王友升,何欣萌,張 燕,陳玉娟
(北京工商大學食品學院食品質(zhì)量與安全北京實驗室北京市食品風味化學重點實驗室,北京 100048)
雖然化妝品產(chǎn)品設計時普遍采用防腐挑戰(zhàn)試驗,模擬生產(chǎn)、使用過程中受到高強度的微生物污染的潛在可能性,避免由微生物污染造成的損失[1],但不同類型、不同地區(qū)產(chǎn)品的污染菌及優(yōu)勢菌株并不完全相同。為了解特定產(chǎn)品中的主要腐敗微生物,有針對性地控制微生物污染,常需要從染菌的產(chǎn)品中分離腐敗微生物,并加以鑒定。編碼原核生物核糖體小亞基rRNA(16S rRNA)的基因包含10個可變區(qū)(variable region)和11個恒定區(qū)(constant region),大小約為1500 bp,所含信息量大且序列高度保守,可變區(qū)因細菌而異,能揭示生物物種特征核酸序列,是細菌種屬鑒定的分子基礎[2-3]。Biolog鑒定系統(tǒng)以四氮唑紫為指示劑,微生物利用或氧化碳源時四氮類染料從無色還原為紫色,從而在鑒定板上形成該微生物的特征代謝模式或指紋,常用于病原菌檢測鑒定等[4]。本研究對某化妝品公司提供的已腐敗變質(zhì)的膏霜樣品進行了微生物的分離純化,獲得了1株具有氯霉素抗性的革蘭陰性菌,并通過16S rRNA基因序列表分析和Biolog系統(tǒng)進行了鑒定。
1.1.1 菌種來源 菌種來自上海某化妝品公司提供的腐敗膏霜樣品。將污染樣品進行梯度稀釋鋪板,取單菌落劃線,分離到1株光滑、整齊的菌落,命名為213#。
1.2.1 菌落及菌體形態(tài)觀察 將分離菌同時在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基和孟加拉紅培養(yǎng)基(含氯霉素100 μg/mL)上劃線,分別于37和28℃培養(yǎng),24、48 h后觀察菌落生長情況及菌落形態(tài)。通過革蘭染色、顯微鏡檢觀察菌體形態(tài)。
1.2.2 基因組 DNA的提取和16S rRNA基因PCR擴增及序列測定 將213#菌株接種于LB液體培養(yǎng)基中,37℃、200 r/min振蕩培養(yǎng)12 h。過濾收集菌體,洗滌,CTAB/NaCl法提取基因組DNA作為PCR反應的模板。1%瓊脂糖凝膠電泳法檢測模板DNA的質(zhì)量。以細菌保守序列16S rRNA基因的通用引物,27f和1492r擴增細菌16S基因序列。其中27f:5'-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3'和1492r:5'-GGTTACCTTGTTACGACTT-3',50 μL 體系 PCR 擴增:模板 5 μL;10 × 擴增緩沖液 5 μL;dNTP(2.5 mmol/L)4 μL;引物 (10 μmol/L)各2 μL;Taq DNA 聚合酶 (2.5 U/μL)2 μL;DMSO 3 μL;無菌超純水補足總體積 50 μL。PCR反應程序:94℃預變性3 min,94℃變性1 min,61 ℃ 退火 1 min,72 ℃ 延伸 1 min,30 個循環(huán)。然后,72℃延伸10 min,使反應產(chǎn)物擴增充分。取5 μL PCR產(chǎn)物加1 μL 6×溴酚藍上樣緩沖液,在1.0%瓊脂糖凝膠上180 V電泳30 min進行檢測,EB染色后于紫外燈下觀察電泳條帶,送樣測序。
1.2.3 序列比對和系統(tǒng)發(fā)育樹的構建 PCR產(chǎn)物經(jīng)脫鹽純化后,由華大基因公司進行測序。將測序結果在GenBank數(shù)據(jù)庫中進行同源序列搜索。根據(jù)同源序列搜索結果,提取相關模式菌株的ITS區(qū)基因序列,與實驗菌株序列一起用Clustal X軟件進行匹配排列(align),用 MEGA3.1軟件按照相關參數(shù)和模型進行進化樹的構建。
1.2.4 碳源代謝指紋圖譜分析 待鑒定菌種用Biolog推薦的BUG培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h,用GN/GP-IF接種液配制菌懸液,調(diào)節(jié)T=52%,在GN2微孔板中每孔加150 μL菌懸液,保持一定濕度,30℃培養(yǎng)24 h后讀數(shù),獲得待鑒定菌的代謝指紋圖譜。
213#菌株在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基上,24 h即可看到明顯的菌落(圖1a),在含有100 μg/mL氯霉素的孟加拉紅培養(yǎng)基上培養(yǎng)48 h后,也出現(xiàn)明顯生長 (圖1b)。
使用 CTAB/NaCl法提取213#菌株的 DNA(圖2A)。以27f和1492r引物對16S rRNA基因保守序列進行擴增,獲得PCR擴增片段在1500 bp左右(圖2B)。
圖1 待鑒定菌株213#在營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基(a)和孟加拉紅培養(yǎng)基(b)的生長情況Fig.1 Growth of strain 213#cultured on Nutrient agar(a)and Rose bengal medium(100 μg/mL chloramphenicol)(b)for 24 h and 48 h,respectively
圖2 菌株213#的DNA基因組(A)和16S rRNA基因PCR擴增(B)結果Fig.2 Electrophoretogram of total DNA(A)and PCR product(B)of 16S rRNA gene of strain 213#
213#菌株的上述PCR產(chǎn)物測序結果經(jīng)Clustal X軟件和MEGA3.1軟件構建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖3)。結果表明,213#菌株與Burkholderia cenocepa-cia、Burkholderia cepacia、Burkholderia anthina(B.andropogonis)、Burkholderia vietnamiensis和 Burkholderi apyrrocinia的同源性均在98.0%以上,其中與Burkholderia cepacia(GQ248182)在同一分枝上,且通過Bootstraps的驗證表明它們具有較高的置信度,支持率可達100%。因此,可將分離菌株213#確定為洋蔥伯克霍爾德菌(Burkholderia cepacia)。
圖3 以16S rRNA基因序列為分子標記的細菌系統(tǒng)進化樹Fig.3 Analysis of bacteria phylogenetic tree based on 16S rRNA gene sequence
由表1可以看出,培養(yǎng)24 h后,菌株213#有最適碳源71種,不可利用碳源24種,無可利用碳源;Burkholderia cepacia有最適碳源76種,可利用碳源2種,不可利用碳源17種。二者對95種碳源的代謝指紋圖譜相近,其中利用情況一致的碳源可達75種,包括 D-果糖、L-海藻糖、蔗糖等64種最適碳源,α-環(huán)式糊精、α-D-乳糖、麥芽糖等11種不可利用碳源,表明213#與Burkholderia cepacia有較近的親緣關系。
表1 菌株213#與標準菌株Burkholderia cepacia的碳源代謝指紋圖譜Table 1 Carbon source metabolism analysis of strain 213#and the standard of Burkholderia cepacia
續(xù)表
據(jù)報道,洋蔥伯克霍爾德菌原為植物病原菌,因引起洋蔥球莖腐爛而得名,常存在于土壤、水和醫(yī)院環(huán)境中,在動、植物組織中有定殖能力[5]。此外,該菌也可污染醫(yī)院用水及器械,引起特殊人群的獲得性感染[6]。但目前未見自腐敗膏霜類化妝品中分離的報道。研究表明,B.cepacia外膜通透性差,阻礙親水性抗生素通過,此外B.cepacia可產(chǎn)生 β-內(nèi)酰胺酶[7],因而對大多數(shù)常用抗生素不敏感。有研究表明,洋蔥伯克霍爾德菌引起的感染耐藥程度較高[8],尤其是對氨基糖苷類抗菌藥物具有很高的耐藥性,對阿米卡星、慶大霉素和妥布霉素耐藥率均 >80.0%[9]。
據(jù)推測,B.cepacia可能通過以下途徑污染化妝品:①B.cepacia具有生物防治、生物降解和促進植物生長等多種功能[10],因此存在污染化妝品動植物性原料的潛在可能;②在生產(chǎn)環(huán)節(jié)中染菌,包括生產(chǎn)設備衛(wèi)生、操作人員自身衛(wèi)生等。
[1]施昌松,蔡曉真,張洪廣,等.化妝品中微生物與防腐體系的構建[J].日用化學品科學,2006,29(12):12-16.
[2]陳國忠,李文均,徐麗華,等.16S rRNA二級結構的研究進展及其在系統(tǒng)分類中的應用[J].微生物學雜志,2005,25(5):54-57.
[3]何亮,陳群,曾忠銘,等.通過特異PCR擴增和16S rDNA序列分析檢測動彎桿菌[J].微生物學報,2005,45(1):27-30.
[4]馮瑞華,樊蕙,李力,等.Biolog細菌自動鑒定系統(tǒng)應用初探[J].微生物學雜志,2000,20(2):36-38.
[5]Jones A M,Dodd M E,Webb A K.Burkholderia cepacia:current clinical issues,environmental controveresies and ethical dilemmas[J].Eur Respir J,2001,17(2):295-301.
[6]Bressler A M,Kaye K S,Lipuma J J,et al.Risk factors for Burkholderia cepacia complex bacteremia among intensie care unit patients without cystic fibrosis:a case-control study[J].Infect Control Hosp Epidemiol,2007,28(8):951.
[7]徐愛平,單偉國,胡慶豐.洋蔥伯克霍爾德菌對m內(nèi)酰胺類耐藥性分析[J].實驗與檢驗醫(yī)學,2008,26(3):249-250.
[8]金法祥,李水法,王紅華.80株臨床分離洋蔥伯克霍爾德菌的耐藥性分析[J].中華感染學雜志,2008,18(10):1475.
[9]劉成,孫寧.洋蔥伯克霍爾德菌感染33例臨床及藥敏分析[J].臨床內(nèi)科雜志,2004,21(3):208.
[10]Parke J L,Gurian·scherman D.Diversity of the Burkholderia cepacia complex and implications for risk assessment of biological control strains[J].Annual Review of Phytopathology,2001,39:225-258.