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快速敲除補回家蠶核型多角體病毒ORF29

2014-02-05 03:18:33
浙江農(nóng)業(yè)科學 2014年10期
關鍵詞:核型同源質粒

王 蓉

(浙江理工大學,浙江杭州 310018)

快速敲除補回家蠶核型多角體病毒ORF29

王 蓉

(浙江理工大學,浙江杭州 310018)

利用Red重組系統(tǒng)成功敲除家蠶核型多角體病毒ORF29基因(BmNPV ORF29,簡稱Bm29),并利用Bac-to-Bac系統(tǒng)構建補回型的Bm29基因。通過PCR鑒定敲除和補回均成功,為后續(xù)的Bm29基因功能研究奠定基礎。

家蠶核型多角體病毒;ORF29基因;Red重組;Bac-to-Bac

桿狀病毒是已知昆蟲病毒中類群最大,且具有較大實用意義的昆蟲病毒[1]。目前,已有29種昆蟲桿狀病毒的基因組被完全測序[2]。

基因敲除技術是研究基因功能的一種常用手段。傳統(tǒng)的構建重組桿狀病毒方法是利用轉移載體與野生型病毒DNA共轉染昆蟲細胞,通過同源交換和空斑純化獲得重組病毒,但該方法不僅重組效率低,而且耗時耗材[3]。近年來,Red重組系統(tǒng),因其準確率高、操作簡便的優(yōu)點逐漸成為新型的基因敲除方法[4]。Red重組系統(tǒng)屬于λ噬菌體的重組系統(tǒng),它的編碼基因exo,bet和gam置于L-阿拉伯糖啟動子控制下,在L-阿拉伯糖誘導下能夠表達重組所需的酶,從而介導線性化片段與染色體的特定片段進行同源重組,進而利用外源基因替換靶基因[5]。目前,已經(jīng)有報道利用Red重組成功敲除了桿狀病毒基因lef-6,l ef-8和lef-10[6-8]。

家蠶核型多角體病毒(BmNPV)基因組已經(jīng)被測序完全,含有136個完整的開放閱讀框[9]。BmNPVORF29,簡稱Bm29,全長654 bp,位于BmNPV基因組T3株的26449~27102 bp處,表達產(chǎn)物預測分子量為22.0 ku。該基因功能的研究還一直未見報道,本文首次利用Red重組系統(tǒng)在大腸桿菌中成功地對Bm29基因進行了定點敲除,并利用Bac-to-Bac系統(tǒng)補回缺失型的Bm29基因,為后續(xù)基因功能的研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

BW 25113-Bac、E.coli TG1和DH10Bac菌種,質粒pFastBac1、pKD3和pKD46均由本實驗室保存。

Taq酶、限制性內(nèi)切酶Eco RⅠ和Bam HⅠ,T4 Ligation,DL2000,1 kb DNA Marker購于TaKaRa公司;L-阿拉伯糖購自美國Promega公司;凝膠回收試劑盒購自天根生化科技有限公司;引物合成、測序由Invitrogen公司完成;其余試劑為國產(chǎn)分析純。

1.2 方法

1.2.1 Bm29基因的敲除型的構建

PCR制備Bm29基因打靶線性化片段。以pKD3質粒為模板,引物由50 bp的Bm29基因的同源臂(下劃線為同源臂)和20 bp的cat的同源區(qū)組成,如下:Bm29-C-F3')。PCR擴增獲得1 100 bp左右的打靶片段,命名為Bm29-C。

將純化后的Bm29-C轉化至DH10Bac感受態(tài)細胞(含pKD46質粒)中,加入L-阿拉伯糖的誘導表達λRed,使得Bm29-C與病毒基因組中的Bm29基因發(fā)生同源重組。進行藍白斑篩選,并做PCR、雙酶切鑒定和測序(圖1)。

為了驗證Bm29基因是否被敲除,用不同的引物組合進行PCR鑒定。所用的驗證引物分別為Bm29-F(5'-CGCTGCAGGATTGTTTATGA-3')和Bm29-R(5'-TTACACCCGCCTAAGTGCGTGC-3')、Bm29-F和cat-R(5'-CAATATGGACAACTTCTTCG-3')、cat-F(5'-CAATATGGACAACTTCTTCG-3')和Bm29-R。

圖1 Bm29基因敲除型構建策略

1.2.2 Bm29基因的補回型的構建

將Bm29基因補回至Bm29-KO-Bacmid中,需構建重組質粒pFastBac1-Bm29,并利用Bac-to-Bac系統(tǒng)將Bm29基因異位補回到多角體啟動子下(圖2)。

圖2 Bm29基因補回型構建策略

根據(jù)Bm29基因的序列并在上下游插入酶切位點Eco RⅠ和Bam HⅠ,來設計引物。引物分別pFB-Bm29-R線為酶切位點Eco RⅠ)及pFB-Bm29-F(5'-為酶切位點Bam HⅠ)。以wtBacmid為模板,pFBBm29-F和pFB-Bm29-R為引物進行PCR擴增。純化后的PCR產(chǎn)物與載體pFastBac 1分別用EcoRⅠ和Bam HⅠ進行雙酶切。連接產(chǎn)物,并進行藍白斑篩選。對重組質粒pFastBac1-Bm29進行雙酶切和PCR鑒定,并測序。將重組成功的質粒轉化至DH10Bac感受態(tài)細胞(Bm29缺失型病毒)中,Bm29基因重新補回Bm29-KO-Bacmid中,獲得補回型Bm29-Re-Bacmid。

為了鑒定是否成功補回,利用M13和Bm29基因特異性引物對Bm29-KO-Bacmid和Bm29-Re-Bacmid進行PCR,引物組合分別為M13-F(5'-GTTTTCCCAGTCACGAC-3')和M13-R(5'-CAGGAAA CAGCTATGAC-3')、M13-F和pFB-Bm29-R、PFBBM29-F和M13-R。

2 結果與分析

2.1 鑒定Bm29基因的敲除

PCR鑒定Bm29基因是否敲除成功,結果如圖3。結果顯示Bm29-F和Bm29-R為引物的擴增產(chǎn)物大小約為1 600 bp;Bm29-F和cat-R為引物的擴增產(chǎn)物大小約為460 bp;cat-F和Bm29-R為引物的擴增產(chǎn)物大小約為1 100 bp;以上結果表明已成功將Bm29基因從Bcmid基因組中敲除。

圖3 敲除Bm29的PCR鑒定

2.2 鑒定Bm29基因的補回

圖4 補回型Bm29的PCR鑒定

PCR鑒定Bm29基因是否正確補回。結果如圖4。以M13-F和M13-R為引物的擴增產(chǎn)物大小約為2 300 bp;以M13-F和pFB-Bm29-R為引物的擴增產(chǎn)物大小約為3 000 bp;以pFB-Bm29-F和M13-R為引物的擴增產(chǎn)物大小約1 360 bp,均與理論值相符。表明Bm29基因已成功補回。

3 小結和討論

研究桿狀病毒基因的功能需要將目的基因失活,利用Red重組系統(tǒng)[10-14]只要50 bp左右的同源臂即可介導外源基因與目的基因發(fā)生同源重組。這種方法不需要體外酶切反應,也不存在其他堿基突變的危險,是一個簡單、快速、高效的基因敲除系統(tǒng)[15]。

本文利用Bac-to-Bac系統(tǒng)構建補回型病毒,通過PCR鑒定敲除和補回型的Bm29基因,為后續(xù)的基因功能研究奠定基礎。

[1] 郭忠建,姚勤,王海燕,等.利用Red系統(tǒng)快速敲除家蠶核型多角體病毒orf60基因[J].生物工程學報,2007,23(5):801-805.

[2] Jehle JA,Blissard G,Bonning B,et al.On the classification and nomenclature of baculoviruses:a proposal for revision[J]. Archives of Virology,2006,151(7):1257-1266.

[3] O'Reilly D R,M iller L K,Luckow V A.Baculovirus expression vectors:a laboratory manual[M].New York:Oxford University Press,1994.

[4] 張雪,溫廷益.Red重組系統(tǒng)用于大腸桿菌基因修飾研究進展[J].中國生物工程雜志,2008,28(12):89-93.

[5] 李樊,劉義,何鋼.基因敲除技術研究進展[J].生物技術通報,2008(2):80-82.

[6] Lin G,Blissard G W.Analysis of an Autographa californica multicapsid nucleopolyhedrovirus lef-6-null virus:LEF-6 is not essen tial for viral replication bu t appears to accelerate late gene transcription[J].Journal of Virology,2002,76(11):5503-5514.

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[15] 王軍平,張友明.Red/ET重組及其在生物醫(yī)學中的應用[J].生物工程學報,2005,21(3):502-506.

(責任編輯:張 韻)

S 884.5

:A

:0528-9017(2014)10-1624-03

文獻著錄格式:王蓉.快速敲除補回家蠶核型多角體病毒ORF29[J].浙江農(nóng)業(yè)科學,2014(10):1624-1626.

2014-08-21

王 蓉(1989-),女,安徽當涂人,碩士研究生,主要從事基因表達與調控研究工作。E-mail:wangrong_8912 @163.com。

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