)表達受到抑制,而Glut-2和IRS-2等糖代謝相關(guān)基因表達量增加。
SOCS-3屬于SOCS蛋白家族,SOCS-3通過結(jié)合胰島素受體的磷酸化位點來競爭性干預(yù)其他含有SH2結(jié)構(gòu)域蛋白的相互結(jié)合[20]。此外,在肝臟中,誘導(dǎo)SOCS-3的表達是白介素-6介導(dǎo)的胰島素抵抗的重要機制之一[21]。綜合上述研究,筆者推測,ACE2/Ang-(1-7)抑制 SOCS-3的表達,進而 SOCS-3抑制IRS-2和AKT磷酸化的能力降低,從而能改善胰島素抵抗。這也可能是ACE2/Ang-(1-7)改善肝臟糖代謝的又一機制。
綜上所述,本研究結(jié)果表明,激活A(yù)CE2/Ang-(1-7)可調(diào)節(jié)肝臟糖代謝相關(guān)基因的表達,這些基因表達量的改變對肝臟胰島素抵抗有保護作用。而這一過程可能是通過減低氧化應(yīng)激水平,或是通過AMPKα2和SOCS-3的調(diào)控作用來實現(xiàn)的。本研究結(jié)果進一步明確了ACE2/Ang-(1-7)在肝臟糖代謝過程中的作用,并為ACE2/Ang-(1-7)在胰島素增敏機制中的作用提供了新的線索。
[1] Henriksen E J.Improvement of insulin sensitivity by antagonism of the renin-angiotensin system[J].Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol,2007,293(3):R974-R980.
[2] Perkins J M,Davis S N.The renin-angiotensin-aldosterone system:a pivotal role in insulin sensitivity and glycemic control[J].Curr Opin Endocrinol Diabetes Obes,2008,15(2):147-152.
[3] Santos S H,Giani J F,Burghi V,et al.Oral administration of angiotensin-(1-7)ameliorates type 2 diabetes in rats[J].J Mol Med(Berl),2014,92(3):255-265.
[4] Santos S H,Braga J F,Mario E G,et al.Improved lipid and glucose metabolism in transgenic rats with increased circulating angiotensin-(1-7)[J].Arterioscler Thromb Vasc Biol,2010,30(5):953-961.
[5] Paizis G,Tikellis C,Cooper M E,et al.Chronic liver inju-ry in rats and humans upregulates the novel enzyme angiotensin converting enzyme 2[J].Gut,2005,54(12):1790-1796.
[6] Taniguchi C M,Ueki K,Kahn R.Complementary roles of IRS-1 and IRS-2 in the hepatic regulation of metabolism[J].J Clin Invest,2005,115(3):718-727.
[7] Richey J M,Ader M,Moore D,et al.AngiotensinⅡ induces insulin resistance independent of changes in interstitial insulin[J].Am J Physiol,1999,277(5 Pt 1):E920-E926.
[8] 崔常清.胰島素抵抗的機制與臨床研究進展[J].中國煤炭工業(yè)醫(yī)學(xué)雜志,2012,(7):1119-1121.
[9] Santos S H,F(xiàn)ernandes L R,Mario E G,et al.Mas deficiency in FVB/N mice produces marked changes in lipid and glycemic metabolism[J].Diabetes,2008,57(2):340-347.
[10] Clarke N E,Turner A J.Angiotensin-converting enzyme 2:the first decade[J].Int J Hypertens,2012,2012:307315.
[11] Tikellis C,Wookey P J,Candido R,et al.Improved islet morphology after blockade of the renin-angiotensin system in the ZDF rat[J].Diabetes,2004,53(4):989-997.
[12] Takeda M,Yamamoto K,Takemura Y,et al.Loss of ACE2 exaggerates high-calorie diet-induced insulin resistance by reduction of GLUT4 in mice[J].Diabetes,2013,62(1):223-233.
[13] Bedard K,Krause K H.The NOX family of ROS-generating NADPH oxidases:physiology and pathophysiology[J].Physiol Rev,2007,87(1):245-313.
[14]Wei Y,Sowers J R,Nistala R,et al.AngiotensinⅡ-induced NADPH oxidase activation impairs insulin signaling in skeletal muscle cells[J].J Biol Chem,2006,281(46):35137-35146.
[15]臧莎莎,宋桉,宋光耀.骨骼肌胰島素抵抗影響因素研究[J].解放軍醫(yī)藥雜志,2013,(11):99-101.
[16] Yuan L,Li X,Li J,et al.Effects of renin-angiotensin system blockade on the islet morphology and function in rats with long-term high-fat diet[J].Acta Diabetol,2013,50(4):479-488.
[17] Hardie D G.The AMP-activated protein kinase pathway——new players upstream and downstream[J].J Cell Sci,2004,117(Pt 23):5479-5487.
[18] Long Y C,Zierath J R.AMP-activated protein kinase signaling in metabolic regulation[J].J Clin Invest,2006,116(7):1776-1783.
[19]Nakamaru K,Matsumoto K,Taguchi T,et al.AICAR,an activator of AMP-activated protein kinase,down-regulates the insulin receptor expression in HepG2 cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2005,328(2):449-454.
[20] Rui L,Yuan M,F(xiàn)rantz D,et al.SOCS-1 and SOCS-3 block insulin signaling by ubiquitin-mediated degradation of IRS1 and IRS2[J].J Biol Chem,2002,277(44):42394-42398.
[21] Senn J J,Klover P J,Nowak I A,et al.Suppressor of cytokine signaling-3(SOCS-3),a potential mediator of interleukin-6-dependent insulin resistance in hepatocytes[J].J Biol Chem,2003,278(16):13740-13746.