国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

MHV-3誘導(dǎo)的暴發(fā)性肝炎小鼠肝臟和慢加急性肝衰竭患者外周血單個(gè)核細(xì)胞TLR2表達(dá)的變化*

2014-05-25 00:27李詠韓梅芳師愛(ài)超丁琳陸玉蕾張?jiān)獊?/span>王宏艷寧琴
實(shí)用肝臟病雜志 2014年3期
關(guān)鍵詞:暴發(fā)性肝炎乙型肝炎

李詠,韓梅芳,師愛(ài)超,丁琳,陸玉蕾,張?jiān)獊啠鹾昶G,寧琴

·實(shí)驗(yàn)性肝炎·

MHV-3誘導(dǎo)的暴發(fā)性肝炎小鼠肝臟和慢加急性肝衰竭患者外周血單個(gè)核細(xì)胞TLR2表達(dá)的變化*

李詠,韓梅芳,師愛(ài)超,丁琳,陸玉蕾,張?jiān)獊?,王宏艷,寧琴

目的研究慢性乙型肝炎患者和慢加急性乙型肝炎肝衰竭(HBV-ACLF)患者外周血單個(gè)核細(xì)胞(PBMC)Toll樣受體2 (TLR2)表達(dá),以及鼠三型肝炎病毒(MHV-3)誘導(dǎo)的暴發(fā)性肝炎小鼠肝臟TLR2表達(dá)的變化。方法收集慢性乙型肝炎和HBV-ACLF患者外周血,分離PBMC,采用實(shí)時(shí)定量PCR法檢測(cè)PBMC中TLR2 mRNA;給Balb/cJ小鼠腹腔注射MHV-3(100 pfu),建立小鼠暴發(fā)性肝炎模型,觀察感染0、24、48和72 h后肝臟TLR2水平變化。結(jié)果BALB/cJ小鼠在感染MHV-3后,與0 h[(0.39±0.06)%]比,肝細(xì)胞TLR2 mRNA水平在感染48和72 h均顯著升高[分別為(9.06±1.60)%和(6.42±2.42)%,P<0.05)],并于48 h達(dá)最高水平,且兩時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞TLR2 mRNA水平均與血清ALT和AST水平呈正相關(guān)(r=0.804,P<0.01;r=0.797,P<0.01);HBV-ACLF患者PBMC 中TLR2 mRNA水平顯著高于慢性乙型肝炎患者[(5.92±5.26)% 對(duì)(1.15±1.59)%,P<0.05)]。結(jié)論TLR2參與了MHV-3誘導(dǎo)的暴發(fā)性肝炎小鼠以及HBV-ACLF患者肝臟損傷的發(fā)病過(guò)程。

暴發(fā)性肝炎;慢加急性肝衰竭;鼠三型肝炎病毒;Toll樣受體2;小鼠

Toll樣受體在天然免疫和后天免疫中都起著至關(guān)重要的作用,可以識(shí)別病原微生物表達(dá)的保守結(jié)構(gòu)基因序列[1]。很多TOLL受體的信號(hào)途徑是通過(guò)髓樣分化蛋白MyD88介導(dǎo)的[2]。TOLL樣受體的激活可促進(jìn)相關(guān)炎癥和抗炎因子的釋放,激發(fā)機(jī)體對(duì)病原微生物產(chǎn)生防御反應(yīng)[3]。Toll樣受體2(Toll-Like receptor 2/TLR2)是TLR家族中的重要成員之一,主要是識(shí)別各種病原微生物,如革蘭氏陽(yáng)性菌、螺旋體和支原體等[4],而TLR2、3、5與自身免疫性肝炎和酒精性肝病[5]發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。TLR4的激活會(huì)促進(jìn)炎性細(xì)胞的聚集,產(chǎn)生與炎癥相關(guān)的細(xì)胞因子[6]??偟膩?lái)說(shuō),不同的TLR的激活可以導(dǎo)致機(jī)體產(chǎn)生不同的抗細(xì)菌或病毒的相關(guān)免疫反應(yīng)機(jī)制。肝衰竭仍是危害人們健康的疾病之一,并發(fā)癥較多,且病死率較高[7]。雖然近年來(lái)取得的一些進(jìn)展在一定程度上改善了患者預(yù)后,但肝衰竭的致病機(jī)制尚未完全闡明。目前主要認(rèn)為免疫系統(tǒng)的過(guò)度激活導(dǎo)致大量炎性因子的釋放可能是導(dǎo)致肝衰竭發(fā)生發(fā)展的重要原因之一。TLR2在肝衰竭發(fā)病中的作用尚未完全闡明。本研究使用鼠三型肝炎病毒(MHV-3)誘導(dǎo)的小鼠肝衰竭模型,采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR法檢測(cè)暴發(fā)性肝炎小鼠肝組織TLR2水平,同時(shí)檢測(cè)了慢性乙型肝炎輕度和乙型肝炎病毒導(dǎo)致的慢加急性肝衰竭(HBV-ACLF)患者外周血單個(gè)核細(xì)胞(PBMC)TLR2表達(dá)的變化,以探討TLR在肝衰竭發(fā)病機(jī)制中的作用。

1 材料與方法

1.1 病毒株MHV-3病毒株為本研究室保存,經(jīng)DBT細(xì)胞系空斑純化,利用鼠17CL1細(xì)胞系繁殖培養(yǎng),采用鼠L2細(xì)胞系蝕斑純化和滴度測(cè)定。本研究所使用的MHV-3滴度為1×106pfu/ml。

1.2 肝衰竭模型的建立取雌性SPF 級(jí)Balb/cJ小鼠,6~8 周齡,體質(zhì)量18~20 g,購(gòu)自長(zhǎng)沙動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心。動(dòng)物飼養(yǎng)在本實(shí)驗(yàn)室潔凈層柜(IVC 系統(tǒng),蘇州馮氏公司)內(nèi),恒溫、恒濕,自由食水。MHV-3 以無(wú)菌生理鹽水重懸配置,制備感染液。以腹腔注射方式感染小鼠,每只小鼠腹腔注射200 μl 感染液(100 PFU /只)。對(duì)照組以無(wú)菌生理鹽水以同等劑量注入小鼠腹腔。

1.3 肝組織TLR2 mRNA檢測(cè)取肝組織50~100 mg,于1 ml Trizol中碾磨,按Trizol法提取RNA,分光光度計(jì)定量,電泳。采用南京金斯瑞公司逆轉(zhuǎn)錄試劑盒行逆轉(zhuǎn)錄,取RNA 1 μg,加入OligodT 1 μl,雙蒸水補(bǔ)足至12 μl,70℃水浴10 min,冰上冷卻,再依次加入:逆轉(zhuǎn)錄混合緩沖液4 μl,1 mmol/L dNTP 1 μl,RNA酶抑制劑2 μl,37℃水浴5 min,后加入逆轉(zhuǎn)錄酶1 μl,42℃水浴60 min,70℃10 min,滅活終止反應(yīng),cDNA置于-20℃保存。采用Real-Time PCR法檢測(cè)目的基因:自NCBI基因庫(kù)選取小鼠GAPDH、MyD88和TLR2基因,采用Primer 5軟件設(shè)計(jì)引物,引物由北京擎科公司合成,引物序列如下:小鼠GAPDH,上游;5'-CTCATGACCACAGTCCATGCCATC-3',下游5'-CTGCTTCACCACCTTCTTG-3';小鼠TLR2,上游5'-GGGAGCGGCGGCTGGAGGACTCCTA-3',下游5'-AGGTCGCAGAGACTGCCGTCCAACC-3';小鼠MyD88,上游5’-GCACCTCAGTACACACA-3’,下游5’-TGATGATAGAACTCTTCCACT-3’;人β-actin,上游5'-CCAACCGCGAGAAGATGA-3',下游5'-CCAGAGGCGTACAGGGATAG-3';人TLR2,上游5’-GCGTTCTCTCAGGTGACTGCTCG-3',下游5'-CAGTGAAAGAGCAATGGGCACAA-3'。PCR反應(yīng)體系為20 μl,采用日本TOYOBO公司試劑盒(QPK201-T),包括上下游引物各1 μl,模板1 μl,SYB 10 μl,加雙蒸水補(bǔ)足至20 μl。反應(yīng)條件為95℃1 min,95℃15 s,60℃15 s,72℃35 s,40個(gè)循環(huán)。

1.4 患者PBMC中TLR2 mRNA檢測(cè)本研究經(jīng)同濟(jì)醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)?;颊吆炇鹬橥鈺?shū)。選擇的16例慢性肝炎輕度(男11例,女5例,平均年齡36歲)和17例HBV-ACLF患者(男15例,女2例,平均年齡43歲)的診斷均符合2000年西安會(huì)議修訂的病毒性肝炎防治方案[8]。取外周血,應(yīng)用Ficoll密度離心法分離,分離PMBCs,用Trizol裂解,提取RNA,采用Real-Time PCR法檢測(cè)TLR2 mRNA水平。

1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理應(yīng)用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件包進(jìn)行資料分析,計(jì)量資料以(±s)表示,組間比較采用ANOVA方差分析或者t檢驗(yàn),采用線性回歸分析。P<0.05為具有顯著性差異。

2 結(jié)果

2.1 MHV-3誘導(dǎo)的Balb/cJ小鼠暴發(fā)性肝炎模型建立成功接受100 pfu MHV-3腹腔注射的10只Balb/cJ小鼠在72 h全部死亡,而接受生理鹽水處理的10只小鼠全部存活。

圖1 MHV-3感染小鼠肝組織MyD88 mRNA水平顯著升高

2.2 MHV-3誘導(dǎo)的Balb/cJ小鼠肝組織MyD88 mRNA水平變化與0 h比,小鼠肝組織MyD88 mR NA水平在48 h顯著升高[(1.85±0.07)% 對(duì)(9.90± 2.11)%,P<0.05,圖1]。2.3 MHV-3誘導(dǎo)的Balb/cJ小鼠肝組織TLR2 mRNA水平變化結(jié)果表明,隨著感染時(shí)間的延長(zhǎng),與0 h比,感染48 h和72 h時(shí)小鼠肝組織TLR2 mRNA水平顯著升高[分別為(0.39±0.06)% 對(duì)(9.06± 1.60)%,P<0.05和(6.42±2.42)%,P<0.05,圖2],于感染48 h達(dá)到高峰。

圖2 MHV-3感染小鼠肝組織TLR2mRNA水平顯著增高

2.4 MHV-3感染小鼠肝組織TLR2 mRNA水平與血清ALT和AST水平變化密切相關(guān)結(jié)果顯示,在感染72 h,小鼠肝組織TLR2 mRNA水平與血清ALT或AST水平呈正相關(guān)(圖3)。

圖3 MHV-3誘導(dǎo)的暴發(fā)性肝炎小鼠肝組織TLR2 mRNA水平與血清ALT和AST水平的關(guān)系(r=0.804,P<0.01;r=0.797,P<0.01)

2.5 慢性乙型肝炎輕度和HBV-ACLF患者PBMC中TLR2 mRNA水平變化結(jié)果顯示,與慢性乙型肝炎輕度患者比,HBV-ACLF患者PBMC中TLR2 mRNA水平顯著升高[(5.92±5.26)% 對(duì)(1.15±1.59)%,P<0.05,圖4]。

圖4 慢性乙型肝炎輕度與HBV導(dǎo)致的慢加急性肝衰竭患者PBMC中TLR2 mRNA水平比較

3 討論

慢性肝衰竭占我國(guó)肝功能衰竭患者總數(shù)的90%。肝衰竭起病快,往往伴隨多種并發(fā)癥,例如腹水、肝性腦病、肝腎綜合征和嚴(yán)重感染等,致死率高。該病的發(fā)病機(jī)制非常復(fù)雜,目前尚未完全闡明。主要觀點(diǎn)普遍認(rèn)為免疫系統(tǒng)的過(guò)度激活導(dǎo)致促炎性因子的大量釋放,進(jìn)一步導(dǎo)致肝細(xì)胞的損傷,全身多器官功能衰竭,最終導(dǎo)致患者死亡[9,10]。Toll樣受體和免疫系統(tǒng)密切相關(guān),Toll樣受體可能在急性肝衰竭中起到重要作用。因此,深入研究TLR與免疫損傷的關(guān)系,對(duì)深入了解肝衰竭的致病機(jī)制有非常重要的意義。

肝臟中的Toll受體通過(guò)門(mén)靜脈以及相關(guān)分支能夠接觸到相應(yīng)病原體成分,通過(guò)激活下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)而廣泛參與肝臟的生理病理過(guò)程。近幾年來(lái),TLRs在肝臟疾病,如病毒性肝炎、酒精性肝病及脂肪性肝病中的作用正被逐步揭示出來(lái)。Isogawa et al研究發(fā)現(xiàn),活化的TLR5、TLR7、TLR9能夠在24小時(shí)內(nèi)通過(guò)IFN-α/β依賴(lài)途徑抑制HBV復(fù)制[11]。Manigold et al發(fā)現(xiàn)TLR2在內(nèi)毒素血癥的肝硬化患者PBMC中表達(dá)上調(diào)[12],而TLR4在Child-Pugh A級(jí)肝硬化患者PBMC中顯著下調(diào)[13],提示TLRs可能參與了肝臟疾病的發(fā)生發(fā)展過(guò)程。

本研究發(fā)現(xiàn),在未感染的小鼠中,TLR2的表達(dá)非常低,但在感染MHV-3后,TLR2在48小時(shí)和72小時(shí)明顯上調(diào),且在48小時(shí)達(dá)到峰值。MyD88依賴(lài)性信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑是TLR信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的共同通路?,F(xiàn)有資料表明TLR2、3、4、7、9信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)均通過(guò)該途徑完成。在我們的研究中,MyD88和TLR2表達(dá)的變化基本是一致的,都是在48小時(shí)開(kāi)始升高,之后回落,提示在感染早期,這一通路起到重要作用。在MHV-3感染小鼠肝衰竭模型中,肝衰竭小鼠TLR2有顯著升高,與肝衰竭患者PBMC中TLR2的高表達(dá)有相似之處,提示可以用小鼠肝衰竭模型在一定程度上模擬肝衰竭患者,為以后更進(jìn)一步的研究打下基礎(chǔ)。

TLRs表達(dá)與外來(lái)配體的刺激有密切關(guān)聯(lián),TLR2作為與病毒感染關(guān)系較為密切的一種模式識(shí)別受體,其表達(dá)和病毒的感染可能存在一定的相關(guān)性,它可以在外界病毒入侵的早期就開(kāi)始表達(dá)上調(diào)[4,14,15]。我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果說(shuō)明在病毒感染的初期TLR2迅速被激活。隨著炎癥的不斷進(jìn)展,TLR2在48小時(shí)達(dá)到高峰,并于72小時(shí)緩慢回落,但仍顯著高于基線水平。我們進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)TLR2在MHV-3感染后不同時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)與小鼠血清ALT和AST水平呈正相關(guān)。TLR可以通過(guò)激活NF-KB和MAPK通路,促進(jìn)T細(xì)胞增殖和激活,產(chǎn)生大量的細(xì)胞因子,如IL-1、IL-6的釋放[14,16,17]。炎性細(xì)胞因子的激活被認(rèn)為在肝衰竭損傷的病理生理中起到重要作用[18~21],而激活的細(xì)胞因子反過(guò)來(lái)又可以繼續(xù)調(diào)節(jié)肝細(xì)胞上TLR表達(dá)。本研究表明TLR2在肝臟損傷的致病過(guò)程中起到了重要的作用。有研究表明,在小鼠體內(nèi)注射氨基半乳糖和脂質(zhì)體聯(lián)合注射后,發(fā)現(xiàn)小鼠肝臟中的TLR2 mRNA水平表達(dá)有增高,提示TLR2有可能參與了氨基半乳糖和脂質(zhì)體誘導(dǎo)的肝衰竭[17],而我們的研究結(jié)果與此發(fā)現(xiàn)類(lèi)似。在外來(lái)病毒或者細(xì)菌感染過(guò)程中,肝細(xì)胞損傷可能是過(guò)度激活的免疫應(yīng)答所導(dǎo)致的。TLR2啟動(dòng)的炎性應(yīng)答對(duì)控制病毒感染可能有限, 但在致死性單純皰疹病毒性腦炎中卻起重要作用。Kurt-Jones et al在單純皰疹病毒腦炎中證實(shí),TLR2 是主要的識(shí)別受體,其啟動(dòng)的炎性應(yīng)答有助于病毒清除, 但同時(shí)也造成嚴(yán)重的組織損傷[22]。

本研究在HBV-ACLF患者和慢性乙型肝炎輕度患者發(fā)現(xiàn)TLR2均有表達(dá),但是在慢性乙型肝炎輕度患者其表達(dá)明顯偏低。我們的結(jié)果與以往的研究有相似之處[23]。由于慢性乙型肝炎輕度患者病情比較穩(wěn)定,在長(zhǎng)期慢性化過(guò)程中,炎癥反應(yīng)較弱, 因此體內(nèi)TLRs未被大量激活,免疫損傷相對(duì)較輕,而慢性肝衰竭患者多由慢性肝炎急性進(jìn)展而來(lái)。因此,TLR2被大量激活,同時(shí)也造成一定程度的免疫損傷。我們推論,TLR2在慢性肝衰竭發(fā)病機(jī)制中的作用可能通過(guò)如下途徑實(shí)現(xiàn): 在發(fā)病早期通過(guò)TLR2對(duì)病毒成分的識(shí)別而激活免疫應(yīng)答系統(tǒng),促進(jìn)相關(guān)炎性因子如IL-6、TNF-α、INF-γ的釋放。在感染過(guò)程中,隨時(shí)間的推移,肝臟炎癥不斷進(jìn)展,TLR2對(duì)宿主的損傷作用還可能與后期釋放內(nèi)毒素有關(guān)。因此,在肝功能衰竭發(fā)病機(jī)制中TLR2的上調(diào)既參與了病毒的防御識(shí)別,也參與了肝衰竭的致病過(guò)程。

通過(guò)本研究我們認(rèn)為:TLR2在肝衰竭發(fā)生發(fā)展中起到重要作用,TLR2在肝衰竭中的作用將為研究乙型肝炎重癥化的發(fā)病機(jī)制開(kāi)拓新的領(lǐng)域。隨著分子生物學(xué)和免疫學(xué)的研究不斷進(jìn)展,TLR2在肝衰竭中的具體作用會(huì)不斷被闡明,未來(lái)可能為肝衰竭的靶向治療提供新的思路和研究手段。

[1]Janeway CA,Medzhitov R.Innate immune recognition.Annu Rev Immunol,2002,20:197-216.

[2]Janssens S,Beyaert R.A universal role for MyD88 in TLR/ IL-1R-mediated signaling.Trends Biochem Sci,2002,27(9): 474-482.

[3]Johnson A C,Heinzel F P,Diaconu E,et al.Activation of Toll-like receptor(TLR)2,TLR4,and TLR9 in the mammalian cornea induces MyD88-dependent corneal inflammation.Invest Ophthalmol Vis Sci,2005,46(2):589-595.

[4]Kim S,Karin M.Role of TLR2-dependent inflammation in metastatic progression.Ann N Y Acad Sci,2011,1217: 191-206.

[5]Kanuri G,Ladurner R,Skibovskaya J,et al.Expression of Toll-like receptors 1-5 but not TLR 6-10 is elevated in livers of patients with non-alcoholic fatty liverdisease [NAFLD].Liver Int,2013,15(3):112-116.

[6]Berzsenyi MD,Roberts S K,Preiss S,et al.Hepatic TLR2 &TLR4 expression correlates with hepatic inflammation and TNF-alpha in HCV&HCV/HIV infection.J Viral Hepat,2011,18(12):852-860.

[7]Lee W M.Acute liver failure in the United States.Semin Liver Dis,2003,23(3):217-226

[8]中華醫(yī)學(xué)會(huì)傳染病與寄生蟲(chóng)病學(xué)分會(huì),肝病學(xué)分會(huì).病毒性肝炎防治方案.肝臟,2000,5:257-263.

[9]Engelmann C,Berg T.Acute and acute-on chronic-liver failure.Dtsch Med Wochenschr,2013,138(31-32):1574-1577.

[10]Vaquero J,Blei A T.Etiology and management of fulminant hepatic failure.Curr Gastroenterol Rep,2003,5(1):39-47.

[11]Isogawa M,Robek M D,F(xiàn)uruichi Y,et al.Toll-like receptor signaling inhibits hepatitis B virus replication in vivo.J Virol,2005,79(11):7269-7272.

[12]Manigold T,Bocker U,Hanck C,et al.Differential expression of toll-like receptors 2 and 4 in patients with liver cirrhosis.Eur J Gastroenterol Hepatol,2003,15(3):275-282.

[13]Testro A G,Gow P J,Angus P W,et al.Effects of antibiotics on expression and function of Toll-like receptors 2 and 4 on mononuclear cells in patients with advanced cirrhosis.J Hepatol,2010,52(2):199-205.

[14]Lugade AA,Bogner PN,Murphy TF,et al.The role of TLR2 and bacterial lipoprotein in enhancing airway inflammation and immunity.Front Immunol,2011,2:10.

[15]Mowat A M.Does TLR2 regulate intestinal inflammation Eur J Immunol,2010,40(2):318-320.

[16]Maeda S,Hikiba Y,Sakamoto K,et al.Colon cancer-derived factors activate NF-kappaB in myeloid cells via TLR2 to link inflammation and tumorigenesis.Mol Med Rep,2011,4(6):1083-1088.

[17]MathurS,WalleyKR,WangY,etal.Extracellularheat shock protein 70 induces cardiomyocyte inflammation and contractiledysfunctionviaTLR2.CircJ,2011,75(10): 2445-2452.

[18]Carrera-Silva EA,Cano RC,Guinazu N,et al.TLR2,TLR4 and TLR9 are differentially modulated in liver lethally injured from BALB/c and C57BL/6 mice during Trypanosoma cruzi acute infection.Mol Immunol,2008,45(13):3580-3588.

[19]Hiromatsu T,Matsuguchi T,Shimizu H,et al.NK T cells stimulated with a ligand for TLR2 at least partly contribute to liver injury caused by Escherichia coli infection in mice. Eur J Immunol,2003,33(9):2511-2519.

[20]Hua J,Qiu de K,Li J Q,et al.Expression of Toll-like receptor 4 in rat liver during the course of carbon tetrachloride-induced liver injury.J Gastroenterol Hepatol,2007,22(6):862-869.

[21]朱琳,陳韜,寧琴.MHV-3誘導(dǎo)的暴發(fā)性肝炎小鼠肝臟表達(dá)IL-9免疫細(xì)胞的變化.實(shí)用肝臟病雜志,2012,15(5):427-429.

[22]Kurt-Jones E A,Belko J,Yu C,et al.The role of Toll-like receptors in herpes simplex infection in neonates.J Infect Dis,2005,191(5):746-748.

[23]陳煜,時(shí)紅波,張帆,等.慢性肝衰竭患者外周血單個(gè)核細(xì)胞中TLR2,TLR3,TLR9的mRNA表達(dá).肝臟,2010,15(4): 244-246.

(收稿:2014-01-24)

(校對(duì):陳從新)

TLR2 in liver tissues of mice with MHV-3-induced fulminant hepatitis and in peripheral blood mononuclear cells from patients with hepatitis B virus associated acute-on-chronic liver failure

Li Yong,Han Meifang,Shi Aichao,et al.Department and Institute of Infectious Disease,Tongji Hospital,Tongji Medical College,Huazhong University of Science and Technology,Wuhan,400030,Hubei Province,China

Objective To investigate the toll-like receptor 2 (TLR2)in livers of mice with murine hepatitis virus-3 (MHV-3)-induced fulminant hepatitis and in peripheral blood mononuclear cell (PBMCs)from patients with mild chronic hepatitis B(CHB)or with HBV-associated acute-on-chronic liver failure (HBV-ACLF). Methods PBMCs from patients with mild CHB and HBV-ACLF were collected. The TLR2 mRNA in PBMCs were determined by quantitative real-time PCR. Balb/cJ mice were injected intraperitoneally with MHV-3 at dose of 100 pfu to induce fulminant hepatitis. At 0,24,48 and 72 h after injection,the TLR2 mRNA in liver tissues of mice were determined. Results After infection of MHV-3,TLR2 mRNA increased significantly at 48 and 72 h when compared with the baseline at 0 h [(0.39±0.06)% vs.(9.06±1.60)%,P<0.05 and (6.42±2.42)%,P<0.05] and it peaked at 48 h;mRNA levels for TLR2 at 48 and 72 h were positively correlated with the serum ALT and AST(r=0.804,P<0.01;r=0.797,P<0.01,respectively);mRNA level of TLR2 in PBMCs from patients with HBV-ACLF was significantly higher than patients with mild CHB [(5.92±5.26)% vs.(1.15±1.59)%,P<0.05]. ConclusionsTLR2 may take part in the process of liver injury in MHV-3-induced fulminant hepatitis in mice and the pathogenesis of patients with HBV-ACLF.

Fulminant hepatitis;Acute-on-chronic liver failure;Murine hepatitis virus-3;Toll-like receptor 2;Mouse

10.3969/j.issn.1672-5069.2014.03.011

教育部創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)項(xiàng)目(編號(hào):IRT1131)

430030 武漢市華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬同濟(jì)醫(yī)院感染性疾病研究所/感染病科(李詠,韓梅芳,師愛(ài)超,丁琳,張?jiān)獊?,王宏艷);廣西醫(yī)科大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院(陸玉蕾)

李詠,男,32歲,博士研究生。主要從事病毒性肝炎發(fā)病機(jī)制研究。E-mail:vamos_yong@hotmail.com

寧琴,E-mail:qning@vip.sina.com

猜你喜歡
暴發(fā)性肝炎乙型肝炎
《世界肝炎日》
世界肝炎日
警惕暴發(fā)性心肌炎
山西省暴發(fā)性害蟲(chóng)中后期趨勢(shì)預(yù)測(cè)
戰(zhàn)勝肝炎,沿需努力
關(guān)注肝炎 認(rèn)識(shí)肝炎
暴發(fā)性臭氧中毒29例臨床分析
慢性乙型肝炎的預(yù)防與治療
中西醫(yī)結(jié)合治療慢性乙型肝炎肝纖維化66例
一起暴發(fā)性牛焦蟲(chóng)病病例