冷 鳳,孔 鵬,謝新宇,鄧佩佩,宋 盼,李 梅,李 敏,孟雅娟
(微生物藥物國(guó)家工程研究中心 河北省工業(yè)微生物代謝工程技術(shù)研究中心華北制藥集團(tuán)新藥研究開(kāi)發(fā)有限責(zé)任公司,河北 石家莊 050015)
近年來(lái),廣譜抗生素的濫用及實(shí)體器官移植手術(shù)的廣泛開(kāi)展,導(dǎo)致了免疫抑制劑的大量使用,放化療和對(duì)免疫系統(tǒng)更具有侵害性的醫(yī)療方法的應(yīng)用,造成真菌感染人群顯著增加。棘白霉素類(lèi)抗真菌藥物是以真菌細(xì)胞壁為作用靶點(diǎn),非競(jìng)爭(zhēng)性地抑制細(xì)胞壁β-1,3-D-葡聚糖合成,使細(xì)胞周期停滯,細(xì)胞壁完全性破壞,從而導(dǎo)致真菌細(xì)胞溶解死亡。而哺乳動(dòng)物缺乏該合成酶,故棘白霉素類(lèi)藥物對(duì)真菌細(xì)胞有較高的特異性,對(duì)人體正常細(xì)胞影響較小[1]。
阿尼芬凈(anidulafungin)是第三代棘白霉素類(lèi)半合成抗真菌類(lèi)藥物,是兩性霉素B的衍生物,由美國(guó)禮來(lái)制藥公司研發(fā),2006年12月在美國(guó)上市[2]。棘白霉素B(echinocandin B)是棘白霉素系列中的重要類(lèi)型,通過(guò)脫酰基酶將棘白霉素B的?;鶄?cè)鏈切掉,生成棘白霉素B母核(echinocandin B nucleus),再接上活性酯側(cè)鏈生成阿尼芬凈。
棘白霉素B母核為淺黃色粉末,在水、二甲基亞砜中易溶,在甲醇、乙醇中微溶,在氯仿中極微溶,在丙酮中不溶。分子式為C34H51N7O15,分子量為797.81。Boeck等[3]利用制備色譜技術(shù)分離出高純度的棘白霉素B母核,但處理量小,無(wú)法實(shí)現(xiàn)產(chǎn)業(yè)化生產(chǎn)。目前國(guó)內(nèi)有關(guān)棘白霉素B母核分離純化的報(bào)道較少。
聚合物納米微球是由苯乙烯/二乙烯基苯類(lèi)聚合而成的高分子聚合物,多為樹(shù)脂,在化工及制藥行業(yè)中應(yīng)用廣泛。聚合物納米微球已成為提取分離純化工藝中不可缺少的分離介質(zhì)之一。王慧娟等[4]采用聚合物納米微球分離莽草酸;李寧等[5]采用聚合物納米微球分離格爾德霉素;林毅等[6]采用聚合物納米微球制備高純度的達(dá)托霉素。作者采用聚合物納米微球?qū)酌顾谺母核粗提物進(jìn)行層析純化,并對(duì)層析條件進(jìn)行了優(yōu)化。該純化方法簡(jiǎn)單、易行、穩(wěn)定,層析介質(zhì)可反復(fù)多次使用,為該產(chǎn)品的產(chǎn)業(yè)化開(kāi)發(fā)提供一定的理論基礎(chǔ)。
棘白霉素B母核粗提物(含量80%),自制;Uni PS 30、Uni PSN 30、NM 100型聚合物納米微球,蘇州納微科技有限公司。
乙腈(色譜純),美國(guó)Merck公司;冰乙酸、無(wú)水乙醇,北京化工廠。
中壓層析系統(tǒng)(C-601泵,C-615控制器,C-660收集器,C-635檢測(cè)器),瑞士Buchi公司;LA-2010A型高效液相色譜儀(CUV-VIS檢測(cè)器,Easy3000工作站),日本島津公司。
色譜柱:Hypersil ODS C18(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相:乙腈∶水∶三氟乙酸=4∶96∶0.02;流速:1.0 mL·min-1;柱溫:40 ℃;檢測(cè)波長(zhǎng):210 nm;進(jìn)樣量:10 μL。
取100 g聚合物納米微球用1 mol·L-1的NaOH溶液浸泡2 h,純化水洗至中性,濕法裝柱(Φ∶H=1∶9,S=5.31 cm2),純化水平衡系統(tǒng)。取1 g棘白霉素B母核粗提物用純化水溶解,上樣,然后分別用1%、3%、5%(體積分?jǐn)?shù),下同)乙醇洗脫,洗脫流速10 mL·min-1,收集洗脫液,每管20 mL。HPLC檢測(cè)洗脫液色譜純度,將主峰色譜純度(峰面積歸一法,下同)≥98%的洗脫液合并,計(jì)算洗脫收率。洗脫液冷凍干燥后,得到棘白霉素B母核。
取1 g棘白霉素B母核粗提物用純化水溶解,上樣于Uni PS 30型聚合物納米微球?qū)游鲋謩e用1%、3%、5%的乙醇洗脫,洗脫流速10 mL·min-1,收集洗脫液,每管20 mL。HPLC檢測(cè)洗脫液色譜純度,將主峰色譜純度≥98%的洗脫液合并,計(jì)算洗脫收率。
取1 g棘白霉素B母核粗提物用純化水溶解,上樣于Uni PS 30型聚合物納米微球?qū)游鲋?,?%乙醇洗脫,分別以6 mL·min-1、8 mL·min-1、10 mL·min-1、12 mL·min-1、14 mL·min-1、16 mL·min-1的流速進(jìn)行洗脫,收集洗脫液,每管20 mL。HPLC檢測(cè)洗脫液色譜純度,將主峰色譜純度≥98%的洗脫液合并,計(jì)算洗脫收率。
分別取0.6 g、0.8 g、1.0 g、1.2 g、1.4 g棘白霉素B母核粗提物用純化水溶解,上樣于Uni PS 30型聚合物納米微球?qū)游鲋?,?%乙醇洗脫,流速12 mL·min-1,收集洗脫液,每管20 mL。HPLC檢測(cè)洗脫液色譜純度,將主峰色譜純度≥98%的洗脫液合并,計(jì)算洗脫收率。
以不同型號(hào)的聚合物納米微球?yàn)閷游鼋橘|(zhì),分別用1%、3%、5%的乙醇洗脫,洗脫收率見(jiàn)圖1。
由圖1可知,Uni PS 30型聚合物納米微球?qū)游鼋橘|(zhì)對(duì)棘白霉素B母核的分離效果優(yōu)于其它兩種層析介質(zhì)。因此,選擇Uni PS 30型聚合物納米微球作為層析介質(zhì)。
圖1 不同型號(hào)聚合物納米微球?qū)酌顾谺母核的洗脫收率
以Uni PS 30型聚合物納米微球?yàn)閷游鼋橘|(zhì),分別采用1%、3%、5%的乙醇進(jìn)行洗脫,洗脫液體積和洗脫收率見(jiàn)表1。
表1不同體積分?jǐn)?shù)的乙醇洗脫時(shí)洗脫液體積和洗脫收率
Tab.1Theelutionvolumeandyieldofdifferentvolumefractionsofethanol
乙醇體積分?jǐn)?shù)/%上樣量/g洗脫液體積/mL洗脫收率/%1163066 83145085 75126080 3
由表1可知:用1%乙醇洗脫時(shí),洗脫液體積大,洗脫過(guò)程拖尾且洗脫收率低;用5%乙醇洗脫時(shí),洗脫液體積小,洗脫速度過(guò)快,層析柱分離度低,主峰與雜質(zhì)之間不能有效分離,洗脫收率較低;用3%乙醇洗脫時(shí),洗脫液體積適中,層析柱分離度較高,分離效果較好,洗脫收率高,洗脫液中棘白霉素B母核色譜純度較高。因此,確定洗脫液乙醇體積分?jǐn)?shù)為3%。
以Uni PS 30型聚合物納米微球?yàn)閷游鼋橘|(zhì),用3%乙醇在不同洗脫流速下洗脫,洗脫收率見(jiàn)圖2。
由圖2可知,同樣條件下,洗脫流速不同,洗脫收率差異較大。洗脫流速較低(6 mL·min-1)時(shí),分離時(shí)間過(guò)長(zhǎng),洗脫收率較低;洗脫流速過(guò)快(16 mL·min-1)時(shí),主峰與雜質(zhì)之間不能充分分離,洗脫收率較低;當(dāng)洗脫流速為8~12 mL·min-1時(shí),洗脫收率較高,均達(dá)到85%以上??紤]單次實(shí)驗(yàn)時(shí)間,確定洗脫流速為12 mL·min-1。
圖2 不同洗脫流速下的洗脫收率
以Uni PS 30型聚合物納米微球?yàn)閷游鼋橘|(zhì),用3%乙醇洗脫,流速為12 mL·min-1,采用不同的上樣量時(shí)的洗脫收率見(jiàn)圖3。
圖3 不同上樣量下的洗脫收率
由圖3可知,同樣條件下,上樣量過(guò)低時(shí),樣品分散嚴(yán)重,洗脫體積較大,不易收集到高純度的洗脫液,洗脫收率較低;上樣量過(guò)大時(shí),主峰與雜質(zhì)峰重疊,造成洗脫液純度顯著下降,洗脫收率也較低。在保證分離度的前提下,選擇上樣量為0.8~1.2 g·(100 g介質(zhì))-1時(shí),洗脫收率較高,均達(dá)到85%以上??紤]單次實(shí)驗(yàn)處理量,上樣量選擇1.2 g·(100 g介質(zhì))-1為宜。
以聚合物納米微球?yàn)閷游鼋橘|(zhì)分離純化棘白霉素B母核。結(jié)果表明,以Uni PS 30型聚合物納米微球?yàn)閷游鼋橘|(zhì)、上樣量1.2 g·(100 g介質(zhì))-1、以3%乙醇為洗脫液、流速12 mL·min-1時(shí),得到純度大于98%的棘白霉素B母核,總收率大于85%。該分離純化方法簡(jiǎn)便、快捷可行,為該產(chǎn)品產(chǎn)業(yè)化開(kāi)發(fā)提供一定理論基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
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[4]王慧娟,楊寧.聚合物納米微球分離純化莽草酸方法研究[J].河南科技,2014,12(1):58-60.
[5]李寧,張雪霞,李曉露,等.聚合物納米微球分離純化格爾德霉素方法研究[J].化學(xué)與生物工程,2011,28(7):74-77.
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