陳江山,胡 臣,馮陳龍,李 佳
(武漢工業(yè)學(xué)院生物與制藥工程學(xué)院,湖北武漢 430023)
蓮藕(Nelumba nucifera)系睡蓮科(Nymphaeaceae)蓮屬(Nelumbo)多年生大型水生草本植物,在我國(guó)分布及栽培極為廣泛,以湖北、江蘇、安徽等省種植面積最大,是我國(guó)重要的水生蔬菜之一。蓮藕營(yíng)養(yǎng)豐富,含淀粉、蛋白質(zhì)、鈣、鐵及多種維生素等,具有很高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值。此外其果實(shí)、種子、花、葉、地下莖各部分均為重要的傳統(tǒng)中藥材[1]。目前,我國(guó)蓮藕栽培大多采用種藕繁殖,其繁殖系數(shù)較低(1∶10)[2-3],且容易積累病菌,影響生長(zhǎng),甚至品種退化[4]。而采用組織培養(yǎng)技術(shù)[5-6]可有效除菌,提高蓮藕的繁殖系數(shù)。本文通過(guò)對(duì)蓮藕頂芽及側(cè)芽外植體的直接誘導(dǎo)方式獲得了不定芽[7],為大規(guī)??焖俜敝成徟褐仓昙斑M(jìn)一步的研究奠定了基礎(chǔ)。
供試蓮藕品種為鄂蓮五號(hào)“3735”[8],由湖北省武漢市東西湖區(qū)吳家山西湖大隊(duì)提供。于3—4月間栽種期,取藕頭飽滿、頂芽完整的種藕為試材。
1.2.1 材料處理
選取頂芽與側(cè)芽,將其外部葉片剝?nèi)ィ谧詠?lái)水下沖洗干凈,然后在無(wú)菌條件下用75%的酒精消毒30 s,隨即放入0.1%升汞溶液中處理15 min,用無(wú)菌水漂洗4次,縱切成0.3—0.5 cm3的外植體,接種到培養(yǎng)基上進(jìn)行培養(yǎng)。
1.2.2 培養(yǎng)基
(1)不定芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基。以MS為基本培養(yǎng)基,附加不同濃度的 6-BA、NAA、IBA,pH 調(diào)至5.8—6.0,蔗糖3%,添加不同濃度的瓊脂粉或Gelrite,以及不同濃度的活性炭,組成各種培養(yǎng)基[9](見(jiàn)表1)。
(2)分化培養(yǎng)基。以MS為基本培養(yǎng)基,附加不同濃度的 6-BA、NAA,pH 調(diào)至 5.8—6.0,蔗糖3%,添加0.2%Gelrite,組成各種培養(yǎng)基(見(jiàn)表2)。
表1 蓮藕不定芽誘導(dǎo)培養(yǎng)正交設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果
1.2.3 培養(yǎng)條件
溫度為25±2℃,每天照光16 h,光照強(qiáng)度為1 000—2 000 Lux的培養(yǎng)室中培養(yǎng)。
將蓮藕的頂芽和側(cè)芽縱切成0.3—0.5 cm3的外植體,按照表1所示的正交設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn),接種在不同濃度配比的不定芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基中初代培養(yǎng),10 d左右可見(jiàn)不定芽萌發(fā),但萌發(fā)結(jié)果差異較大。40 d后統(tǒng)計(jì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),結(jié)果如表1所示。實(shí)驗(yàn)表明不同外源激素濃度對(duì)蓮藕莖尖不定芽的誘導(dǎo)有較大的影響。
2.1.1 不定芽誘導(dǎo)率結(jié)果分析
經(jīng)過(guò)正交分析顯示,比較極差(R值)大小,對(duì)誘導(dǎo)率的影響力由大到小為6-BA>固化劑>NAA>IBA>活性炭。由此可以看出,6-BA的濃度水平的變化對(duì)蓮藕不定芽的誘導(dǎo)起主導(dǎo)作用,其影響極差(R值)可達(dá)58.325,比較K值,其作用效果為K1最小,K4最大,因此隨著6-BA的濃度增加,誘導(dǎo)率也明顯增加。其次為固化劑的影響,其作用效果值從大到小為K3>K4>K2>K1,可見(jiàn)添加Gelrite比添加瓊脂粉,對(duì)不定芽的誘導(dǎo)更有利,然而并不是濃度越高效果越好,其最佳濃度為0.2%。NAA的添加也對(duì)不定芽的誘導(dǎo)起到明顯的作用,其R值為14.975,而K2值最大,說(shuō)明添加低濃度的NAA對(duì)不定芽的誘導(dǎo)更為有利。IBA和活性炭對(duì)誘導(dǎo)率的影響不大,其極差分別為10和6.7。
綜合考慮各種因素的影響,從誘導(dǎo)率的結(jié)果看,實(shí)驗(yàn)12和14的效果最好,均達(dá)到93.3%,其次為實(shí)驗(yàn)13,結(jié)果為86.7%。
2.1.2 不定芽誘導(dǎo)數(shù)目情況分析
表1的正交分析結(jié)果顯示,對(duì)不定芽的誘導(dǎo)平均數(shù)影響的極值,從大到小為:6-BA>NAA>固化劑>活性炭>IBA。6-BA濃度大小的影響仍然最為顯著,R值為 1.077,而 K值顯示,K3最大,為1.89,說(shuō)明1.0 mg/L6-BA 對(duì)不定芽數(shù)的誘導(dǎo)效果最佳。其次,NAA的添加也對(duì)不定芽的平均個(gè)數(shù)有較大的影響,其作用效果為K3最大。此外,固化劑的使用也影響不定芽的數(shù)目,從K值可以看出,添加Gelrite比添加瓊脂粉更能促進(jìn)不定芽的誘導(dǎo)數(shù)目。同樣,IBA和活性炭的添加對(duì)平均個(gè)數(shù)影響不大。
不定芽誘導(dǎo)平均數(shù)最高的實(shí)驗(yàn)組為11號(hào),可達(dá)2.75,而實(shí)驗(yàn)7、12、16 號(hào)均達(dá)到2 以上。
綜合對(duì)誘導(dǎo)率和不定芽平均數(shù)的分析結(jié)果,初步認(rèn)為是否添加IBA和活性炭對(duì)蓮藕不定芽的誘導(dǎo)影響不大,考慮可以在今后的實(shí)驗(yàn)中去除。
2.1.3 不定芽狀態(tài)分析
誘導(dǎo)出的不定芽的狀態(tài)情況見(jiàn)表1所示。
當(dāng)6-BA濃度較低,0或0.5 mg/L時(shí),外植體易出現(xiàn)愈傷組織,其結(jié)構(gòu)疏松。而當(dāng)6-BA濃度較高,達(dá)到1.5 mg/L時(shí),外植體普遍出現(xiàn)結(jié)節(jié)狀硬塊,結(jié)構(gòu)致密,不易分化成苗,此外,我們還實(shí)驗(yàn)了2.0 mg/L的濃度,同樣出現(xiàn)這種現(xiàn)象,且情況更為嚴(yán)重。當(dāng)6-BA濃度為1.0 mg/L時(shí),不定芽較為粗壯,顏色嫩綠,狀態(tài)較好。
NAA對(duì)不定芽狀態(tài)的影響同樣較為顯著,當(dāng)其與6-BA的相對(duì)濃度較高時(shí),外植體易出現(xiàn)愈傷組織,因此,選擇較為合適濃度的NAA對(duì)于不定芽的狀態(tài)調(diào)整極為重要。
固化劑的選擇也影響著不定芽的狀態(tài),我們發(fā)現(xiàn)當(dāng)使用瓊脂粉作為固化劑時(shí),外植體易褐化,誘導(dǎo)形成的不定芽往往呈現(xiàn)暗綠色,不易成活,而使用Gelrite后,則情況有所改觀,不定芽普遍呈現(xiàn)嫩綠色,易于成活。若同時(shí)使用活性炭,則效果更佳。
將誘導(dǎo)培養(yǎng)產(chǎn)生的不定芽進(jìn)行切分,并接種入分化培養(yǎng)基中,25 d后統(tǒng)計(jì)結(jié)果,如表2所示。
表2 蓮藕不定芽分化培養(yǎng)結(jié)果
結(jié)果表明,6-BA對(duì)不定芽分化的存活率以及生長(zhǎng)情況相較于NAA均有較大影響,其R值分別為74.966 和 0.576,而 NAA 的分別為 11.100 和0.153。隨著6-BA濃度的增加,存活率明顯提高,然而當(dāng)濃度較高時(shí)(2.0 mg/L),不定芽粗壯而伴有硬塊,色暗綠。而當(dāng)NAA濃度升高時(shí),則常伴有少量愈傷組織發(fā)生,從而影響不定芽的生長(zhǎng)。因此基于不定芽分化的結(jié)果分析,初步認(rèn)為最佳的激素配比應(yīng)為:1.0 mg/L的 6-BA 加 0.05 mg/L的NAA。
在蓮藕不定芽的誘導(dǎo)和分化過(guò)程中,6-BA的作用效果比NAA更為顯著,說(shuō)明在一定范圍內(nèi),細(xì)胞分裂素對(duì)蓮藕芽的生長(zhǎng)起決定作用。然而,隨著其濃度的升高,培養(yǎng)組織易產(chǎn)生結(jié)節(jié)狀硬塊,因此,選擇適當(dāng)?shù)臐舛仁堑玫礁哔|(zhì)量芽的關(guān)鍵。
莖尖培養(yǎng)的最大特點(diǎn)是可獲得脫病毒苗。據(jù)李良俊等[10]研究認(rèn)為,對(duì)蓮藕不同生長(zhǎng)時(shí)間取材進(jìn)行比較后發(fā)現(xiàn),取材于萌發(fā)時(shí)期的蓮藕外植體,轉(zhuǎn)綠和分化百分率均為最高,而取材于休眠期的外植體的轉(zhuǎn)化率最低僅為8.8%,而且轉(zhuǎn)綠的外植體幾乎不能進(jìn)一步分化。我們的實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),取材于萌發(fā)時(shí)期的野生蓮藕外植體。切取不同大小的莖尖培養(yǎng)時(shí),所獲取無(wú)菌苗的比率與莖尖的大小成反比,愈接近莖尖的頂端,帶病原菌的可能性就越少,所以我們采用的材料為較小的莖尖頂端。
此外,我們還發(fā)現(xiàn),在蓮藕的組織培養(yǎng)過(guò)程中,其外植體極易褐化,尤其在初代培養(yǎng)時(shí),原因可能與蓮藕中多酚氧化酶(PPO)的活性有關(guān)[11-12]。PPO在有氧氣的情況下可催化多酚類物質(zhì)[13]氧化成醌,醌再聚合成有色物質(zhì),導(dǎo)致蓮藕褐化[14]。因此,我們?cè)趯?shí)驗(yàn)中采取了多種方法抑制蓮藕外植體的褐化。首先,在切取外植體后應(yīng)迅速接種,避免長(zhǎng)時(shí)間暴露在空氣中;其次,我們?cè)诔醮囵B(yǎng)時(shí),加入適量的活性炭,可吸附部分醌類;我們還發(fā)現(xiàn)使用Gelrite代替瓊脂作為固化劑可明顯抑制褐化的產(chǎn)生,可能是由于Gelrite成分單純,雜質(zhì)少,滲透性強(qiáng),使產(chǎn)生的醌更快擴(kuò)散開(kāi)的緣故;若褐化較為嚴(yán)重,我們也嘗試采用抗壞血酸溶液浸泡外植體,可明顯改善褐化現(xiàn)象。一般來(lái)說(shuō),初代培養(yǎng)比繼代培養(yǎng)褐化比例高,只要度過(guò)初代培養(yǎng),后期可不必采取抑制褐化措施,只要注意及時(shí)更換新鮮培養(yǎng)基即可。
[1]張福建 、王峰.蓮藕組織培養(yǎng)與現(xiàn)狀與展望文獻(xiàn)[J].上海農(nóng)業(yè)科技,2000(4):10.
[2]彭靜,柯衛(wèi)東,劉玉平,等.蓮藕組織培養(yǎng)及快速繁殖[J].植物生物學(xué)報(bào)通訊,2001(B8).
[3]張福建 ,王峰.蓮藕組織培養(yǎng)與微繁殖技術(shù)初探文獻(xiàn)[J].上海農(nóng)業(yè)科技,2002.6.
[4]王志敏,宋明.蓮藕脫毒快繁研究進(jìn)展[J].種子,2003(1).
[5]何子燦.蓮胚愈傷組織誘導(dǎo)及植株再生的研究[J].水生生物學(xué)報(bào),1987,11(3):278-280.
[6]曹孜義.實(shí)用植物組織培養(yǎng)技術(shù)教程[M].蘭州:甘肅科學(xué)技術(shù)出版社,1998.
[7]于文進(jìn),龍明華,徐烔志.蓮藕組織培養(yǎng)及快速繁殖實(shí)驗(yàn)研究[J].廣西熱作科技,1999.2.
[8]柯衛(wèi)東,傅新發(fā).蓮藕部分種質(zhì)資源數(shù)量性狀聚類分析與育種應(yīng)用[J].園藝學(xué)報(bào),2000(5).
[9]湯泳萍,羅紹春,占豐溪,等.廣昌太空蓮組培快繁研究初報(bào)[J].江西農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào),2001,13(4):58-61.
[10]李良俊,李式軍,曹陪生,等.僵藕的發(fā)生與礦質(zhì)營(yíng)養(yǎng)關(guān)系的研究[J].園藝學(xué)報(bào),2003,30(4):467-469.
[11]崔堂兵,郭勇,張長(zhǎng)遠(yuǎn).植物組織中褐變現(xiàn)象的產(chǎn)生機(jī)理及克服方法[J].廣東農(nóng)業(yè)學(xué),2001(3).
[12]陳桂芳,,類利華.植物組織培養(yǎng)中兒個(gè)常見(jiàn)的技術(shù)問(wèn)題[J].重慶林業(yè)科技,2003(4).
[13]黃建韶,宏現(xiàn).蓮藕中多酚氧化酶的性質(zhì)[J].吉首大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2002,6(2):82.
[14]何士敏,秦家順,李鵬.蓮藕多酚氧化酶的催化特性檢測(cè)2011,24(1):75-79.