国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞與腎臟再生

2014-03-21 07:34綜述審校
腎臟病與透析腎移植雜志 2014年6期
關(guān)鍵詞:體細(xì)胞腎小管干細(xì)胞

劉 熹 綜述 余 晨 審校

急性腎損傷和慢性腎臟病發(fā)病率逐年升高,患者進(jìn)展至終末期腎病需維持性透析治療,其病死率高,且加重社會(huì)負(fù)擔(dān)。腎臟移植存在器官短缺、免疫排斥反應(yīng)等問題,故需尋找更好的治療方法。誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞(iPSC)可定向分化為腎系細(xì)胞,參與腎臟損傷后的修復(fù),且其來源于體細(xì)胞,取材簡(jiǎn)便,無明顯免疫排斥反應(yīng),避免倫理學(xué)爭(zhēng)議,因而在腎臟再生領(lǐng)域最具發(fā)展前景。

干細(xì)胞分類及比較

干細(xì)胞是一類具有高度增殖和多系分化能力的細(xì)胞。干細(xì)胞根據(jù)分化潛能大小分為多能干細(xì)胞和多功能成體干細(xì)胞(圖1)[1]。多能干細(xì)胞包括胚胎干細(xì)胞(ESC)和iPSC,可分化為內(nèi)、中、外三胚層細(xì)胞。多功能成體干細(xì)胞包括間充質(zhì)干細(xì)胞(MSC)、造血干細(xì)胞(HSC)和生殖細(xì)胞。獲取ESC需毀損胚胎,細(xì)胞來源受限,體內(nèi)注射可致畸胎瘤。MSC及HSC體外培養(yǎng)、擴(kuò)增相對(duì)容易,但其分化潛能較ESC和iPSC減弱。

圖1 干細(xì)胞種類及分化潛能[1]

iPSC的產(chǎn)生及鑒定

2006年,Yamnaka研究小組從24個(gè)候選基因中篩選出四個(gè)基因:Oct4、Sox2、c-Myc和Klf4,應(yīng)用逆轉(zhuǎn)錄病毒將這4個(gè)基因的cDNA導(dǎo)入小鼠成纖維細(xì)胞,轉(zhuǎn)染后的成纖維細(xì)胞在ESC培養(yǎng)環(huán)境中生長(zhǎng)成胚胎干細(xì)胞樣集落,并表達(dá)ESC絕大部分標(biāo)志基因,移植入裸鼠皮下可形成畸胎瘤,具有內(nèi)、中、外三胚層細(xì)胞特征,植入胚泡可形成小鼠胚胎,因此被命名為iPSC[2]。2007年,該小組應(yīng)用相同的轉(zhuǎn)錄因子將人類皮膚成纖維細(xì)胞誘導(dǎo)為iPSC[3]。iPSC體積小,核/質(zhì)比高,細(xì)胞排列緊密,表達(dá)ESC內(nèi)源性基因Oct4,Sox2,Nanog,Lin28,DPPA4,同時(shí)表達(dá)ESC標(biāo)志性抗原,如腫瘤識(shí)別抗原TRA-1-81、TRA-1-60,階段特異性胚胎抗原SSEA3和SSEA4,其DNA甲基化模式及組蛋白修飾情況與ESC相似。2009年,我國(guó)科學(xué)家利用iPSC通過四倍體囊胚注射技術(shù)得到存活并具有繁殖能力的小鼠,證明iPSC與ESC一樣具有相同的分化潛能[4]。

多能干細(xì)胞誘導(dǎo)技術(shù)進(jìn)展

自iPSC產(chǎn)生后,誘導(dǎo)技術(shù)不斷改進(jìn),在誘導(dǎo)因子方面,c-Myc和Klf4與腫瘤發(fā)生相關(guān), 研究發(fā)現(xiàn)L-Myc較c-Myc誘導(dǎo)效率高,腫瘤形成風(fēng)險(xiǎn)低[5]。2008年,Kim等[6]用Oct4聯(lián)合Klf4或c-Myc將神經(jīng)干細(xì)胞誘導(dǎo)為iPSC;2009年,該研究組僅用Oct4一種轉(zhuǎn)錄因子即將神經(jīng)干細(xì)胞誘導(dǎo)為iPSC[7]。用Oct4,Sox2兩種轉(zhuǎn)錄因子,轉(zhuǎn)染人類近端腎小管上皮細(xì)胞,13d后可得到iPSC,其上皮細(xì)胞標(biāo)志抗原CD13表達(dá)下調(diào),腎臟祖細(xì)胞標(biāo)志抗原CD10、CD133、CD24持續(xù)表達(dá),其他干細(xì)胞基因的表達(dá)與胚胎干細(xì)胞相同[8]。目前認(rèn)為,c-Myc啟動(dòng)了體細(xì)胞重編程,與重編程效率相關(guān),在體細(xì)胞向干細(xì)胞轉(zhuǎn)變的過程中,只有Oct4是唯一必需的誘導(dǎo)因子。與普通體細(xì)胞相比,成體干細(xì)胞誘導(dǎo)效率更高,需要插入的誘導(dǎo)因子少。在誘導(dǎo)載體方面,逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)染效率高,但隨機(jī)插入宿主基因存在激活原癌基因風(fēng)險(xiǎn),目前采用質(zhì)粒[9]、Piggy轉(zhuǎn)座子[10]等非整合型載體同樣可成功誘導(dǎo)多能干細(xì)胞。

iPSC誘導(dǎo)效率低制約其臨床應(yīng)用,最初體細(xì)胞重編程效率僅0.001%~0.01%。抑制或增強(qiáng)某些信號(hào)通路、改變誘導(dǎo)環(huán)境等均可提高誘導(dǎo)效率,如添加組蛋白去乙酰化酶抑制劑[11]、Wnt信號(hào)通路激活劑[12]、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β(TGF-β)信號(hào)通路抑制劑[13]、維生素C[14]及骨形態(tài)發(fā)生蛋白[15]等。將iPSC培養(yǎng)環(huán)境中的氧濃度從21%降到5%,誘導(dǎo)效率可提高2.5~4.2倍,進(jìn)一步降低氧濃度到1%,則會(huì)導(dǎo)致部分細(xì)胞死亡[16]。在誘導(dǎo)過程中調(diào)節(jié)miRNA-302的水平,增強(qiáng)細(xì)胞整體去甲基化水平,也可提高誘導(dǎo)效率[17]。

腎臟損傷的修復(fù)再生機(jī)制

傳統(tǒng)觀點(diǎn)認(rèn)為腎臟是不可再生的器官,胚胎36周后即無新的腎單位形成[18]。在腎臟包囊壁層上皮細(xì)胞中存在CD133+CD24+腎臟祖細(xì)胞[19],當(dāng)腎臟損傷時(shí),MSC、HSC自骨髓歸巢至腎臟,與腎臟祖細(xì)胞及少量停留在G1期的腎小管上皮細(xì)胞一起參與損傷后修復(fù)再生。這些細(xì)胞一方面直接分化為足細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞等參與修復(fù),另一方面調(diào)節(jié)炎癥因子白細(xì)胞介素1β(IL-1β),腫瘤壞死因子α(TNF-α),γ干擾素(IFN-γ)和抗炎因子IL-10、成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(FGF)、TGF-α和B淋巴細(xì)胞瘤2蛋白(Bcl-2)的分泌來減輕局部炎癥反應(yīng),促進(jìn)腎臟再生修復(fù)。在腎臟損傷動(dòng)物模型中,移植外源性干細(xì)胞也可促進(jìn)腎臟修復(fù)。外源性干細(xì)胞可通過尾靜脈、頸動(dòng)脈、腎動(dòng)脈及腎皮質(zhì)局部注射等方式移植至體內(nèi),治療效果報(bào)道不一,總體來說通過腎動(dòng)脈和腎皮質(zhì)直接注射技術(shù),干細(xì)胞腎臟歸巢率高,但局部損傷大,通過頸動(dòng)脈、尾靜脈等途徑注射則干細(xì)胞歸巢率低,但易于操作。

iPSC促進(jìn)腎臟再生策略

異體腎臟移植技術(shù)成熟,但供體匱乏。由于腎臟結(jié)構(gòu)復(fù)雜,利用自體細(xì)胞進(jìn)行完整器官克隆尚未取得成功。目前臨床上最普遍的是腎功能部分受損,仍殘存有功能的腎單位,對(duì)于這部分患者,研究主要集中在將體外擴(kuò)增的iPSC先定向分化為特定的腎系細(xì)胞,再移植入體內(nèi),在原有腎臟結(jié)構(gòu)中進(jìn)行細(xì)胞和功能修復(fù)(圖2)[20]。

圖2 誘導(dǎo)性多能干細(xì)胞誘導(dǎo)及分化示意圖[20]

腎系細(xì)胞誘導(dǎo)為iPSC人體絕大多數(shù)體細(xì)胞均可誘導(dǎo)為多能干細(xì)胞,iPSC具有一定的記憶功能,傾向于分化為其最初來源的細(xì)胞[21],因此將腎系細(xì)胞誘導(dǎo)為多能干細(xì)胞,更有利于修復(fù)腎臟損傷。Song等[22]用逆轉(zhuǎn)錄病毒轉(zhuǎn)染OCT4、SOX2、c-MYC和KLF4至成年男性腎臟系膜細(xì)胞,12d后這些系膜細(xì)胞與ESC形態(tài)相似,高表達(dá)堿性磷酸酶,并表達(dá)OCT4、腫瘤識(shí)別抗原TRA-1-60、TRA-1-81。將這些未分化的腎臟源性iPSC注入免疫缺陷小鼠中,可形成畸胎瘤。我國(guó)Wang等[23]將載有Oct4,Sox2,c-Myc 和 Klf4四種轉(zhuǎn)錄因子的慢病毒轉(zhuǎn)染2天齡C57BL/6幼鼠腎小管上皮細(xì)胞,21d后轉(zhuǎn)染成功的腎小管上皮細(xì)胞表現(xiàn)出ESC形態(tài),并表達(dá)c-Myc、FGF-4、階段特異性胚胎抗原1、端粒酶逆轉(zhuǎn)錄酶基因、NANOG、Oct4、Sox2和REX-1,在體外經(jīng)誘導(dǎo)可分化為內(nèi)、中、外胚層細(xì)胞[23]。獲取腎臟固有細(xì)胞用于誘導(dǎo)多能干細(xì)胞常需要進(jìn)行有創(chuàng)操作,增加了治療難度。Zhou等[24]收集人尿液中脫落的腎小管上皮細(xì)胞,應(yīng)用病毒轉(zhuǎn)染的方法得到iPSC,具有簡(jiǎn)便、經(jīng)濟(jì)、無創(chuàng)、誘導(dǎo)效率高及成功率高的優(yōu)點(diǎn),提示尿液中脫落的腎臟細(xì)胞是iPSC的理想來源。

iPSC向腎系細(xì)胞定向分化腎臟損傷涉及足細(xì)胞、系膜細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞等多種細(xì)胞,將iPSC定向分化為特定類型的腎系細(xì)胞,可直接參與修復(fù)腎臟損傷。胚胎期腎臟發(fā)育經(jīng)歷前腎、中腎、后腎三個(gè)階段,后腎由輸尿管芽、生后腎間充質(zhì)組織及基質(zhì)細(xì)胞組成,這些細(xì)胞在一系列誘導(dǎo)信號(hào)分子作用下發(fā)生復(fù)雜的間充質(zhì)細(xì)胞向上皮組織轉(zhuǎn)化。在腎臟發(fā)育過程中,有4個(gè)基因至關(guān)重要,分別是威爾氏瘤抑制基因(WT-1),Adrenalmarker,Rennin和Kallikrein。WT-1在早期腎臟生成中起核心作用,介導(dǎo)間充質(zhì)細(xì)胞向上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)化[25]。腎臟發(fā)育還涉及MYC、活性氧類(ROS)、同源盒基因(HOX)、PAX等基因及表皮生長(zhǎng)因子(EGF)、TGF-α、肝細(xì)胞生長(zhǎng)因子(HGF)、骨形態(tài)發(fā)生蛋白7(BMP-7)等表達(dá),在iPSC的分化過程中加入這些調(diào)節(jié)因子,可定向誘導(dǎo)其向特殊腎系細(xì)胞分化。

Song等[26]在培養(yǎng)基中加入激活素A、維甲酸和BMP-7,成功將腎臟系膜細(xì)胞來源的iPSC誘導(dǎo)分化為類足細(xì)胞樣細(xì)胞[26]。這些類足細(xì)胞樣細(xì)胞具有正常足細(xì)胞形態(tài),表達(dá)裂隙膜蛋白和突觸極蛋白,并具有增殖潛能。Araoka等[27]應(yīng)用小分子糖原合成酶激酶3抑制劑CHIR99021和維甲酸受體拮抗劑AM580誘導(dǎo)人iPSC分化為中胚層腎源性細(xì)胞,可明顯提高誘導(dǎo)率(達(dá)80%),同時(shí)縮短誘導(dǎo)時(shí)間至5d。這些中胚層腎源性細(xì)胞可分化為多種腎臟細(xì)胞,并形成腎小管樣結(jié)構(gòu)。Morizane等[28]比較了小鼠ESC和纖維母細(xì)胞來源的iPSC定向分化為腎系細(xì)胞,研究提示iPSC和ESC均可分化為成熟腎小管上皮細(xì)胞和足細(xì)胞,其中iPSC誘導(dǎo)效率及速度低于ESC,但iPSC具有保持多能性的傾向,激活素具有促進(jìn)ESC和iPSC定向分化為腎小管樣細(xì)胞的作用??傊琲PSC具有明確的分化為腎系細(xì)胞的潛能,但是由iPSC定向分化為某一種特定的腎臟細(xì)胞目前缺乏統(tǒng)一的誘導(dǎo)分化標(biāo)準(zhǔn),且分化而來的腎臟細(xì)胞功能與成熟腎臟細(xì)胞相比仍差距。

iPSC在腎臟損傷動(dòng)物模型中的應(yīng)用iPSC對(duì)腎臟急性缺血再灌注損傷及慢性間質(zhì)纖維化均具有修復(fù)再生作用。Lee等[29]將iPSC通過腎內(nèi)動(dòng)脈顯微注射到缺血再灌注急性腎損傷大鼠體內(nèi)發(fā)現(xiàn),iPSC減輕了腎臟病理?yè)p傷程度,改善腎功能,顯著降低了病死率;該研究還觀察到iPSC具有減輕氧化應(yīng)激、抗炎及抗凋亡效應(yīng)。將常染色體顯性多囊腎病患者體細(xì)胞誘導(dǎo)為iPSC,再在這些細(xì)胞中篩選發(fā)生自發(fā)基因修復(fù)的iPSC,用于治療多囊腎病,結(jié)果觀察到攜帶有PKD1+/R+的iPSC的成年嵌合體小鼠中囊腫形成的概率明顯低于攜帶有近親PKD1+/-的iPSC的成年嵌合體小鼠,且與野生型鼠比較無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異[30]。然而目前iPSC治療腎臟疾病研究局限于小樣本觀察性研究,其修復(fù)再生作用尚待進(jìn)一步驗(yàn)證,修復(fù)再生機(jī)制仍不明確。

iPSC免疫原性研究

理論上講,體細(xì)胞來源的iPSC用于自體移植不存在免疫排斥反應(yīng)。然而,目前缺乏統(tǒng)一穩(wěn)定的體細(xì)胞重編程及再分化體系,iPSC在誘導(dǎo)分化過程中其人類組織相容性抗原(HLA)是否會(huì)發(fā)生變化,引發(fā)免疫排斥反應(yīng)尚無定論。2011年《Nature》發(fā)表論文,將C57BL/6鼠成纖維細(xì)胞來源的iPSC與C57BL/6鼠的ESC移植至C57BL/6鼠體內(nèi),iPSC引發(fā)了免疫排斥反應(yīng),無法形成正常的畸胎瘤組織,而ESC則未引起免疫排斥,形成了正常的畸胎瘤。通過全基因組表達(dá)譜分析,iPSC形成的不正常的畸胎瘤組織免疫相關(guān)基因Hormad1和Zg16過表達(dá),導(dǎo)致iPSC免疫原性的改變[31]。2013年《Nature》再次發(fā)表論文,將iPSC定向誘導(dǎo)為皮膚和骨髓組織后再移植至C57BL/6鼠體內(nèi),結(jié)果顯示分化后的iPSC中Hormad1和Zg16并無過表達(dá)現(xiàn)象,且未引起免疫排斥反應(yīng)[32]。iPSC自體移植費(fèi)時(shí)費(fèi)力,貽誤治療時(shí)機(jī),構(gòu)建不同HLA表型的iPSC庫(kù)進(jìn)行異體移植具有廣闊的應(yīng)用前景。

小結(jié):我國(guó)慢性腎臟病發(fā)病率約10%,迄今仍無有效的方法逆轉(zhuǎn)疾病進(jìn)展,iPSC是較為理想的腎臟再生資源。然而iPSC誘導(dǎo)及再分化機(jī)制仍未闡明,缺乏統(tǒng)一的技術(shù)規(guī)范。iPSC誘導(dǎo)過程中涉及轉(zhuǎn)錄因子激活和病毒基因隨機(jī)插入,染色質(zhì)處于不穩(wěn)定狀態(tài),具有較大致瘤風(fēng)險(xiǎn),安全性尚無保證。此外,目前動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中iPSC移植方式及時(shí)機(jī)缺乏高質(zhì)量的隨機(jī)對(duì)照試驗(yàn),已有數(shù)據(jù)局限于小樣本觀察性研究,距離其臨床應(yīng)用還有大量工作需要論證。

1Temkin AM,Spyropoulos DD.Induced pluripotent stem cell technology and aquatic animal species.Comp Biochem Physiol C Toxicol Pharmacol,2014,163:3-13.

2Takahashi K,Yamanaka S.Induction of pluripotent stem cells from mouse embryonic and adult fibroblast cultures by defined factors.Cell,2006,126(4):663-676.

3Takahashi K,Tanabe K,Ohnuki M,et al.Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.Cell,2007,131(5):861-872.

4Zhao XY,Li W,Lv Z,et al.iPS cells produce viable mice through tetraploid complementation.Nature,2009,461(7260):86-90.

5Nakagawa M,Takizawa N,Narita M,et al.Promotion of direct reprogramming by transformation-deficient Myc.Proc Natl Acad Sci U S A,2010,107(32):14152-14157.

6Kim JB,Zaehres H,Wu G,et al.Pluripotent stem cells induced from adult neural stem cells by reprogramming with two factors.Nature,2008,454(7204):646-650.

7Kim JB,Zaehres H,Araúzo-Bravo MJ,et al.Oct4-induced pluripotency in adult neural stem cells.Cell,2009,136(3):411-419.

8Montserrat N,Ramírez-Bajo MJ,Xia Y,et al.Generation of induced pluripotent stem cells from human renal proximal tubular cells with only two transcription factors, OCT4 and SOX2.J Biol Chem,2012,287(29):24131-24138.

9Stadtfeld M,Nagaya M,Utikal J,et al.Induced pluripotent stem cells generated without viral integration.Science,2008,322(5903):945-949.

10 Woltjen K,Michael IP,Mohseni P,et al.piggyBac transposition reprograms fibroblasts to induced pluripotent stem cells.Nature,2009,458(7239):766-770.

11 Huangfu D,Maehr R,Guo W,et al.Induction of pluripotent stem cells by defined factors is greatly improved by small-molecule compounds.Nat Biotech,2008,26(7):795-797.

12 Marson A,Foreman R,Chevalier B,et al.Wnt signaling promotes reprogramming of somatic cells to pluripotency.Cell Stem Cell,2008,3(2):132-135.

13 Ichida JK,Blanchard J,Lam K,et al.A small-molecule inhibitor of tgf-Beta signaling replaces sox2 in reprogramming by inducing nanog.Cell Stem Cell,2009,5(5):491-503.

14 Esteban MA,Wang T,Qin B,et al.Vitamin C enhances the generation of mouse and human induced pluripotent stem cells.Cell Stem Cell,2010,6(1):71-79.

15 Chen J,Liu J,Yang J,et al.BMPs functionally replace Klf4 and support efficient reprogramming of mouse fibroblasts by Oct4 alone.Cell Res,2011,21(1):205-212.

16 Yoshida Y,Takahashi K,Okita K,et al.Hypoxia enhances the generation of induced pluripotent stem cells.Cell Stem Cell,2009,5(3):237-241.

17 Lin SL,Chang DC,Lin CH,et al.Regulation of somatic cell reprogramming through inducible mir-302 expression.Nucleic Acids Res,2011,39(3):1054-1065.

18 Romagnani P.Toward the identification of a “renopoietic system”? Stem Cells,2009,27(9):2247-2253.

19 Sagrinati C,Netti GS,Mazzinghi B,et al.Isolation and characterization of multipotent progen itor cells from the Bowman’s capsule of adult human kidneys.J Am Soc Nephrol,2006,17(9):2443-2456.

20 Bayart E,Cohen-Haguenauer O.Technological overview of ips induction from human adult somatic cells.Curr Gene Ther,2013,13(2):73-92.

21 Guo X,Zhang YM,Qi ZY,et al.Mouse-induced pluripotent stem cells have the potential to differentiate into induced primordial germ cells.Zhonghua Nan Ke Xue,2011,17(11):966-972.

22 Song B,Niclis JC,Alikhan MA,et al.Generation of induced pluripotent stem cells from human kidney mesangial cells.J Am Soc Nephrol,2011,22(7):1213-1220.

23 Wang WW,Wang W,Jiang Y,et al.Reprogramming of mouse renal tubular epithelial cells to induced pluripotent stem cells.Cytotherapy,2013,15(5):578-585.

24 Zhou T,Benda C,Dunzinger S,et al.Generation of induced pluripotent stem cells from urine.J Am Soc Nephrol,2011,22(7):1221-1228.

25 Schuldiner M,Yanuka O,Itskovitz-Eldor J,et al.Effects of eight growth factors on the differentiation of cells derived from human embryonic stem cells.Proc Natl Acad Sci U S A,2000,97(21):11307-11312.

26 Song B,Smink AM,Jones CV,et al.The directed differentiation of human iPS cells into kidney podocytes.PLOS One,2012,7(9):e46453.

27 Araoka T,Mae S,Kurose Y,et al.Efficient and rapid induction of human iPSCs/ESCs into nephrogenic intermediate mesoderm using small molecule-based differentiation methods.PLoS One,2014,9(1):e84881.

28 Morizane R,Monkawa T,Itoh H,et al.Differentiation of murine embryonic stem and induced pluripotent stem cells to renal lineage in vitro.Biochem Biophys Res Commun,2009,390(4):1334-1339.

29 Lee PY,Chien Y,Chiou GY,et al.Induced pluripotent stem cells without c-Myc attenuate acute kidney injury via downregulating the signaling of oxidative stress and inflammation in ischemia-reperfusion rats.Cell Transplant,2012,21(12):2569-2585.

30 Cheng LT,Nagata S,Hirano K,et al.Cure of ADPKD by selection for spontaneous genetic repair events in Pkd1-mutated iPS cells.PLoS One,2012,7(2):e32018.

31 Zhao T,Zhang ZN,Rong Z,et al.Immunogenicity of induced pluripotent stem cells.Nature,2011,474(7350):212-215.

32 Araki R,Uda M,Hoki Y,et al.Negligible immunogenicity of terminally differentiated cells derived from induced pluripotent or embryonic stem cells.Nature,2013,494(7435):100-104.

猜你喜歡
體細(xì)胞腎小管干細(xì)胞
干細(xì)胞:“小細(xì)胞”造就“大健康”
浙江:誕生首批體細(xì)胞克隆豬
新型冠狀病毒入侵人體細(xì)胞之謎
造血干細(xì)胞移植與捐獻(xiàn)
干細(xì)胞產(chǎn)業(yè)的春天來了?
內(nèi)皮前體細(xì)胞亞型與偏頭痛的相關(guān)性分析
非洲菊花托的體細(xì)胞胚發(fā)生及植株再生
依帕司他對(duì)早期糖尿病腎病腎小管功能的影響初探
IgA腎病患者血清胱抑素C對(duì)早期腎小管間質(zhì)損害的預(yù)測(cè)作用
細(xì)胞因子在慢性腎缺血與腎小管-間質(zhì)纖維化過程中的作用
松阳县| 晋宁县| 鲁甸县| 泉州市| 青浦区| 柯坪县| 莎车县| 昭通市| 东乡县| 九江市| 九台市| 留坝县| 齐河县| 循化| 大埔县| 无棣县| 临潭县| 丹阳市| 华容县| 临沂市| 广东省| 彝良县| 黄梅县| 建宁县| 滨州市| 南安市| 闸北区| 石楼县| 裕民县| 扶风县| 民乐县| 江北区| 龙泉市| 九江市| 兰州市| 富锦市| 巴塘县| 靖州| 靖安县| 洛隆县| 定襄县|