俞海燕,吳文濤,王 薇,張 純
(北京大學(xué)第三醫(yī)院1.臨床干細(xì)胞研究中心、2.眼科中心,北京 100191)
目前,我國眼盲和低視力的發(fā)病率很高,引起的病因較多,且隨著年齡不同而不同。Dandona等[1]報道,導(dǎo)致低視力的疾病通常包括:視網(wǎng)膜疾?。ㄕ?5.2%)、弱視 (占 25.7%)、視神經(jīng)病變 (占14.3%)、青光眼(占11.4%)、角膜疾?。ㄕ?.6%)等等,可以看到,除了角膜疾病外,其他疾病均由于視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞發(fā)生病變引起。由于神經(jīng)細(xì)胞損傷后不能再生,因此,目前大多數(shù)致盲疾病沒有可靠的治療方法。隨著干細(xì)胞研究的發(fā)展,干細(xì)胞可能為那些視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞病變導(dǎo)致疾病的治療提供一個新的突破口[2-6]。本實驗擬用優(yōu)化的方法從人骨髓中分離間充質(zhì)干細(xì)胞、進(jìn)行體外培養(yǎng),并誘導(dǎo)其向視網(wǎng)膜終末細(xì)胞分化。
1.1 材料 正常成人骨髓,無先天性視網(wǎng)膜遺傳疾病。均簽署知情同意書。
1.2 細(xì)胞的分離與培養(yǎng) 將抽取的骨髓用PBS沖洗,1 000 r·min-1×10 min共2~3次,用 Ficoll密度梯度離心法分離獲得單細(xì)胞。2%臺盼藍(lán)染色,計數(shù)活細(xì)胞,以3×105個/cm2的密度接種于75 cm2培養(yǎng)瓶中,置于37℃、5%CO2飽和濕度的CO2恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。培養(yǎng)基為含10%胎牛血清的低糖DMEM培養(yǎng)液,24~48 h后換液。以后每3~4天換液一次,當(dāng)細(xì)胞達(dá)80%~90%融合時,用0.25%胰酶-0.02%EDTA消化以1∶2比例進(jìn)行傳代。該細(xì)胞在體外至少可傳代15~16代,用第5代以上的細(xì)胞做細(xì)胞表型分析及體外誘導(dǎo)分化研究。
1.3 細(xì)胞表型分析 細(xì)胞經(jīng)0.25%胰酶-0.02%EDTA消化后,用PBS洗2次,以每管4×105個細(xì)胞分裝到流式管。使用標(biāo)記有鼠單克隆藻紅蛋白(PE)的 CD44、CD90、CD38抗體和 FITC標(biāo)記的CD34、CD14、CD45、CD147、HLA-DR (Becton Dicksinson)抗體,使用鼠 IgG1k-PE、IgG1k-FITC、IgG2ak-PE、IgG2bk-PE(Becton Dicksinson)、IgG2ak-FITC(Chemicon)等抗體作為對照。4℃孵育30 min后,洗滌,固定。用流式細(xì)胞儀(Becton Dicksinson)的CellQuest軟件采集數(shù)據(jù)并分析細(xì)胞表面不同抗原的相對含量。
1.4 骨髓間充質(zhì)細(xì)胞的體外誘導(dǎo)分化 將體外擴(kuò)增的人骨髓間充質(zhì)細(xì)胞接種于6孔板內(nèi),其內(nèi)放有經(jīng)賴氨酸處理的蓋玻片,誘導(dǎo)孔內(nèi)培養(yǎng)液為含1%胎牛血清的αMEM培養(yǎng)液,分為兩組,分別加或不加EGF,每2~3天換液一次,對照使用人骨髓間充質(zhì)細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)。均在37℃、5%CO2飽和濕度的CO2恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)14 d。
1.5 免疫熒光染色鑒定 使用誘導(dǎo)液培養(yǎng)的細(xì)胞爬片進(jìn)行染色鑒定。具體步驟:將細(xì)胞爬片用PBS緩沖液洗滌3次,每次5 min;4%多聚甲醛室溫固定15~20 min;PBS洗滌3次,每次3~5 min;10%BSA 37℃封閉 30 min;加入一抗,37℃孵育 30 min;0.1%Tween20-PBS洗滌3次,每次3~5 min;加入 FITC和TRITC分別標(biāo)記的二抗,室溫孵育60 min;0.1%Tween 20-PBS洗滌3次,每次3~5 min;抗熒光衰減封片劑封片;熒光顯微鏡下觀察并照相。
染色一抗分別用小鼠抗人Nestin單克隆抗體(美國BD公司)、小鼠抗人Rhodopsin單克隆抗體和小鼠抗人 CD90單克隆抗體(美國 Santa-Cruz公司)、兔抗人GFAP多克隆抗體(Chemicon公司),二抗分別用TRITC標(biāo)記的羊抗鼠抗體和FITC標(biāo)記的羊抗兔抗體(北京中山試劑公司)。
2.1 細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察 接種后細(xì)胞懸浮于培養(yǎng)液中,形態(tài)不一,種類較多。1 d后有少量成纖維樣細(xì)胞貼壁,此后貼壁細(xì)胞漸漸增多,折光性強(qiáng),約1周左右這些成纖維樣細(xì)胞匯聚到80%~90%,呈柵欄狀或漩渦狀排列(Fig 1A)。細(xì)胞經(jīng)傳代逐漸純化,在體外至少可傳15~16代,且增殖能力、細(xì)胞形態(tài)、大小與顆粒度保持不變。
Fig 1 Morphologic change of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells by inverted phase contrast microscope(×100)A:Before induction,the cultured bone marrow-derived mesenchymal stem cells were fibroblast-like cells;B:After induction,the morphology of cultured cells were neuron-like cells.
2.2 細(xì)胞表面標(biāo)志檢測 培養(yǎng)細(xì)胞表面標(biāo)志的表達(dá)與間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志的表達(dá)基本一致。它們均不表達(dá)造血系統(tǒng)的標(biāo)志CD34、CD38、CD45、CD14和HLA-DR,而表達(dá)多種黏附分子 CD44、CD90和CD147(Fig 2)。
2.3 體外誘導(dǎo)分化
2.3.1 光鏡下觀察 骨髓來源的細(xì)胞在誘導(dǎo)液(含1%胎牛血清的αMEM培養(yǎng)液,加或不加EGF)中培養(yǎng)后,細(xì)胞形態(tài)發(fā)生變化,細(xì)胞胞體向細(xì)胞核收縮,漸漸地大多數(shù)細(xì)胞均轉(zhuǎn)變?yōu)轭愃粕窠?jīng)元的形態(tài),形成不規(guī)則的梭形,部分細(xì)胞有多個突起,終末端有類似神經(jīng)元細(xì)胞突觸的結(jié)構(gòu);有的突起逐漸伸長,形成圓錐狀終末端,而對照組細(xì)胞形態(tài)無改變(Fig 1B)。
2.3.2 免疫熒光染色結(jié)果 在1%胎牛血清的αMEM培養(yǎng)液不加EGF組中(含1%胎牛血清的αMEM培養(yǎng)液),誘導(dǎo)2周后可以得到神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)志物 nestin(Fig 3A)和神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物GFAP表達(dá)陽性的細(xì)胞(Fig 3B);在1%胎牛血清的αMEM培養(yǎng)液加EGF組中(添加EGF的濃度是20 mg·L-1,需要在CO2恒溫培養(yǎng)箱內(nèi)誘導(dǎo)14 d),不僅可以得到以上兩種細(xì)胞,還可以誘導(dǎo)得到光感受器細(xì)胞Rhodopsin表達(dá)陽性的細(xì)胞(Fig 3C),同時,骨髓間充質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)志物CD90轉(zhuǎn)為陰性。而對照組均無陽性細(xì)胞出現(xiàn)。
間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是起源于中胚層的一種多能干細(xì)胞,具有自我更新能力和多向分化潛能,其分布廣泛,主要存在于骨髓,也可以見于肌肉、脂肪、胎盤、臍帶、骨、軟骨及韌帶等。在體外培養(yǎng)條件下,該細(xì)胞能夠通過自我復(fù)制產(chǎn)生大量同類細(xì)胞,同時具有多向分化的潛能,有研究顯示其可跨越胚層限制而分化為外胚層來源的神經(jīng)元細(xì)胞[7-9]。目前國內(nèi)外均有報道,體外培養(yǎng)[7,10-11]或體內(nèi)移植[12-14]的 MSCs可定向分化為表達(dá)神經(jīng)元表面標(biāo)志的細(xì)胞。
MSCs表面標(biāo)志的特征呈非單一性,同時表達(dá)間質(zhì)細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞、表皮細(xì)胞等不同細(xì)胞類型的表面標(biāo)志。其中 CD29、CD44、CD90、CD147、CD166是目前被公認(rèn)的MSC的重要表面標(biāo)記[2-3]。流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞表面抗原研究結(jié)果顯示:MSCs不表達(dá)造血前體細(xì)胞的表面抗原,如CD34、CD38;不表達(dá)白細(xì)胞的表面標(biāo)志抗原CD45;不表達(dá)抗原呈遞細(xì)胞的表面標(biāo)志抗原HLA-DR和單核細(xì)胞/巨噬細(xì)胞表面標(biāo)志抗原CD14。但是,MSCs表達(dá)整合素家族成員CD29以及黏附分子CD44、CD166、CD90。在本研究中,我們應(yīng)用流式細(xì)胞儀對體外培養(yǎng)的骨髓來源的間充質(zhì)細(xì)胞進(jìn)行鑒定后發(fā)現(xiàn),CD44、CD147、CD90表達(dá)陽性,而 CD34、CD45、CD38、HLA-DR、CD14表達(dá)陰性,證明本研究獲得的MSCs表面標(biāo)志抗原與文獻(xiàn)報道基本一致,可以肯定我們從成人骨髓中獲得的細(xì)胞是間充質(zhì)干細(xì)胞。
Tomita等[15]將PKH-67標(biāo)記的富含干細(xì)胞的骨髓來源細(xì)胞注射到經(jīng)機(jī)械損傷視網(wǎng)膜動物的玻璃體腔內(nèi),2周后該細(xì)胞整合到視網(wǎng)膜損傷區(qū)域,并表達(dá)成熟視網(wǎng)膜細(xì)胞的表面標(biāo)志抗原。之后,Minamino等[6]延長觀察時間到1年,仍能檢測到BMSC來源的神經(jīng)細(xì)胞。本研究利用從骨髓分離得到的MSCs,經(jīng)體外誘導(dǎo)后,分化細(xì)胞不再表達(dá)MSCs的表面標(biāo)志抗原,而表達(dá)神經(jīng)細(xì)胞及光感受器細(xì)胞的表面標(biāo)志抗原,說明這些MSCs具有分化為視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞的能力。如果使用此方法將hMSCs在體外誘導(dǎo)成為分化細(xì)胞,再移植到機(jī)械損傷視網(wǎng)膜動物的玻璃體腔或視網(wǎng)膜下腔,由于其已經(jīng)具有神經(jīng)細(xì)胞及光感受器細(xì)胞的表面標(biāo)志物,相比以上文獻(xiàn)報道的細(xì)胞而言,它們不僅可以整合到損傷視網(wǎng)膜區(qū)域,而且更容易分化為成熟視網(wǎng)膜細(xì)胞,有助于修復(fù)損傷的視網(wǎng)膜。我們希望下一步的工作是通過動物實驗來證實其具有視網(wǎng)膜細(xì)胞的功能。
Fig 3 Expression of nestin(A),GFAP(B)and Rhodopsin(C)in human bone marrow-derived mesenchymal stem cells after induction(×200)The results indicated that the induced cells could differentiate,expressing the surface markers of neuron,even the surface markers of retinal photoreceptor cells
近年來,干細(xì)胞研究已經(jīng)為神經(jīng)元損傷性疾病開拓了新的思路,細(xì)胞移植替代治療正在成為有效治療神經(jīng)系統(tǒng)損傷和退行性病變的新途徑。有關(guān)干細(xì)胞在視網(wǎng)膜應(yīng)用方面的實驗研究發(fā)展很快,從已有的很多研究中可以知道,胚胎干細(xì)胞[16]和神經(jīng)干細(xì)胞[17]在眼內(nèi)移植后可以整合到宿主視網(wǎng)膜并分化為形態(tài)類似視網(wǎng)膜細(xì)胞的神經(jīng)細(xì)胞。Tropepe等[18]發(fā)現(xiàn),在成年小鼠眼內(nèi)存在視網(wǎng)膜干細(xì)胞,國內(nèi)也有人胚胎來源視網(wǎng)膜干細(xì)胞的報道[19],由于其與視網(wǎng)膜具有組織同源性,較以上兩種細(xì)胞有著更大的優(yōu)越性。2013年,Xia等[20]研究表明,骨髓MSCs可以提高視網(wǎng)膜前體細(xì)胞的增殖能力,經(jīng)MSCs來源的條件培養(yǎng)基誘導(dǎo),視網(wǎng)膜前體細(xì)胞可以分化為視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞,包括Brn3a陽性的視網(wǎng)膜神經(jīng)節(jié)細(xì)胞(RGC)和視紫紅質(zhì)陽性的光感受器細(xì)胞,而向視網(wǎng)膜神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的分化則明顯減少。這說明骨髓MSCs表達(dá)各種細(xì)胞因子和神經(jīng)營養(yǎng)因子,對神經(jīng)組織來源細(xì)胞具有強(qiáng)大的營養(yǎng)和保護(hù)功能。如果將此細(xì)胞與本研究中獲得的體外分化后的細(xì)胞共同移植到眼內(nèi),相信可以促進(jìn)細(xì)胞在體內(nèi)的成熟和分化。即使如此,無論是胚胎干細(xì)胞、神經(jīng)干細(xì)胞還是視網(wǎng)膜干細(xì)胞,都面臨著標(biāo)本獲得困難和社會倫理道德的問題,極大程度地限制了其在臨床的應(yīng)用。而由于MSCs可以從患者骨髓中直接抽取或者通過骨髓動員從外周血中分離獲得,從而規(guī)避了細(xì)胞來源面臨的困難,也避免了人胚胎干細(xì)胞伴隨的倫理問題;而且骨髓來源的MSCs在體外易于純化、培養(yǎng),能夠通過自我復(fù)制大量擴(kuò)增,保證了足夠數(shù)量的移植細(xì)胞;另外,由于骨髓來源的MSCs屬于自體移植,避免了宿主細(xì)胞和移植細(xì)胞之間的免疫排斥反應(yīng)以及移植術(shù)后免疫抑制劑的大量使用,再加上骨髓MSCs具有向神經(jīng)細(xì)胞[21-22]分化的特性,從而在對神經(jīng)細(xì)胞損傷性疾病采取細(xì)胞移植治療的策略中,骨髓來源的MSCs成為理想的種子細(xì)胞。
本實驗從成人骨髓中分離、培養(yǎng)得到的MSCs,在體外誘導(dǎo)后可表達(dá)視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞的表面標(biāo)志抗原,從而證實該細(xì)胞具有向視網(wǎng)膜神經(jīng)細(xì)胞分化的潛能,為其移植治療視網(wǎng)膜細(xì)胞損傷性疾病提供了實驗依據(jù)。
參考文獻(xiàn):
[1] Dandona R,Dandona L,Srinivas M,et al.Planning low vision services in India:a population-hased perspective[J].Ophthalmology,2002,109(10);1871-8.
[2] Lakowski J,Han Y T,Pearson R A,et al.Effective transplantation of photoreceptor precursor cells selected via cell surface antigen expression[J].Stem Cells,2011,29(9):1391-404.
[3] Yu K,Ge J,Summers JB,et al.TSP-l secreted by bone marrow stromal cells contributes to retinal ganglion cell neurite outgrowth and survival[J].PLoSOne,2008,3(6):e2470.
[4] Zhao Y,Xin J,Sun C,et al.Safrole oxide induced neuronal differentiation of rat bone-marrow mesenchymal stem cells by elevating Hsp70[J].Gene,2012,509(1):85-92.
[5] Wang S,Kan Q,Sun Y,et al.Caveolin-1 regulates neural differentiation of rat bone mesenchymal stem cells into neurons by modulating Notch signaling[J].Int J Dev Neurosci,2013,31(1)30-5.
[6] 韓 梅,張文生,李金鳳,等.神經(jīng)退行性或損傷性疾病防治的新視點(diǎn)——干細(xì)胞藥物[J].中國藥理學(xué)通報,2008,24(7):841-4.
[6] Han M,Zhang W S,Li J F,et al.A new insight and strategy of treatment and prevention neurodegenerated or damaged diseasestem cell drugs[J].Chin Pharmacol Bull,2008,24(7):841-4.
[7] Moviglia G A,Blasetti N,Zarate J O,Pelayes D E.In vitro Differentiation of adult adipose mesenchymal stem cells into retinal progenitor cells[J].Ophthalmic Res,2012,48(1):1-5.
[8] Hu B Y,Weick JP,Yu J,et al.Neural differentiation of human induced pluripotent stem cells follows developmental principles but with variable potency[J].Proc Natl Acad Sci USA,2010,107(9):4335-40.
[9] 高 博,童 建.骨髓基質(zhì)干細(xì)胞分化為神經(jīng)細(xì)胞的研究進(jìn)展[J].中國藥理學(xué)通報,2006,22(7):792-6.
[9] Gao B,Tong J.Differentiation of marrowstromal cells into neurons:current progress[J].Chin Pharmacol Bull,2006,22(7):792-6.
[10]Park SK,Won JH,Bae SB,et al.Differentiation of systematically injected mesenchymal stem cells into retina cells in the rat eye[C].ASH Annual Meeting Abstracts,2005,106:1688.
[11]Chen J,Liu R,Yang Y,et al.The simulated microgravity enhances the differentiation of mesenchymal stem cells into neurons[J].Neurosci Lett,2011,505(2):171-5.
[12]Minamino K,Adachi Y,Yamada H,et al.Long term survival of bone marrow derived retinal nerve cells in the retina[J].Neuroreport,2005,16(12):1255-9.
[13]Seiler M J,Aramant R B,Thomas B B,et al.Visual restoration and transplant connectivity in degenerate rats implanted with retinal progenitor sheets[J].Eur JNeurosci,2010,31(3):508-20.
[14]Tomita M,Mori T,Maruyama K,et al.A comparison of neural differentiation and retinal transplantation with bone marrow-derived cells and retinal progenitor cells[J].Stem Cells,2006,24(10):2270-8.
[15]Tomita M,Adachi Y,Yamada H,et al.Bone marrow-derived stem cells can differentiate into retinal cells in injured rat retina[J].Stem Cells,2002,20(4):279-83.
[16]Lamba D A,Karl M O,Ware CB,Reh T A.Efficient generation of retinal progenitor cells from human embryonic stem cells[J].Proc Natl Acad Sci USA,2006,103(34):12769-74.
[17]Grozdanic S D,Ast A M,Lazic T,et al.Morphological integration and functional assessment of transplanted neural progenitor cells in healthy and acute ischemic rat eyes[J].Exp Eye Res,2006,82(4):597-607.
[18]Tropepe V,Coles B L,Chiasson B J,et al.Retinal stem cells in the adult mammalian eye[J].Science,2000,287(5460):2032-6.
[19]俞海燕,沈 麗,王 薇,等.體外培養(yǎng)人胚胎視網(wǎng)膜干細(xì)胞的誘導(dǎo)分化[J].中華眼科雜志,2004,40(7):458-552.
[19]Yu H Y,Shen L,Wang W,et al.Differentiation of human embryonic retinal cells in vitro[J].Chin J Ophthalmol,2004,40(7):458-552.
[20]Xia J,Luo M,Ni N,et al.Bone marrow mesenchymal stem cells stimulate proliferation and neuronal differentiation of retinal progenitor cells[J].PLoSOne,2013,8(9):e76157.
[21]Yang L L,Zhou QJ,Wang Y,Wang Y Q.Differentiation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells into neural-like cells by co-culture with retinal pigmented epithelial cells[J].Int J Ophthalmol,2010,3(1):23-7.
[22]Sun X,Chen M,Li J,et al.E13.5 retinal progenitors induce mouse bone marrow mesenchymal stromal cells to differentiate into retinal progenitor-like cells[J].Cytotherapy,2011,13(3):294-303.