徐 滕,孫梅好,陳果果,倪逸琳,張 靜
(浙江師范大學(xué)化學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,浙江金華321004)
蛋白酶(Protease)又稱(chēng)蛋白水解酶[1]。自1905年10月 1日,Levene[2]發(fā)表了《The Cleavage Products of Proteoses》,至今,對(duì)蛋白酶的研究?jī)H僅經(jīng)過(guò)100多年,已有35萬(wàn)篇與蛋白酶相關(guān)的文獻(xiàn)。蛋白酶參與DNA遺傳信息的傳遞、血管生成、創(chuàng)傷修復(fù)、干細(xì)胞動(dòng)員、止血、凝血、炎癥反應(yīng)、免疫反應(yīng)、細(xì)胞自噬、衰老、壞死和細(xì)胞凋亡等生物過(guò)程[3-4]。許多蛋白酶已經(jīng)成為疾病預(yù)測(cè)及診斷的生物標(biāo)志,在藥物治療方面為我們提供了新的方向。
蛋白酶最初分為:內(nèi)肽酶切割蛋白質(zhì)內(nèi)部的肽鍵和外肽酶(氨肽酶和羧肽酶)切割其相應(yīng)的底物NH2和COOH末端[5]。根據(jù)其催化機(jī)理,蛋白酶又可以分為2類(lèi):一類(lèi)利用活化的水分子作為親核試劑攻擊底物中的肽鍵,催化底物反應(yīng),包含了天冬氨酸蛋白酶和金屬蛋白酶;另一類(lèi)蛋白酶是利用其活性位點(diǎn)的氨基酸殘基作為親核試劑,包括半胱氨酸、絲氨酸和蘇氨酸[6]。不同種類(lèi)的蛋白酶又可以根據(jù)其氨基酸序列以及蛋白三維結(jié)構(gòu)進(jìn)一步分為不同的蛋白酶家族。
其也被稱(chēng)為硫醇蛋白酶,是降解蛋白質(zhì)的酶。在一些水果中,半胱氨酸蛋白酶比較常見(jiàn),如木瓜、菠蘿、無(wú)花果和獼猴桃等。目前,已知幾十個(gè)不同植物科的膠乳含有半胱氨酸蛋白酶[7]。
半胱氨酸蛋白酶在生理和發(fā)育過(guò)程中發(fā)揮多方面的作用。在植物中,它們參與信號(hào)傳導(dǎo)、生物和非生物脅迫。在人類(lèi)中,它們參與細(xì)胞的衰老和凋亡、MHCII類(lèi)免疫應(yīng)答、激素原的加工和細(xì)胞外基質(zhì)重塑等。在炎癥疾?。ㄈ鐒?dòng)脈粥樣硬化)中,半胱氨酸蛋白酶可加速膠原蛋白和彈性蛋白的降解[8]。
絲氨酸蛋白酶(或絲氨酸內(nèi)肽酶)是裂解肽鍵的蛋白質(zhì)酶,其中,活性中心的親和氨基酸為絲氨酸[9-10]。它們是在真核生物和原核生物中普遍存在的酶。根據(jù)絲氨酸蛋白酶的結(jié)構(gòu)可以分為兩大類(lèi):胰凝乳蛋白酶類(lèi)和枯草桿菌蛋白酶類(lèi)[11]。在人類(lèi)中,它們參與各種生理過(guò)程,包括消化、免疫應(yīng)答、凝血和繁殖等。
捕食線(xiàn)蟲(chóng)性真菌分泌胞外蛋白酶固定線(xiàn)蟲(chóng)并降解其體壁,從而發(fā)揮殺線(xiàn)蟲(chóng)效應(yīng),絲氨酸蛋白酶便是其中之一[12]。
金屬蛋白酶是一類(lèi)催化反應(yīng)時(shí)需要金屬離子參與的蛋白酶,大多數(shù)金屬蛋白酶需要鋅離子參與,有一些蛋白酶需要鈷離子參與。EDTA能夠螯合二價(jià)陽(yáng)離子,抑制金屬蛋白酶的活性[13]。
天門(mén)冬氨酸蛋白酶催化蛋白降解時(shí)需要用天門(mén)冬氨酸殘基。在一般情況下,它們?cè)诨钚晕稽c(diǎn)有2個(gè)高度保守天門(mén)冬氨酸殘基,并且其在酸性pH值時(shí)具有最高活性。幾乎所有已知的天門(mén)冬氨酸蛋白酶都能被胃蛋白酶抑制劑所抑制。在脊椎動(dòng)物、真菌和逆轉(zhuǎn)錄病毒中,天門(mén)冬氨酸肽酶均已被鑒定[14]。
蘇氨酸蛋白酶活性中心具蘇氨酸殘基,此酶的原型是蛋白酶體的催化亞基。蘇氨酸蛋白酶使用其N(xiāo)-末端的蘇氨酸仲醇作為親核基團(tuán)進(jìn)行催化[15-16]。
在進(jìn)化的初始階段,蛋白酶有可能僅僅作為蛋白質(zhì)分解所必須的一種破壞性酶,并參與原始生物中氨基酸的生產(chǎn)。在很長(zhǎng)一段時(shí)期內(nèi),蛋白酶研究主要集中在其原始功能蛋白質(zhì)的分解[5]。然而,此類(lèi)酶除了具有這些非特異性降解的功能外,更能夠作為一種分子工具,催化高度特異性蛋白水解,產(chǎn)生新的蛋白質(zhì)產(chǎn)物,這些發(fā)現(xiàn)開(kāi)創(chuàng)了蛋白酶研究的一個(gè)新時(shí)代[17]。
蛋白水解酶具有多種生理功能,從宏觀的蛋白質(zhì)消化到微觀的調(diào)節(jié)過(guò)程。酶原的激活、血液凝固和纖維蛋白凝塊的裂解、蛋白激素前體和活性肽的釋放、跨膜蛋白的分泌等都需要蛋白酶的參與。另有研究表明,蛋白酶在植物的生長(zhǎng)、發(fā)育、死亡及其對(duì)周?chē)h(huán)境的適應(yīng)中也同樣具有重要的生物學(xué)功能。許多致病微生物的繁殖需要蛋白酶的參與,有些蛋白酶還作為微生物的毒力因子。
正是由于蛋白酶在細(xì)胞的各種行為、在生物的生存以及死亡中扮演著重要的角色。疾病能夠?qū)е碌鞍踪|(zhì)水解系統(tǒng)發(fā)生變化,如癌癥、神經(jīng)變性疾病、炎癥和心血管疾病等。許多蛋白酶已經(jīng)成為潛在的藥物靶點(diǎn)和疾病診斷以及預(yù)測(cè)的生物標(biāo)志。
蛋白酶制劑目前已在飼料生產(chǎn)加工中得到應(yīng)用。在家畜養(yǎng)殖過(guò)程中,部分蛋白飼料未能充分利用而直接被排出體外,其原因可能是由于其自身內(nèi)源酶分泌不足與飼料中含大量抗?fàn)I養(yǎng)因子,從而影響其蛋白質(zhì)等營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消化吸收[18]。在飼料中添加蛋白酶制劑能促進(jìn)畜禽對(duì)養(yǎng)分的消化、吸收,提高飼料的利用率,促進(jìn)生長(zhǎng)。蛋白酶制劑也可用于動(dòng)物生產(chǎn)中,對(duì)提高其生產(chǎn)性能起到很大的作用[19]。
蛋白酶也是生物技術(shù)研究的重要工具,在表達(dá)蛋白時(shí),有時(shí)需要與特定的親和性標(biāo)簽融合表達(dá)、純化目的蛋白,但標(biāo)簽可能會(huì)影響目的蛋白的活性,需要用蛋白酶去除標(biāo)簽。目前,在比較常用的蛋白酶中,3C蛋白酶在低溫下也具有良好的活性,使其應(yīng)用時(shí)更有前景[20-21]。
蛋白酶的生化分析類(lèi)型可分為2類(lèi):均相檢測(cè)和分離型檢測(cè)。在均相檢測(cè)中,無(wú)需進(jìn)行進(jìn)一步的加工,即可在反應(yīng)混合液中檢測(cè)到底物信號(hào)轉(zhuǎn)變;在分離型檢測(cè)中,酶反應(yīng)停止后反應(yīng)混合液中的產(chǎn)物以及殘余的底物需要經(jīng)過(guò)進(jìn)一步的分離定量來(lái)檢測(cè)反應(yīng)的進(jìn)行。
一般蛋白酶切反應(yīng)底物是易斷裂的酰胺鍵,底物可以是蛋白質(zhì)也可以是合成的多肽。圖1顯示,底物氨基酸在易斷裂的氨基端編號(hào)為P1,P2和P3等(稱(chēng)為P位點(diǎn)),最接近易斷裂位置的氨基酸殘基編號(hào)為P1。羧基端的命名與氨基端一致,該殘基被編號(hào)為 P1',P2',P3'等(稱(chēng)為 P'點(diǎn))。不同的蛋白酶其易斷裂酰胺鍵兩側(cè)的氨基酸數(shù)目不同:氨肽酶的底物在易斷裂酰胺鍵位點(diǎn)的氨基端只有1,2個(gè)氨基酸殘基;羧肽酶的易斷裂位點(diǎn)的羧基端也只有1,2個(gè)氨基酸殘基;但是在內(nèi)肽酶底物的易斷裂位點(diǎn)兩側(cè)有數(shù)個(gè)氨基酸殘基。
均相檢測(cè)無(wú)需將溶液中的產(chǎn)物和底物分離,它依賴(lài)于底物的物理性改變,通過(guò)熒光或發(fā)色基團(tuán)等報(bào)告基團(tuán)標(biāo)記,底物的物理性變化表現(xiàn)為熒光或者比色度的改變。
許多熒光標(biāo)記技術(shù)已被應(yīng)用于蛋白酶活性的檢測(cè)。目前,檢測(cè)蛋白酶活性應(yīng)用廣泛的有4種方法:化學(xué)淬滅染料、熒光能量共振轉(zhuǎn)移(FRET)、雙標(biāo)簽熒光淬滅、熒光偏振強(qiáng)度。
3.1.1 通過(guò)化學(xué)淬滅染料測(cè)定蛋白酶活性 熒光染料通過(guò)共價(jià)鍵連接到多肽羧基端作為蛋白酶活性的指示劑,蛋白酶識(shí)別多肽并與其形成復(fù)合物,切割底物的酰胺鍵。熒光染料連接到多肽的羧基端,熒光染料熒光淬滅,蛋白酶識(shí)別多肽序列進(jìn)行切割時(shí),熒光染料與多肽分離,熒光強(qiáng)度急劇上升(圖2)。在一定范圍內(nèi),被釋放熒光染料的強(qiáng)度與酶活性成線(xiàn)性關(guān)系。其中,最常用的熒光染料是香豆素衍生物和若丹明[22-23]。
氨基酸P'位點(diǎn)的C端需連接熒光基團(tuán),且需保持蛋白酶識(shí)別位點(diǎn)周?chē)被嵝蛄械耐暾浴L貏e是內(nèi)肽酶等需嚴(yán)格保持?jǐn)嗔盐稽c(diǎn)周?chē)蛄械耐暾?,?duì)底物修飾應(yīng)避免在P'位點(diǎn)相鄰的位置。
3.1.2 通過(guò)熒光能量共振轉(zhuǎn)移(FRET)測(cè)定蛋白酶活性 FRET(Fluorescence Resonance Energy Transfer)即熒光共振能量轉(zhuǎn)移:當(dāng)2個(gè)發(fā)射熒光的物質(zhì)距離比較接近時(shí),一個(gè)熒光分子能夠?qū)⒛芰哭D(zhuǎn)移到另外相近的一個(gè)熒光分子。基于以上要求,F(xiàn)RET被應(yīng)用到蛋白酶活性檢測(cè)中,此方法中,2種熒光基團(tuán)連接到多肽鏈的兩端,一個(gè)為供體,另一個(gè)為受體。供體的發(fā)射波長(zhǎng)與受體的激發(fā)波長(zhǎng)重疊,當(dāng)用激發(fā)光激發(fā)供體時(shí),供體發(fā)射出的熒光被受體接收并發(fā)射出特定波長(zhǎng)的熒光。選擇供體和受體位置時(shí),不能影響蛋白酶識(shí)別序列的完整性,并且它們之間距離足夠近,能產(chǎn)生FRET信號(hào)。隨著肽鏈的斷裂,熒光基團(tuán)相互分離,F(xiàn)RET信號(hào)減弱(圖3)。
3.1.3 通過(guò)雙標(biāo)簽熒光淬滅機(jī)理測(cè)定蛋白酶活性
在某些條件下需要檢測(cè)上升信號(hào),基于這種需求,雙標(biāo)簽熒光淬滅被應(yīng)用到檢測(cè)蛋白酶活性中[24]。供體熒光激發(fā)波譜與受體吸收波譜的最大波峰重疊,受體與供體距離足夠近,供體的發(fā)射光被重新吸收,導(dǎo)致熒光信號(hào)強(qiáng)度較低。蛋白酶將肽鏈斷裂,供體與受體分離,受體不能接受供體發(fā)射的熒光,導(dǎo)致觀察到的供體熒光強(qiáng)度增加。在這種情況下,供體僅作為呈現(xiàn)酶活性的報(bào)告基團(tuán),而受體僅僅作為供體的熒光淬滅劑(圖4)。
DeNEDDylases和DeSUMOlyases的酶活性應(yīng)用此種方法檢測(cè)[25-26]。DeNEDDylases和DeSUMOlyases通過(guò)切割NEDD8或者SUMO與被修飾蛋白之間的連接鍵,催化一些蛋白質(zhì)的去NEDD化修飾和去SUMO化修飾。
3.1.4 通過(guò)檢測(cè)熒光偏振(FP)強(qiáng)度測(cè)定蛋白酶活性 熒光偏振分析[27]有時(shí)也被稱(chēng)作消化熒光偏振法。蛋白質(zhì)或者多肽被標(biāo)記一個(gè)或多個(gè)熒光染料,底物體積將會(huì)變得較大,轉(zhuǎn)動(dòng)變慢,通常會(huì)表現(xiàn)出較大的偏振信號(hào)。蛋白酶切割底物時(shí),大型底物轉(zhuǎn)化為小的片段,小分子的轉(zhuǎn)動(dòng)速度快,測(cè)量的熒光偏振程度較低(圖5)。
FP分析可用于測(cè)定競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合試驗(yàn)。在這種情況下,所監(jiān)測(cè)的偏振信號(hào)來(lái)自于熒光標(biāo)記的多肽底物。當(dāng)多肽底物與較大蛋白質(zhì)相互作用而形成較大的復(fù)合子時(shí),而小分子競(jìng)爭(zhēng)物與蛋白質(zhì)結(jié)合阻止熒光標(biāo)記的多肽與蛋白質(zhì)結(jié)合,多肽則會(huì)保持較高的轉(zhuǎn)動(dòng)速度,呈現(xiàn)較低的熒光偏振信號(hào)。因此,當(dāng)FP信號(hào)下降時(shí),表明存在小分子能與標(biāo)記肽競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合蛋白酶的底物結(jié)合位點(diǎn)。
值得一提的是,F(xiàn)P測(cè)量的熒光偏振與非熒光偏振比值僅僅是在一定的濃度范圍內(nèi)準(zhǔn)確可靠,超過(guò)這一濃度范圍檢測(cè)敏感度會(huì)下降,從而限制該方法的應(yīng)用。
基于標(biāo)記肽的檢測(cè)方式為檢測(cè)蛋白酶活性提供了便利的條件,它不僅適合于大文庫(kù)的篩選,也能記錄酶活反應(yīng)的動(dòng)力學(xué)數(shù)據(jù)。動(dòng)力學(xué)數(shù)據(jù)則進(jìn)一步反映了復(fù)合物與靶點(diǎn)相互作用的具體信息(如抑制劑的時(shí)間依賴(lài)性,與靶點(diǎn)的解離常數(shù)等)。
然而,某些情況下底物不能被標(biāo)記,或者標(biāo)記的底物不能滿(mǎn)足測(cè)定要求,一種基于分離的檢測(cè)方法應(yīng)運(yùn)而生。將酶活反應(yīng)停止于預(yù)先確定的線(xiàn)性范圍內(nèi),底物的轉(zhuǎn)化量必須達(dá)到檢測(cè)的水平,將反應(yīng)混合液中的組分分開(kāi),分別測(cè)量。反應(yīng)液中的底物與產(chǎn)物通常通過(guò)高效液相色譜法等方法分離,然后通過(guò)柱層析或者質(zhì)譜檢測(cè),液相色譜和質(zhì)譜原理已經(jīng)很明確,且具有高通量檢測(cè)平臺(tái)。例如,一種多微型通道高效液相系統(tǒng)可以同時(shí)運(yùn)行多個(gè)微型柱,其適用于篩選較大復(fù)合物集合。此外,BIOCIUSLife Sciences已開(kāi)發(fā)RapidFireTM高通量質(zhì)譜系統(tǒng),其可以以每秒一個(gè)樣品的速度運(yùn)行[28-29]。均相檢測(cè)不適合檢測(cè)蛋白酶活性時(shí),可以采用該方法初步測(cè)定蛋白酶酶活。
近年來(lái),隨著技術(shù)的發(fā)展,多種新型的蛋白酶活性檢測(cè)方法得到應(yīng)用。其中一種是利用石墨烯氧化物作為新型平臺(tái)來(lái)檢測(cè)蛋白酶活性:利用其熒光淬滅特性以及結(jié)合多肽的能力,石墨烯氧化物與熒光標(biāo)記多肽分別作為FRET中的供體及受體。標(biāo)記的多肽結(jié)合到石墨烯氧化物基底上,而蛋白酶切割多肽使得熒光染料與石墨烯氧化物分離,促使熒光強(qiáng)度增強(qiáng)。
電化學(xué)方法也可以用來(lái)檢測(cè)蛋白酶活性,該方法是利用高聚陰離子或者陽(yáng)離子作為底物,具體為富含精氨酸的魚(yú)精蛋白和多硫酸戊聚糖(PPS,一種高度硫酸化多糖)的配合物。由于蛋白酶將精蛋白切割為較小的片段,產(chǎn)生游離的PPS,通過(guò)聚陰離子敏感膜電極檢測(cè)其電位變化。因此,游離的PPS產(chǎn)生速率與溶液中蛋白酶活性成正比[30]。這種方法可在10 min內(nèi)檢測(cè)蛋白酶活性,與之前檢測(cè)魚(yú)精蛋白消耗的方法[31-32]相比毫不遜色。
在過(guò)去的10 a中,已有許多蛋白酶活性檢測(cè)方法的報(bào)道,但其中大部分方法都是費(fèi)時(shí)的、不切實(shí)際的。因此,開(kāi)發(fā)簡(jiǎn)單、快速、靈敏、高通量的常規(guī)測(cè)定方法勢(shì)在必行。
[1]路英華.蛋白酶的研究進(jìn)展[J].生命科學(xué)信息,1991,8(2):8.
[2]Levene PA.Thecleavageproductsof proteoses[J].Journal of Biological Chemistry,1905,1(1):45-58.
[3]Hans Neurath,Kenneth A Walsh.Roleof proteolytic enzymesin biological regulation(areview)[J].Proceedingsof the National Academyof Sciences,1976,73(11):3825-3832.
[4]Michael Ehrmann,Tim Clausen.Proteolysis as a regulatory mechanism[J].Annu Rev Genet,2004,38(3):709-724.
[5] Carlos López-Otín,Judith S Bond.Proteases:multifunctional enzymes in life and disease[J].Journal of Biological Chemistry,2008,283(45):30433-30437.
[6] Katsuhisa Saeki,Katsuya Ozaki,Tohru Kobayashi.Detergent alkaline proteases:enzymatic properties,genes,and crystal structures[J].Journal of Bioscienceand Bioengineering,2007,103(6):501-508.
[7]Jerzy MBehnke.Developing novel anthelmintics from plant cysteine proteinases[J].Parasites&Vectors,2008,1(1):29.
[8]Harold A Chapman.Emerging roles for cysteine proteases in human biology[J].Annual Review of Physiology,1997,59(1):63-88.
[9] Lizbeth Hedstrom.Serine protease mechanism and specificity[J].Chemical Reviews,2002,102(12):4501-4524.
[10]Praveen K Madala,Joel DA Tyndall,Tessa Nall,et al.Update1 of:Proteases universally recognize beta strands in their active sites[J].Chemical Reviews,2011,110(6):1-31.
[11] Gábor Iván,Zoltán Szabadka,Rafael ?rd?g,et al.Four spatial pointsthat defineenzymefamilies[J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2009,383(4):417-420.
[12]王瑞,王軍,楊曉野.少孢節(jié)叢孢菌絲氨酸蛋白酶基因同源性分析[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2013,28(1):123-127.
[13] Noel Vinay Thomas,Se-Kwon Kim.Metalloproteinase inhibitors:statusand scopefrommarineorganisms[J].Biochemistry Research International,2010(2):184-190.
[14] Eric T Baldwin,T Narayana Bhat,Sergei Gulnik,et al.Crystal structuresof nativeand inhibited formsof human cathepsin D:implications for lysosomal targeting and drug design[J].Proceedings of the National Academy of Sciences,1993,90(14):6796-6800.
[15]James A Brannigan,Guy Dodson,Helen JDuggleby,et al.A protein catalytic framework with an N-terminal nucleophile is capable of self-activation[J].Nature,1995,78:644.
[16] Hua Cheng.DOM fold:A structure with crossing loops found in DmpA,ornithine acetyltransferase,and molybdenum cofactor bindingdomain[J].Protein Science,2005,14(7):1902-1910.
[17]劉玉德,曹雁平.生物蛋白肽的開(kāi)發(fā)研究展望 [J].食品科學(xué),2002,23(8):319-320.
[18]聞治國(guó).不同酶制劑水平對(duì)北京填鴨生長(zhǎng)性能、血漿生化指標(biāo)和肝臟組織學(xué)的影響[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2012,27(6):78-83.
[19]李林珂,高玉千,崔錦,等.一株蛋白酶產(chǎn)生菌的篩選及酶學(xué)性質(zhì)研究[J].河南農(nóng)業(yè)科學(xué),2006(3):50-52.
[20] Sreedevi Nallamsetty.Efficient site-specific processing of fusion proteinsby tobaccovein mottlingvirusproteasein vivoand in vitro[J].Protein Expression and Purification,2004,38(1):108-115.
[21]Cordingley M G,Pia L Callahan.Substrate requirements of human rhinovirus 3Cprotease for peptide cleavage in vitro[J].Journal of Biological Chemistry,1990,265(16):9062-9065.
[22] Kazuo Murakami,Tamiko Ohsawa.New fluorogenic substrates for renin[J].Analytical Biochemistry,1981,110(1):232-239.
[23] Zimmerman M,Ashe B,Yurewicz E C,et al.Sensitive assays for trypsin,elastase,and chymotrypsin using new fluorogenic substrates[J].Analytical Biochemistry,1977,78(1):47-51.
[24] Brian Y Feng,Anang Shelat,Thompson N Doman,et al.High-throughput assays for promiscuous inhibitors[J].Nature Chemical Biology,2005,1(3):146-148.
[25]Grzegorz Nalepa.Drug discovery in the ubiquitin-proteasome system[J].Nature Reviews Drug Discovery,2006,5(7):596-613.
[26]Lynn Bedford,James Lowe,Lawrence R Dick,et al.Ubiquitin-like protein conjugation and the ubiquitin-proteasome system as drug targets[J].Nature Reviews Drug Discovery,2011,10(1):29-46.
[27]朱廣華,鄭洪,鞠烷先.熒光偏振免疫分析技術(shù)的研究進(jìn)展[J].分析化學(xué),2004,32(1):102-106.
[28] Tom GHolt,Bernard K Choi,Neil SGeoghagen,et al.Label-free high-throughput screening via mass spectrometry:a single cystathionine quantitative method for multiple applications[J].Assay and Drug Development Technologies,2009,7(5):495-506.
[29] Can C ?zbal,William A LaMarr.High throughput screening via massspectrometry:acasestudy usingacetylcholinesterase[J].Assay and Drug Development Technologies,2004,2(4):373-382.
[30]Jaemyung Kim.Graphene oxide sheets at interfaces[J].Journal of the American Chemical Society,2010,132(23):8180-8186.
[31] Jong Hoon Yun,Mark E Meyerhoff.Protamine-sensitive polymer membrane electrode:characterization and bioanalytical applications[J].Analytical Biochemistry,1995,224(1):212-220.
[32] Ibrahim HA Badr,Narayanan Ramamurthy.Electrochemical assay of proteinase inhibitors usingpolycation-sensitive membraneelectrodedetection[J].Analytical Biochemistry,1997,250(1):74-81.