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黑曲霉固體發(fā)酵法提取燕麥麩中β-葡聚糖

2013-09-19 08:53:26良,田晶,徐權,于
大連工業(yè)大學學報 2013年3期
關鍵詞:麥麩黑曲霉葡聚糖

張 玉 良,田 晶,徐 龍 權,于 淼

(1.大連工業(yè)大學 生物工程學院,遼寧 大連 116034;2.大連美羅大藥廠,遼寧 大連 116036)

0 引 言

常用的β-葡聚糖提取方法包括化學法和物理法,這些方法往往會溶解掉部分可溶性纖維,而可溶性纖維卻是膳食纖維中起重要生理功能的部分[1]。應用生物技術方法可以有效提取水溶性β-葡聚糖,通過啤酒酵母、酒精酵母、黃酒酵母和釀酒酵母發(fā)酵來提取燕麥麩中的β-葡聚糖均能使提取率提高[2]。黑曲霉發(fā)酵產(chǎn)生多種活性很高的酶系,如淀粉酶、果膠酶、蛋白酶等[3],可利用黑曲霉的這些性質,在發(fā)酵燕麥麩的過程中有效去除果膠、淀粉等雜質,從而提高β-葡聚糖純度。目前尚未見黑曲霉發(fā)酵法提取燕麥麩中β-葡聚糖的報道。本研究嘗試采用具有淀粉酶、果膠酶等豐富酶系的黑曲霉發(fā)酵的方法來提取燕麥麩中的β-葡聚糖。

1 材料與方法

1.1 主要材料、菌種、培養(yǎng)基

燕麥麩,大連醫(yī)諾生物有限公司提供;黑曲霉(Aspergillusniger)sp.48s,由大連工業(yè)大學菌種保藏所提供;察氏培養(yǎng)基,0.1MPa滅菌15min。

1.2 方 法

1.2.1 黑曲霉種子液的制備

將斜面上的黑曲霉菌體用接菌環(huán)接于液體培養(yǎng)基中,充分搖勻后放入水浴恒溫搖床中30℃、160r/min振蕩培養(yǎng)。

1.2.2 燕麥麩固體發(fā)酵方法

取燕麥麩20g于250mL錐形瓶中,滅菌后倒入種子液,攪拌均勻,置于30℃恒溫培養(yǎng)箱中發(fā)酵,每隔2h搖瓶一次。在發(fā)酵過程中,首先對黑曲霉的菌齡、接種量、發(fā)酵溫度、培養(yǎng)時間等條件進行單因素試驗,在此基礎上,通過正交試驗確定燕麥麩中β-葡聚糖的最佳提取工藝。

1.2.3 燕麥麩中β-葡聚糖的提取

將發(fā)酵后的燕麥麩在200mL pH 10的堿液80℃下浸提2h,離心后用95%乙醇醇析,干燥,得到β-葡聚糖產(chǎn)品。對在最佳條件下得到的β-葡聚糖進行二次醇析。

1.2.4 剛果紅法檢測β-葡聚糖含量

稱取0.2g產(chǎn)品倒入40mL去離子水中,加熱充分溶解,4 000r/min離心20min;取上清液5mL稀釋600倍,從稀釋液中取6mL于比色管中,加入4mL剛果紅顯色,反應30min,于紫外分光光度計550nm下檢測吸光度。通過標準曲線計算出產(chǎn)品純度。

提取率=β-葡聚糖產(chǎn)品質量/原料總質量

純度=產(chǎn)品中β-葡聚糖的質量/產(chǎn)品總質量

1.2.5 瓊脂糖凝膠柱層析法測定β-葡聚糖的相對分子質量

通過對 Dextran系列標準品 T-70、T-500、T-2000及β-葡聚糖產(chǎn)品進行凝膠色譜分析,繪制出標準曲線,計算得出β-葡聚糖相對分子質量。

1.2.6 β-葡聚糖黏度的測定

根據(jù)GB 10247—1988采用烏氏黏度計測定β-葡聚糖水溶液的黏度。將β-葡聚糖溶解后稀釋到質量分數(shù)為0.02%,以去離子水作為參照樣,分別測量30、40、50、60、70、80℃試驗所得產(chǎn)品及市售產(chǎn)品水溶液的黏度。

2 結果與討論

2.1 種子液菌齡對產(chǎn)品純度的影響

在菌體轉接到液體培養(yǎng)基時起,分別從種子液中取生長時間為7、10、13、17、20h的種子液20mL,接入20g燕麥麩進行發(fā)酵,培養(yǎng)溫度30℃,發(fā)酵時間17h,考察種子液菌齡對產(chǎn)品純度的影響,結果如表1所示。種子液菌齡在10h時產(chǎn)品純度最高,因此將種子液菌齡定為10h。

表1 種子液菌齡對產(chǎn)品純度的影響Tab.1 Effect of Aspergillus niger age on purity of product

2.2 接菌量對產(chǎn)品純度的影響

分別選取5、10、15、20、25mL種子液對燕麥麩進行發(fā)酵,考察接菌量對產(chǎn)品純度的影響,結果如表2所示??梢钥闯觯斀泳枯^少時β-葡聚糖的純度極低,說明當接菌量過少,菌體產(chǎn)酶不足,無法充分發(fā)酵燕麥麩,導致產(chǎn)品純度低;當接菌量增加到15mL時,β-葡聚糖的純度有顯著提高;加大接菌量后,β-葡聚糖的純度沒有進一步提高,反而略有下降。因此,15mL為最適接菌量。

表2 接菌量對產(chǎn)品純度的影響Tab.2 Effect of volume of seed-liquid on purity of product

2.3 發(fā)酵溫度對產(chǎn)品純度的影響

分別在20、25、30、35、40℃發(fā)酵燕麥麩17h,考察發(fā)酵溫度對產(chǎn)品純度的影響,結果如圖1所示。由圖1可見,黑曲霉在30℃時發(fā)酵燕麥麩得到的β-葡聚糖產(chǎn)品純度最高,為43.99%。

圖1 發(fā)酵溫度對產(chǎn)品純度的影響Fig.1 Effect of fermentation temperature on purity of product

2.4 發(fā)酵時間對產(chǎn)品純度的影響

在種子液菌齡10h、用菌量為15mL、發(fā)酵溫度30℃條件下考察發(fā)酵時間對產(chǎn)品純度的影響,結果如圖2所示。隨著發(fā)酵時間的延長,產(chǎn)品的純度提高,發(fā)酵時長10h為最高,繼續(xù)加長發(fā)酵時間,產(chǎn)品純度降低。這說明當發(fā)酵時長超過10h,黑曲霉中果膠酶、淀粉酶等酶活力降低,除雜效果不佳。

圖2 發(fā)酵時間對產(chǎn)品純度的影響Fig.2 Effect of fermentation period on purity of product

2.5 正交試驗確定發(fā)酵條件

通過以上試驗可以看出,種子液的菌齡、接菌量、發(fā)酵溫度、發(fā)酵時間等條件都對發(fā)酵結果有較大影響,因此做多因素水平的正交試驗來確定最佳試驗條件,結果如表3、表4所示。發(fā)酵因素的主次關系依次為種子液菌齡、用菌量、發(fā)酵時間、發(fā)酵溫度,其中發(fā)酵溫度的影響因素最小。最適發(fā)酵條件為:種子液菌齡10h,發(fā)酵時間10h,發(fā)酵溫度30℃,用菌量15mL。

表3 正交試驗水平因素表Tab.3 Factor and level table of orthogonal experiment

表4 正交試驗條件與結果表Tab.4 Conditions and results of orthogonal experiment

2.6 提取條件的驗證

將20g燕麥麩接入15mL種子液(種子液的菌齡為10h),30℃發(fā)酵10h,提取到的產(chǎn)品采用剛果紅法檢測,經(jīng)二次醇析后,β-葡聚糖提取率為6.28%,純度為52.53%。

2.7 β-葡聚糖相對分子質量以及黏度的測定

2.7.1 相對分子質量

相對分子質量是β-葡聚糖的一個重要特性,直接影響β-葡聚糖的溶解性、黏度及其生理活性。根據(jù)“1.2.5”中所述方法,由線性回歸方程y=-0.019 2x+7.710 4計算出本產(chǎn)品的相對分子質量為2.8×106。該結果與Wood等[4]報道的β-葡聚糖相對分子質量3.0×106較接近,而Bhatty等[5]報道的結果為2.0×106。綜合近年來的報道,由于提取方法、提取條件以及相對分子質量測定方法的不同,得到β-葡聚糖的相對分子質量分布范圍也不盡相同。

2.7.2 黏 度

考察溫度對β-葡聚糖溶液黏度的影響,結果如圖3所示。由圖3看出,隨著溫度的升高,β-葡聚糖的黏度降低。產(chǎn)品黏度水平與市售燕麥麩中提取的β-葡聚糖相當。說明采用黑曲霉固體發(fā)酵法提取到的β-葡聚糖具有較好的熱穩(wěn)定性。

圖3 溫度對β-葡聚糖溶液黏度的影響Fig.3 Effect of temperature on viscosity ofβ-glucan

3 結 論

采用黑曲霉發(fā)酵燕麥麩提取β-葡聚糖,可得到較高純度水溶性膳食纖維,最佳提取條件為:種子液菌齡10h,用菌量15mL,發(fā)酵溫度30℃,發(fā)酵時間10h。所得燕麥麩中β-葡聚糖的相對分子質量為2.8×106,提取率為6.28%,純度為52.53%,產(chǎn)品穩(wěn)定性較好。

[1]章海燕,張暉,王立,等.燕麥β-葡聚糖的研究進展[J].糧食與食品工業(yè),2009,16(6):8-12.

[2]潘妍,何聰芬,韓揚,等.發(fā)酵法提取燕麥β-葡聚糖的初步探索[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2009,35(4):116-118.

[3]王宜雷.微生物學[M].北京:化學工業(yè)出版社,2010:39-44.

[4]WOOD P J,WEISZ J,BLACKWELL B A.Molecular characterization of cereal beta-D-glucans.Structural analysis of oat beta-D-glucan and rapid structural evaluation of beta-D-glucans from different sources by high-performance liquid chromatography of oligosaccharides released by lichenase[J].Cereal Chemistry,1991,68:31-39.

[5]BHATTY R S.Laboratory and pilot plant extraction and purification ofβ-glucan from hulless barley and oat brans[J].Journal of Cereal Science,1995,22:163-170.

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