榮曄婧,陳 強,史雨紅,陳 炯
(寧波大學(xué) 應(yīng)用海洋生物技術(shù)教育部重點實驗室, 浙江 寧波315211)
三疣梭子蟹(Portunustrituberculatus)隸屬甲殼綱(Crustacea)、十足目(Decapoda)、梭子蟹科(Portunidae)、梭子蟹屬(portunus),是一種重要的大型海產(chǎn)經(jīng)濟蟹類,廣泛分布于中國、日本、朝鮮及馬來西亞群島等海域,它具有肉質(zhì)好、生長快、產(chǎn)量高等優(yōu)點,經(jīng)濟價值高,養(yǎng)殖利潤豐厚,隨著海水養(yǎng)殖的快速發(fā)展,三疣梭子蟹養(yǎng)殖已成為各沿海地區(qū)的主導(dǎo)養(yǎng)殖品種。
目前,三疣梭子蟹養(yǎng)殖業(yè)的蟹苗主要還是依靠野生資源,但由于環(huán)境惡化、病害和過度捕撈導(dǎo)致野生資源急劇下降,嚴(yán)重限制了養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展[1]。因此迫切需要對野生資源進(jìn)行保護,了解三疣梭子蟹的野生種群遺傳結(jié)構(gòu),為開展優(yōu)良、抗逆品種的選育提供科學(xué)依據(jù),保持中國三疣梭子蟹養(yǎng)殖業(yè)的持續(xù)健康發(fā)展。據(jù)報道,同工酶[2,3]、16S rRNA、線粒體DNA、COI、CR、ITS1基因片段序列分析[4-6]、隨機擴增多態(tài)性 DNA (RAPD)[7]、擴增片段長度多態(tài)性(AFLP)[8]、微衛(wèi)星標(biāo)記(SSR)[1,9,10]等技術(shù)均以廣泛應(yīng)用于研究三疣梭子蟹種群內(nèi)和種群間、或與其它相近物種之間的遺傳關(guān)系。但上述技術(shù)存在檢測位點少、篩選周期長、自動化程度低,需已知基因組序列信息等缺點。
多樣性芯片技術(shù)(diversity arrays technology, DArT)是一種新遺傳標(biāo)記技術(shù),綜合了基因芯片、AFLP、PCR、分子克隆等技術(shù)[11],不需已知基因組序列,因此十分適合研究非模式生物[12]。同時,它具有高通量和低成本的顯著特點,較好地克服了以往跑電泳凝膠為主的標(biāo)記技術(shù)產(chǎn)量低、成本高、耗時長、自動化程度低以及依賴核酸序列信息等缺點[13],是一種比較理想的遺傳標(biāo)記技術(shù),已成功應(yīng)用于水稻、大麥和木薯等多種農(nóng)作物[11,13-16]和細(xì)菌[17]的遺傳多樣性和種質(zhì)鑒定研究。本研究先構(gòu)建三疣梭子蟹基因組代表性DNA文庫,從中擴增獲得基因組代表性DNA片段,用于點制多樣性芯片。再通過雜交獲得DArT標(biāo)記,重新點制多態(tài)性富集芯片,通過熒光信號強度轉(zhuǎn)換獲得0/1矩陣,從而分析5個三疣梭子蟹地理種群遺傳多樣性,以期為三疣梭子蟹野生種群保護及選育提供資料。
本研究所用5個地理種群的三疣梭子蟹樣品,分別取自中國由南到北的5個不同區(qū)域:丹東(DD)、煙臺(YT)、青島(QD)、連云港(LYG)、寧波(NB),分別代表黃海的鴨綠江口種群;渤海的萊州灣種群;會場野生種群;海州灣種群;東海的舟山種群。以上5個種群都于2011年取樣,所有樣品殼平均長度11.51 cm±1.22 cm,平均體重164.4 g± 19.7 g,雌雄比例1∶1?;铙w運回實驗室,取大螯于-80℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
大腸桿菌TOP10F’由實驗室保存,PstI、TaqI 、T4 DNA連接酶購自Takara公司,氨芐青霉素、X-gal、LB培養(yǎng)基、SSC、1 kb DNA ladder和SDS購自上海生工生物工程公司,DecaLabel DNA Labeling Kit購自Fermatas公司,ExpressHybTM雜交液購自Clontech公司,鮭精DNA購自Sigma公司,Cy3-dCTP和Cy5-dCTP購自GE公司。
方法參照J(rèn)accoud等[11]描述。采用酚-氯仿法提取基因組DNA,并將不同地理種群三疣梭子蟹基因組DNA等量混合。100 ng混合基因組DNA用PstI和TaqI進(jìn)行酶切。在T4 DNA連接酶作用下,純化的DNA連接上PstI特異性接頭(5’-CACGATGGATC CAGTGCA-3’與5’-CTGGATCCATCGTGCA-3’退火而成)。連接產(chǎn)物作為模板用于后續(xù)PCR擴增,所用引物為DArT-PstI引物 (5’-GATGGATCCAGTGCAG-3’ )[13],反應(yīng)程序如下:94℃變性5 min;94℃ 變性30 s,53℃復(fù)性30 s,72℃延伸1 min,72℃延伸反應(yīng)10 min。擴增產(chǎn)物克隆至載體pMD19-T,轉(zhuǎn)化大腸桿菌TOP10F’并涂布于含氨芐青霉素和X-gal的LB培養(yǎng)基上。
從基因組代表性DNA文庫中隨機挑選單菌落,利用質(zhì)粒載體上的通用引物M13F-47和M13R-48對插入的DNA片段進(jìn)行PCR擴增,產(chǎn)物用異丙醇沉淀。采用晶芯?SmartArrayerTM48 微陣列芯片點樣儀進(jìn)行芯片點制,同時在芯片上設(shè)置一系列陽性和陰性對照。
各地理種群基因組DNA(50 ng)用酶切、加接頭、PCR擴增操作如上。各地理種群代表性基因組DNA片段用1倍體積異丙醇濃縮10倍,變性后用DecaLabel DNA Labeling Kit進(jìn)行Cy3標(biāo)記,加入含十堿基隨機引物的5×緩沖液、MixC、Cy3-dCTP、exo-Klenow fragment共2.1 μL,37℃孵育10 min后,加入dNTPs 0.4 μL,37℃孵育30 min,加入0.1 μL EDTA(pH值8.0)終止反應(yīng)。參考DNA為pMD19-T載體多克隆位點片段并進(jìn)行Cy5標(biāo)記。Cy3和Cy5標(biāo)記反應(yīng)產(chǎn)物混合,再加入1 μL鮭精DNA(10 g/L)和50 μL ExpressHybTM雜交液混合后,96℃變性3 min,冰浴驟冷1 min。DArT芯片在紫外交聯(lián)儀中250 mJ交聯(lián)備用。雜交反應(yīng)在晶芯?雜交儀中進(jìn)行,65℃孵育過夜。雜交后先用0.3× SSC, 0.1% SDS 清洗1次,再用0.06× SSC清洗2次,離心甩干。
雜交后采用晶芯?LuxScanTM10K-A 雙通道激光共聚焦掃描儀進(jìn)行掃描,并用LuxScan3.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)的提取。若對應(yīng)的參考DNA雜交熒光強度較弱,則屬于壞點,棄之。質(zhì)量符合條件的探針,其對應(yīng)的熒光強度按照log[cy3target/cy5reference]進(jìn)行計算并均一化,利用模糊C-均值聚類分析法(模糊度為1.5)及ANOVA獲得0或1標(biāo)記矩陣。最后探針對應(yīng)的結(jié)果必須滿足:在90%的芯片中置信水平P>0.95(賦值概率采用聚類算法);符合前述條件時,在某張芯片上如果P<0.95則標(biāo)記為缺失(×)。
1.6.1 多樣性芯片(discovery arrays) 在本研究中,首先從隨機挑取的2500個基因組代表性DNA文庫克隆中擴增候選DArT標(biāo)記,點制成多樣性芯片,每個點重復(fù)3次。此外,質(zhì)控包括探針結(jié)合質(zhì)控、陽性雜交質(zhì)控、陰性雜交質(zhì)控、空白。
1.6.2 多態(tài)性富集芯片(polymorphism-enriched arrays) 將篩選獲得的上述候選DArT標(biāo)記重新點制成多態(tài)性富集芯片,每個點重復(fù)3次。芯片共35行、27列,每個DArT標(biāo)記重復(fù)3次,每個點的位置用“行標(biāo)-列標(biāo)”表示。其中1-1~1-3為HEX探針結(jié)合質(zhì)控,1-4~1-18為陰性質(zhì)控,1-19~1-21為陽性質(zhì)控,1-22~1-27為空白,35-22~35-27為三疣梭子蟹陽性探針。
來自于5個三疣梭子蟹野生種群PstI/TaqI代表性片段與多態(tài)性富集DArT芯片雜交,并重復(fù)1次。依據(jù)上述數(shù)據(jù)處理原則,獲得穩(wěn)定的0/1矩陣。采用PHYLIP 3.695軟件的RESTDIST和NEIGHBOR程序,用Nei/Li方法計算遺傳距離并構(gòu)建非加權(quán)組平均法(UPGMA)系統(tǒng)發(fā)生樹[18],用SEQBOOT程序進(jìn)行bootstrap分析,重復(fù)次數(shù)為1000計算各分支的置信度[19]。
本研究中基因組DNA完整,純度高,無RNA污染(圖1A)。將5個三疣梭子蟹地理種群基因組DNA等量混合,PstI和TaqI完全酶切后純化(圖1B)。在T4DNA連接酶作用下,純化的DNA酶切片段與PstI特異性接頭連接。連接產(chǎn)物作為模板進(jìn)行后續(xù)PCR擴增(圖1C)。PCR產(chǎn)物克隆至pMD19-T載體后轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10F’,所得基因組DNA代表性DNA文庫滴度≥105,陽性克隆平均插入片段長度>500 bp(圖1D),符合DArT芯片點制要求。
A:5個三疣梭子蟹地理種群基因組DNA,M—1 kb DNA ladder;A1—丹東,A2—煙臺,A3—青島,A4—連云港,A5—寧波;B:混合基因組DNAPstI和TaqI酶切檢測 (5 μL);C:加pstI接頭后PCR擴增;D:基因組DNA代表性文庫插入片段電泳檢測結(jié)果,1~24—隨機選取的克隆。
圖1三疣梭子蟹基因組DNA代表性片段文庫構(gòu)建
Fig 1 The construction of genomic representations library
5個三疣梭子蟹地理種群經(jīng)多樣性芯片分型,初步篩選獲得313個DArT標(biāo)記,多態(tài)性效率為12.5%。5個三疣梭子蟹地理種群再次與多態(tài)性富集芯片雜交,獲得穩(wěn)定的0/1矩陣。數(shù)據(jù)分析顯示Q>71%,call rate>93.5%,不一致性(discordance)<0.01,符合質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)。
圖2采用多態(tài)性富集芯片確定5個三疣梭子蟹地理種的群遺傳多樣性
Fig 2 Identification of genetic diversity of five geographical populations of the swimming crab detected on the polymorphism-enrichedPstI/TaqI arrays
313個候選多態(tài)性標(biāo)記的多態(tài)信息含量(polymorphism information content, PIC)介于0.32~0.48,中間值為0.40,較高于隨機選擇的雙等位基因位點的多態(tài)信息含量。系統(tǒng)進(jìn)化樹顯示了5個三疣梭子蟹地理種群之間的遺傳關(guān)系,其中青島和連云港的種群最先成簇,再與寧波種群成簇(圖3),這可能是由于青島和連云港都屬于黃海,寧波位于東海,黃海和東海兩個水域之間存在基因交流。
根據(jù)313個PstI/TaqI多態(tài)性標(biāo)記構(gòu)建UPGMA系統(tǒng)樹圖,分叉處數(shù)值表示1000次重復(fù)抽樣所得到的置信度百分比,只顯示置信度50 %以上的數(shù)值。
圖3 5個三疣梭子蟹地理種群之間的遺傳關(guān)系
Fig 3 Genetic diversity of five geographical populations of the swimming crab
重復(fù)性驗證先采用不同生長階段和不同環(huán)境的寧波地區(qū)三疣梭子蟹樣品制備6份PstI/TaqI代表性片段,每份樣品重復(fù)雜交1次。這個基因型雜交call rate為98%。重復(fù)實驗中2次賦值結(jié)果一致性為99.1%,絕大部分(96%)DArT標(biāo)記在不同的樣品雜交結(jié)果中賦值相同。其余4%在6個樣品雜交中結(jié)果不同,這可能是由于發(fā)育或環(huán)境造成了基因組甲基化不同。這些DArT標(biāo)記顯然不適合包含在基因分型芯片中。另外,重復(fù)性驗證還采用同一樣品不同個體的代表性DNA片段進(jìn)行雜交。3個樣品,每個樣品2個個體。結(jié)果顯示,兩個個體之間差異在0.7%~1.6%之間,這是個體遺傳異質(zhì)性造成的。
本研究構(gòu)建的三疣梭子蟹基因組代表性DNA文庫滴度≥105,陽性克隆平均插入片段長度>500 bp。多樣性芯片包括2500個基因組代表性DNA,作為候選多態(tài)性DNA,雜交篩選獲得313個DArT標(biāo)記,多態(tài)性效率為12.5%。上述多態(tài)性標(biāo)記重新點制成多態(tài)性富集型DArT芯片,雜交顯示Q>71%,call rate>93.5%,不一致性(discordance)<0.01,符合質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)。以0/1矩陣數(shù)據(jù)格式,分析了5個三疣梭子蟹地理種群間的遺傳多樣性。
基因組復(fù)雜性降低方法決定了基因組代表性文庫的多態(tài)性效率。PstI和TaqI酶切組合是DArT技術(shù)中降低基因組復(fù)雜度常用組合,在已報道文獻(xiàn)中證明此組合能獲得更高的多態(tài)性效率[13,16],本研究中采用該酶切組合構(gòu)建PstI和TaqI酶切,多態(tài)性效率為12.5%。對于遺傳變異小的生物,基于PstⅠ的基因組復(fù)雜性降低方法構(gòu)建的基因組代表性文庫的多態(tài)性效率甚至不到10%,因此改進(jìn)原有技術(shù)或者尋求新的基因組復(fù)雜性降低方法,提高文庫中差異片段的比例,對于提高DArT技術(shù)的效率非常重要[20]。此外,由于PstI是甲基化敏感限制性內(nèi)切酶[13],所以基因組甲基化程度也將影響多態(tài)性效率。
PIC是DArT技術(shù)的一個重要指標(biāo)。Botsein[21]首先提出了衡量基因變異程度高低的多態(tài)信息含量指標(biāo),當(dāng)PIC>0.5時,表明該遺傳標(biāo)記可提供豐富的遺傳信息;當(dāng)0.25 DArT技術(shù)已在農(nóng)作物的遺傳多樣性分析中得到有效應(yīng)用[11,13-16]。目前,該技術(shù)還尚未在水產(chǎn)動物中應(yīng)用。三疣梭子蟹地理種群遺傳多樣性分析主要是形態(tài)學(xué)方法、CR基因序列分析、SSR分子標(biāo)記技術(shù)。在形態(tài)學(xué)上,鴨綠江口、萊州灣、海州灣、舟山4個野生種群的三疣梭子蟹中,海州灣、舟山2個種群形態(tài)最為接近,鴨綠江口和萊州灣2個種群形態(tài)較為接近[23]。馮冰冰等[24]利用線粒體CR基因片段序列分析,表明青島、連云港、象山遺傳距離較近。李曉萍[22]采用SSR標(biāo)記技術(shù)對5個種群(舟山、海州灣、青島即墨會場、萊州灣、鴨綠江口)的野生三疣梭子蟹的遺傳多樣性進(jìn)行了比較分析,結(jié)果表明,即墨會場和海州灣兩個種群遺傳距離最近,萊州灣種群與這4個種群的遺傳距離較遠(yuǎn)。Liu等[1]研究了山東半島5個地區(qū)三疣梭子蟹的遺傳結(jié)構(gòu),表明煙臺和青島遺傳距離較遠(yuǎn)。此外,本研究顯示的結(jié)果與文獻(xiàn)報道一致,說明DArT技術(shù)準(zhǔn)確地反映了地理種群之間的遺傳多樣性。 綜上所述,本研究報道了一種高通量的DArT技術(shù),可用于三疣梭子蟹遺傳多樣性分析,可獲得穩(wěn)定并明確的遺傳分型圖譜,將有助于三疣梭子蟹自然資源遺傳多樣性研究和開展優(yōu)良品種選育工作。 參考文獻(xiàn): [1]Liu Y G, Guo Y H, Hao J, et al. Genetic diversity of swimming crab (Portunustrituberculatus) populations from Shandong peninsula as assessed by microsatellite markers[J]. Biochem Syst Ecol, 2012a, 41:91-97. [2]王國良, 金 珊, 李 政, 等. 三疣梭子蟹養(yǎng)殖群體同工酶的組織特異性及生化遺傳分析[J]. 臺灣海峽, 2005, 24(4): 474-480. [3]余紅衛(wèi), 朱冬發(fā), 韓寶芹. 三疣梭子蟹不同組織同工酶的分析[J].動物學(xué)雜志, 2005, 40(1): 84-87. [4]郭天慧, 孔曉喻, 陳四清, 等. 三疣梭子蟹線粒體DNA、16S rRNA和COI基因片段序列的比較研究[J].中國海洋大學(xué)學(xué)報, 2004, 34(1): 22-28. [5]Xu Q H, Liu R L, Liu Y. Genetic population structure of the swimming crab,Portunustrituberculatusin the east China sea based on mtDNA 16S rRNA sequences[J]. J Exp Mar Biol Ecol, 2009, 371(2):121-129. [6]李遠(yuǎn)寧, 馬 朋, 劉 萍, 等. 三疣梭子蟹 (Portunustrituberculatus) 4 個野生群體ITS1序列分析及系統(tǒng)進(jìn)化分析[J]. 海洋與湖沼,2012, 43(4):769-774. [7]金 珊, 趙青松, 王春琳, 等. 梭子蟹科六種海產(chǎn)蟹的RAPD標(biāo)記[J]. 動物學(xué)研究, 2004, 25(2): 172-176. [8]Liu L, Li J, Liu P, et al. A genetic linkage map of swimming crab (Portunustrituberculatus) based on SSR and AFLP markers [J]. Aquaculture, 2012b, 66-81: 344-349. [9]韓智科, 劉 萍, 李 健, 等. 三疣梭子蟹選育家系微衛(wèi)星分析[J]. 水產(chǎn)學(xué)報, 2012, 36(1): 25-31. [10]Guo E, Cui Z X, Wu D H, et al. Genetic structure and diversity ofPortunustrituberculatusin Chinese population revealed by microsatellite markers[J]. Biochem Syst Ecol, 2013, 50:313-321. [11]Jaccoud D, Peng K, Feinstein D, et al. Diversity arrays: a solid state technology for sequence independent genotyping [J]. Nucleic Acids Res, 2001, 29: e25. [12]James K E, Schneider H, Ansell S W, et al. Diversity arrays technology (DArT) for pan-genomic evolutionary studies of non-model organisms[J]. PLoS ONE, 2008, 3(2): e1682. [13]Wenzl P, Carling J, Kudrna D, et al. Diversity arrays technology (DArT) for whole-genome profiling of barley [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 2004, 101(26): 9915-9920. [14]Xia L, Peng K, Yang S Y, et al. DArT for high-throughput genotyping of Cassava (Manihotesculenta) and its wild relatives[J]. Theor Appl Genet, 2005, 110(6): 1092-1098. [15]Akbari M, Wenzl P, Caig V, et al. Diversity arrays technology (DArT) for high-throughput profiling of the hexaploid wheat genome[J]. Theor Appl Genet, 2006, 113(8): 1409-1420. [16]Bolibok-Bragoszewska H, Heller-Uszyńska K, Wenzl P, et al. DArT markers for the rye genome-genetic diversity and mapping[J]. BMC Genomics, 2009, 10: 578. [17]Hackl E, Konrad-K?szler M, Kilian A, et al. Phage-type specific markers identified by diversity arrays technology (DArT) analysis ofSalmonellaentericassp. enterica serovars Enteritidis and Typhimurium[J]. J Microbiol Meth, 2010, 80(1): 100-105. [18]Nei M, Li W H. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases [J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1979, 76(10):5269-5273. [19]Felsenstein J. PHYLIP-phylogeny inference package (version 3.2) [J]. Cladistics, 1989, 5:164-166. [20]馮艷麗, 武 劍, 王曉武. 多樣性序列芯片技術(shù)(DArT)的原理及應(yīng)用[J]. 中國蔬菜, 2010(2): 1-6. [21]Botstein D, White R L, Skolnick M, et al. Construction of a genetic linkage map in man using restriction fragment length polymorphisms[J]. Am J Hum Genet, 1980, 32(3): 314-331. [22]李曉萍. 三疣梭子蟹微衛(wèi)星富集文庫的構(gòu)建及五個野生地理群的多樣性分析[D]. 青島: 中國海洋大學(xué),2010: 40-51. [23]高保全, 劉 萍, 李 健, 等. 三疣梭子蟹4個野生種群形態(tài)差異分析[J]. 中國水產(chǎn)科學(xué), 2007, 14(2): 223-228. [24]馮冰冰, 李家樂, 牛東紅, 等. 中國四大海域三疣梭子蟹線粒體控制區(qū)基因片段序列比較分析[J]. 上海水產(chǎn)大學(xué)學(xué)報, 2008, 17(2): 134-139.