何 晨,王彥超,常耀光,薛長湖
(中國海洋大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,山東青島 266003)
作為禽蛋的生產(chǎn)大國,我國的雞蛋生產(chǎn)總量連續(xù)多年位居世界第一。2012年我國禽蛋產(chǎn)量達(dá)到2861萬t,占世界總產(chǎn)量的40%以上。盡管如此,我國市場上的蛋加工制品種類卻非常貧乏,絕大多數(shù)以帶殼鮮蛋的形式出售。僅有的幾種蛋加工產(chǎn)品也多是粗加工品(如蛋黃粉)。蛋黃富含多種營養(yǎng)物質(zhì),例如蛋白質(zhì)、脂肪、鐵、鈣、磷、鋅和其他維生素等。
隨著生活水平提高,人們對于從自然生物中提取具有生物活性分子,應(yīng)用于人類健康和食品貯藏的需求越來越強(qiáng)烈[1]。研究顯示,在所有的生物活性分子中,生物活性肽具有很大的潛力。天然蛋白中的肽往往沒有生物活性,只有在經(jīng)過蛋白酶水解后才具有了多種生物活性[2]。在眾多的生物活性肽中,磷酸肽因其具有非常鮮明的結(jié)構(gòu)和活性,而成為一類具有很高研究價值的生物大分子物質(zhì),高磷酸肽的主要功能基團(tuán)是磷酸肽絲氨酸殘基。而磷酸酞絲氨酸殘基可以與鈣離子有效結(jié)合,阻止不溶性的鈣磷酸鹽形成,從而提高生物價效[3]。
雖然目前國內(nèi)外對于從蛋黃中分離高磷蛋白及制備磷酸肽的研究已較多,但其制備方法得率相對較低,難以引入工業(yè)化的規(guī)模生產(chǎn),例如徐彩娜等人采用雙酶分步水解法的最高得率也僅為11.49%[4]。本文試圖通過優(yōu)化蛋黃粉的脫脂過程和酶解過程,獲得一種優(yōu)質(zhì)蛋黃磷酸肽的制備工藝。同時以商業(yè)化產(chǎn)品酪蛋白磷酸肽(CPP)為對照,對本實驗所得產(chǎn)物多肽的功能性質(zhì)和體外活性進(jìn)行探究。
蛋黃粉 購自威海大豐實業(yè)有限公司;酪蛋白磷酸肽(CPP) 購自北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;DPPH、Ferrozine試劑 購自 Sigma-Aldrich;Alcalase 2.4L 購自諾維信生物有限公司;95%乙醇、正己烷、氯仿、甲醇、濃硫酸、鉬酸鈉、硫酸聯(lián)銨、硫酸銅、硫酸鉀、氯化亞鐵、氯化鈣等 均為國產(chǎn)分析純。
SG-4050C型數(shù)顯電子恒溫水浴鍋 上海碩光電子科技有限公司;101型電熱鼓風(fēng)干燥箱 東莞市立佳精密儀器有限公司;BSAZ23S-CW型電子天平Sartorius;TDL-5-A型高速離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;3c starter通用型pH計 奧豪斯儀器上海有限公司;HJ-2型磁力攪拌器 常州國華電器有限公司。
1.2.1 蛋黃肽產(chǎn)品酶解工藝研究
1.2.1.1 工藝過程 蛋黃粉→脫脂→烘干→酶解→滅酶(100℃,10min)→離心取上清(5000r/min,10min)→噴霧干燥
1.2.1.2 脫脂 本文采用乙醇—正己烷脫脂:將蛋黃粉與95%乙醇按照(1/10,w/v)混合,室溫下攪拌提取30min,加入5倍體積的正己烷,室溫下攪拌提取6h,靜置 2h,抽濾,取濾渣,50℃烘干備用[5]。
1.2.1.2 酶解 粗蛋白按照(1/10,w/v)加蒸餾水,用一定濃度的氫氧化鈉調(diào)節(jié)pH至7,加入Alcalase 2.4L酶(E/S=4%),50℃恒溫水浴鍋中酶解5h。采用水解度(DH)值,即水解度,考察酶解過程中的蛋白質(zhì)的水解程度隨時間的變化情況。DH值的測定方法采用pH-Stat法[6]。測定方法如下:酶解的過程中,通過補(bǔ)加NaOH溶液,保持反應(yīng)體系的pH恒定為7。在特定的條件下,水解反應(yīng)的最終結(jié)果只與DH值有關(guān),而在一定條件下,DH值與補(bǔ)加的NaOH體積成正比,水解度的計算公式如式1所示。
本研究以酪蛋白酸鈉為乳化劑,通過pH循環(huán)法制備丁香酚微乳,再通過海藻酸鈉對丁香酚微乳進(jìn)行修飾??疾靸煞N微乳的粒徑分布、包封率、pH、離子、儲藏穩(wěn)定性及釋放特性。結(jié)果表明,海藻酸鈉修飾能提高丁香酚微乳平均粒徑,具有相當(dāng)丁香酚的包封率;海藻酸鈉修飾能夠顯著提高丁香酚微乳的pH穩(wěn)定性,且具有良好的離子和儲藏穩(wěn)定性;在環(huán)境pH為7.0條件下,海藻酸鈉修飾微乳的釋放速率稍高于丁香酚微乳。
式中:B為消耗NaOH體積;N為NaOH的摩爾濃度;α為平均解離度,0.44;m為被水解蛋白質(zhì)量;h為每克蛋白質(zhì)底物具有的肽鍵毫摩爾數(shù),6.850。
1.2.1.3 二次酶解 為了使粗蛋白酶解的更完全,本研究采用兩次酶解的方法。第一次酶解的酶渣烘干后重復(fù)第一次酶解的過程。將兩次酶解產(chǎn)物進(jìn)行混合,計算整個酶解過程的酶解得率。
1.2.2 蛋黃肽的基本性質(zhì)測定
1.2.2.1 基本成分測定 灰分:按照國標(biāo)GB/T 5009.4-2010 中的方法測定[7];蛋白質(zhì):采用國標(biāo)GB/T5009.5-2010 中的凱氏定氮法[8];磷元素:采用鉬藍(lán)比色法[9]。
1.2.2.2 蛋黃肽在不同pH下的溶解度 分別稱取粗蛋白和蛋黃肽,配成濃度為1%的懸浮液或溶液,用10%鹽酸和4%氫氧化鈉分別調(diào)pH至2~10,室溫下振搖10min,使其溶解。2000r/min離心5min取上清。用Folin-酚法[10]測定可溶性蛋白,計算溶解度,公式如式2:
1.2.2.3 蛋黃肽的熱穩(wěn)定性 分別稱取粗蛋白,蛋黃肽和CPP,配成濃度為1%的懸浮液或溶液,于100℃水浴鍋中加熱30min,測定加熱前后420nm波長下的吸光度值。以吸光度值的變化作為衡量溶液熱穩(wěn)定性的指標(biāo)。
1.2.3 蛋黃肽的體外活性實驗
1.2.3.2 DPPH自由基清除實驗 參考文獻(xiàn)[12],分別稱取一定量的粗蛋白,蛋黃肽和CPP,配制成濃度為1.0mg/mL的溶液。取該溶液200μL,加入甲醇600μL,0.15mmol/L 的 DPPH 溶液200μL,混勻2min,室溫條件下避光靜置,測定不同時間517nm波長處的吸光度值,同時做空白對照實驗,實驗過程同上。代入清除率計算式3,計算清除率:
1.2.3.3 金屬鐵離子螯合能力實驗 參考文獻(xiàn)[12],分別稱取一定量的粗蛋白,蛋黃肽和CPP,配制成濃度為1.0、2.0mg/mL的溶液。取該溶液200μL,加入2mmol/L 氯化亞鐵溶液10μL,超純水600μL,5mmol/L Ferrozine溶液 20μL,搖勻 2min,室溫下靜置 10min,測定562nm波長處的吸光度值。同時做空白對照和EDTA陽性對照實驗,實驗過程同上。
由圖1可以看出,兩次酶解的酶解曲線形狀基本相同。在2h內(nèi)水解率增長迅速,隨后3h內(nèi)繼續(xù)增長但速率明顯減緩。對比兩次酶解過程水解度的變化情況,說明第二次酶解過程中水解度依舊較高,尤其是在反應(yīng)初始的1h內(nèi),甚至超過第一次酶解過程的水解度。通過測定酶解后上清液中的固形物含量得出,第二次水解上清液的固形物含量為3.5%,與第一次水解上清液的3.9%幾乎相同,說明二次酶水解對提高產(chǎn)物的得率具有重要的貢獻(xiàn)。因此,從減低成本和充分利用資源的角度,本實驗優(yōu)化得蛋黃肽的制備工藝為:二次酶水解,水解時間3h。脫脂率為61.4%,酶解得率為41.0%。
2.2.1 樣品的灰分與蛋白質(zhì)含量 由表1可以看出,與粗蛋白相比,蛋黃肽的灰分含量有小幅增加,這是因為在酶解過程中為了使pH保持在最佳酶活范圍內(nèi),需要不斷添加堿造成的。雖然目前我國對以蛋黃為原料的多肽產(chǎn)品還沒有標(biāo)準(zhǔn)出臺,但是依據(jù)成分類似的大豆肽粉 GB/T22492-2008[13]中的規(guī)定,灰分在8%以內(nèi),符合標(biāo)準(zhǔn)。蛋黃肽的蛋白含量為86.20%,依照大豆肽粉 GB/T22492-2008[14]中的規(guī)定,粗蛋白含量在85%以上,屬于二級質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)。2.2.2 樣品的磷含量 由表2得出,盡管2.1表明第二次酶解與第一次酶解的水解度相差無幾,但是所得的蛋黃肽的磷含量卻有大幅的降低,大量的磷被留在了酶渣中。磷含量減少而氮含量未明顯降低意味著N/P(摩爾比)比值升高。有研究表明[15],N/P(摩爾比)越低,阻止磷酸鈣沉淀效果越好。因此,本實驗對兩次水解所得產(chǎn)物的體外活性進(jìn)行了測定。
圖1 酶解過程中水解度的變化曲線Fig.1 Changes of hydrolysis degree with a function of reaction time
表1 樣品的蛋白質(zhì)和灰分含量測定結(jié)果Table 1 Determination of protein and ash content in the samples
表2 樣品的磷含量測定結(jié)果Table 2 Determination of phosphorus content in the samples
2.2.3 溶解度 能否在寬的pH范圍內(nèi)都有較好的溶解能力是產(chǎn)品的重要性質(zhì)。由圖2可以看出,酶解后粗蛋白的溶解度有了較大程度的提高。對于粗蛋白,溶液pH在2~10范圍內(nèi),其溶解度分別處于5%~40%。對于蛋黃肽,溶液pH在2~10范圍內(nèi),其溶解度均高于40%。溶解度的增大歸因于,蛋白經(jīng)過水解后親水性的離子化氨基和羥基的暴露。相比較而言,酶解的蛋黃肽的溶解度隨pH的變化更為明顯。pH=4時,溶解度最低(50%),此pH環(huán)境接近蛋黃肽的等電點。隨著pH的升高,其溶解度最高可達(dá)到90%以上,推測在較低pH時小肽之間容易聚合或生成小聚合物[14]。
圖2 pH對溶解度的影響Fig.2 Changes of solubility with a function of pH
2.2.4 熱穩(wěn)定性 產(chǎn)品是否具有較好的熱穩(wěn)定性,關(guān)系到該產(chǎn)品在生產(chǎn)、加工、運(yùn)輸、貯藏過程中的多項技術(shù)指標(biāo)。由圖3得出,在25℃和100℃條件下,酶解后的蛋黃肽產(chǎn)品較粗蛋白的熱穩(wěn)定性均顯著增加(p<0.05)。100℃條件下,CPP與蛋黃肽產(chǎn)品的熱穩(wěn)定性差異不顯著。所以在該產(chǎn)品的加工過程中,可以進(jìn)行有效的滅菌處理,而不必?fù)?dān)心產(chǎn)品性質(zhì)的變化。
圖3 不同產(chǎn)品的穩(wěn)定性測定結(jié)果Fig.3 Thermal stability determination of different samples
2.3.1 阻止磷酸鈣沉淀的定性實驗 由圖4得出,空白組和添加粗蛋白組,NaOH滴定量在15min之內(nèi)迅速上升到8mL,歸因于Ca2+與 PO3+4形成Ca3(PO4)2沉淀,說明粗蛋白不能阻止磷酸鈣沉淀的發(fā)生。而添加CPP組和添加蛋黃肽組,NaOH滴定量的突變時間變成了10~30min。說明添加CPP和蛋黃肽可以有效延遲Ca3(PO4)2沉淀的發(fā)生。Ca3(PO4)2沉淀生成的時間越遲,說明該樣品的持鈣能力越強(qiáng)。當(dāng)添加蛋黃肽的濃度達(dá)到0.2g/L時,Ca3(PO4)2最終沉淀量僅為空白樣品的1/3。
2.3.2 抗氧化性研究 由圖5得出,蛋黃肽的DPPH自由基清除率顯著高于粗蛋白和CPP的DPPH自由基清除率。隨著反應(yīng)時間的延長,蛋黃肽和CPP的DPPH自由基清除率均不斷增加。CPP的最高清除率僅為7%,不足蛋黃肽清除率的一半,而粗蛋白幾乎沒有DPPH自由基清除能力。
圖4 不同樣品阻止磷酸鈣沉淀效果測定結(jié)果Fig.4 Determination of calcium phosphate precipitation with the addition of different samples
圖5 樣品的DPPH清除率測定結(jié)果Fig.5 Determination of DPPH-scavenging abilities of different samples
與Fe2+的螯合能力是一種有效的評價物質(zhì)抗氧化活性的方法[16]。Fe2+由于具有很強(qiáng)的吸電子能力,能夠誘導(dǎo)自由基反應(yīng)的產(chǎn)生和傳播。Ferrozine試劑能與Fe2+反應(yīng)產(chǎn)生紅色的復(fù)合物,因此可以通過測定反應(yīng)液的吸光度值來計算其 Fe2+螯合能力[17]。結(jié)果如圖6,粗蛋白幾乎沒有亞鐵離子螯合能力,而CPP和蛋黃肽產(chǎn)品都有明顯的亞鐵離子螯合能力。無論是在1mg/mL還是2mg/mL濃度下,蛋黃肽產(chǎn)品都較CPP在亞鐵離子螯合能力方面有顯著提高。
圖6 樣品的亞鐵離子螯合能力測定結(jié)果Fig.6 Determination of Fe2+-chelating abilities of different samples
上述實驗結(jié)果表明,本實驗所得蛋黃肽產(chǎn)品具有良好的體外抗氧化性,具有開發(fā)抗氧化產(chǎn)品的潛在價值。
本實驗采用Alcalase 2.4L兩次酶解經(jīng)乙醇-正己烷脫脂后的粗蛋白可以獲得高品質(zhì)蛋黃肽產(chǎn)品:得率為41%;蛋白含量大于85%,灰分低于8%;在較寬的pH范圍內(nèi)有較好的溶解性;熱穩(wěn)定性良好,可以進(jìn)行有效的熱滅菌處理。體外活性實驗表明,蛋黃肽產(chǎn)品可以有效延緩和抑制磷酸鈣沉淀的發(fā)生,具有較好的DPPH自由基清除能力和亞鐵離子螯合能力,抗氧化性良好。本實驗的工藝簡單,可以高效制備高品質(zhì)蛋黃肽,對蛋黃粉的有效利用和其加工制品的開發(fā)應(yīng)用具有重要的應(yīng)用價值。
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