劉 琪,潘翠翠,徐 新,張彥懿,吳小候,羅春麗*
(重慶醫(yī)科大學1.檢驗醫(yī)學院臨床檢驗診斷學教育部重點實驗室重慶市重點實驗室;2.附屬第一醫(yī)院泌尿外科,重慶400016)
腫瘤發(fā)生的分子機制主要有3種類型:基因突變、基因缺失和表觀遺傳學改變[1]。而表觀遺傳學改變又主要包括DNA甲基化、組蛋白乙酰化和組蛋白甲基化[2]。其中DNA甲基化改變分為全基因組水平的低甲基化和 CpG島 DNA高甲基化[3];CpG島的異常高甲基化主要發(fā)生于抑癌基因啟動子區(qū)域。故抑癌基因在腫瘤中的失活可歸結(jié)于其基因啟動子區(qū)域CpG島的異常高甲基化。
DNA甲基化由DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMT)催化形成,是在不改變核酸序列的情況下,調(diào)節(jié)基因表達的不可逆過程[4]。5-氮-2'脫氧胞苷(5-aza-2'-deoxycytidine,5-aza-CdR)是DNMT的抑制劑,可以逆轉(zhuǎn)抑癌基因的甲基化,使其重新表達[5]。在很多其他腫瘤研究中,例如結(jié)腸癌[6]、前列腺癌[7]等,5-aza-CdR都可在一定程度上逆轉(zhuǎn)抑癌基因的甲基化并抑制腫瘤生長。肝細胞黏附分子(hepatocyte cell adhesion molecule,hepaCAM),作為一個抑癌基因,在膀胱癌中表達低下,并且在體外研究中發(fā)現(xiàn)hepaCAM具有抑制膀胱癌生長的作用[8-9]。因此,本研究以hepaCAM為出發(fā)點,探究5-aza-CdR是否也能逆轉(zhuǎn)hepaCAM基因在膀胱癌細胞中的表達,并與hepaCAM一起發(fā)揮抑制腫瘤生長的作用。
人膀胱癌細胞T24(重慶醫(yī)科大學傳染病研究所惠贈),BIU-87細胞系(武漢大學細胞庫)。5-aza-CdR、MTT試劑和二甲基亞砜(DMSO)(Sigma公司);RNA提取試劑盒Trizol和RT-PCR試劑盒(大連寶生物工程);PCR引物(Invitrogen公司);細胞培養(yǎng)基RPMI1640和新生牛血清(Gibco公司);細胞凋亡檢測試劑(重慶醫(yī)科大學兒研所流式細胞實驗室提供)。
1.2.1 細胞培養(yǎng):T24和BIU-87細胞培養(yǎng)于含有10%新生牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基中,37℃、5%CO2飽和濕度條件下培養(yǎng)。將細胞以1×106個/孔的密度種于6孔板中,待細胞生長匯合度達到80%~90%,按照總 RNA提取步驟提取 RNA,保存于-80℃,為后續(xù)實驗準備。
1.2.2 四甲基偶氮唑鹽比色法(MTT法)檢測5-aza-CdR對T24和BIU-87細胞增殖的影響:取對數(shù)期生長的T24和BIU-87細胞,經(jīng)胰蛋白酶消化制成細胞懸液,調(diào)整細胞濃度為1×104個/mL,接種于96孔板中,最后補充培養(yǎng)基至200 μL。每組設(shè)5個復孔,同時接種3個96孔板,37℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。實驗分為6組:T24(調(diào)零組、未處理組、0.3、1.0、3.0 和10.0 μmol/L),BIU-87(調(diào)零組、未處理組、0.1、0.5、1.0 和5.0 μmol/L)。加藥后3個板分別繼續(xù)培養(yǎng)24、48和72 h。棄上清,每孔加入20 μL的MTT(5 g/L)繼續(xù)培養(yǎng)4 h后,小心吸去上清,加入 DMSO 200 μL,振蕩孵育15 min,全自動酶標儀(570 nm)檢測各孔的吸光度(A值)。計算各組細胞生長抑制率,公式如下:抑制率(%)=[1-(A處理-A調(diào)零)/(A對照-A調(diào)零)] ×100%。
1.2.3 反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)檢測hepaCAM mRNA的表達:分別用不同濃度的5-aza-CdR處理T24和BIU-87細胞,未用藥物處理作為對照,培養(yǎng)24、48和72 h后收集細胞,提取RNA,用反轉(zhuǎn)錄試劑盒將mRNA逆轉(zhuǎn)為cDNA,RT-PCR檢測5-aza-CdR處理前后T24和BIU-87細胞中hepaCAM表達的變化。PCR反應(yīng)條件:hepaCAM:95℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸1 min共35個循環(huán);72℃繼續(xù)延伸5 min。β-actin:95℃預(yù)變性5 min;94℃ 變性30 s,56 ℃ 退火30 s,72℃ 延伸1 min,共30個循環(huán);72℃繼續(xù)延伸5 min。hepaCAM上游引物是5'-AGCGGGAAATCGTGCGTG-3',下游引物是5'-CTTCTGGTTTCAGGCGGTC-3',擴增產(chǎn)物為461 bp。β-actin上游引物是5'-ACGAGACCACCT TCAACTCCATC-3',下游引物是5'-TAGAAGCATTTG CGGTGGACGA-3',擴增產(chǎn)物片斷為307 bp。
1.2.4 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡:收集細胞,固定于70%冷乙醇(in PBS)中,4℃固定過夜,磷酸二氫鹽緩沖液(PBS)洗滌,1 000 r/min離心10 min,RNase A(0.5 g/L)37℃ 消化30 min,加入 PI(50 g/L)染色,室溫避光15 min,F(xiàn)ACScan分析DNA亞2倍體的形成及細胞凋亡的變化。
5-aza-CdR呈劑量依賴性抑制了T24與BIU-87細胞的增殖。在T24與BIU-87細胞中,藥物處理細胞72 h的抑制率明顯高于24和48 h(P<0.05)(圖1)。
經(jīng)5-aza-CdR處理T24和BIU-87細胞后,hepaCAM表達呈劑量依賴性和時間依賴性 (圖2,表1,2)。
5-aza-CdR處理T24和BIU-87細胞后,明顯增加了凋亡細胞數(shù),呈時間依賴性(P<0.05)(圖3)。
2010年,全球新增35.7萬個膀胱癌病例,并有14.5萬個人死于膀胱癌。90%以上的膀胱癌為移行細胞癌(transitional cell carcinoma of the bladder,TCCB),5% 為鱗狀細胞癌,2% 為腺癌[10-11]。75%的TCCB為非肌肉侵襲性的,具有高復發(fā)率,且容易發(fā)展為高度惡性腫瘤[12];而肌肉侵襲性 TCCB(25%)預(yù)后不良[13],經(jīng)過2年治療后,50%患者會發(fā)生腫瘤轉(zhuǎn)移[14]。盡管外科手術(shù)治療,膀胱內(nèi)免疫、化學治療,以及一些新型化療方法(如酪氨酸激酶抑制劑、抗血管生成藥物等)應(yīng)用于膀胱癌,但患者的生存率并未提高[14]。而在過去十幾年中,眾多研究都致力于尋找一種無創(chuàng)傷,特異性強并具有靶
向性的分子生物學治療方法。這個工程巨大、過程復雜、冗長,所以找到一種綜合性的方法,更是亟待解決的問題。
表1 5-aza-CdR作用不同時間對T24和BIU-87細胞hepaCAM mRNA的影響Table 1 The effect of 5-aza-CdR on expression of hepaCAM mRNA of T24 and BIU-87 cells in different times,A value,n=4)
表1 5-aza-CdR作用不同時間對T24和BIU-87細胞hepaCAM mRNA的影響Table 1 The effect of 5-aza-CdR on expression of hepaCAM mRNA of T24 and BIU-87 cells in different times,A value,n=4)
*P <0.05 compared with blank,24 or 48 hours.
group T24(3 μmol/L 5-aza-CdR) BIU-87(5 μmol/L 5-aza-CdR)blank 0.027±0.003 0.146±0.002 24 hours 0.032±0.001 0.098±0.003 48 hours 0.036±0.002 0.104±0.000 72 hours 0.716±0.008* 0.536±0.002*
表2 72 h時不同藥物濃度的5-aza-CdR對T24和BIU-87細胞hepaCAM mRNA的影響Table 2 The effect of different concentrations of 5-aza-CdR on expression of hepaCAM of T24 and BIU-87 cell lines for 72 hours,A value,n=5)
表2 72 h時不同藥物濃度的5-aza-CdR對T24和BIU-87細胞hepaCAM mRNA的影響Table 2 The effect of different concentrations of 5-aza-CdR on expression of hepaCAM of T24 and BIU-87 cell lines for 72 hours,A value,n=5)
#P <0.05 compared with blank or 0.3 or 1.0 μmol/L 5-aza-CdR;*P <0.05 compared with blank or 0.1 or 0.5 or 1.0 μmol/L 5-aza-CdR.
group T24 group BIU-87 blank 0.030±0.000 blank 0.196±0.002 5-aza-CdR 5-aza-CdR 0.3 μmol/L 0.028 ±0.001 0.1 μmol/L 0.197 ±0.006 1.0 μmol/L 0.037 ±0.002 0.5 μmol/L 0.178 ±0.002 3.0 μmol/L 0.164 ±0.008# 1.0 μmol/L 0.147 ±0.028 10.0 μmol/L 0.201 ±0.002# 5.0 μmol/L 0.647 ±0.007*
圖3 流式細胞技術(shù)檢測5-aza-CdR對T24和BIU-87細胞凋亡的影響Fig 3 The effect of 5-aza-CdR on apoptosis of T24 and BIU-87 cell lines was detected by FCM
5-aza-CdR是一種去甲基化藥物,可以抑制抑癌基因的甲基化,使眾多抑癌基因重新表達。迄今已有臨床Ⅰ,Ⅱ期試驗證實,在實體瘤中,如卵巢癌、雄激素依賴的前列腺癌、子宮頸癌等,5-aza-CdR難以達到預(yù)期的有效治療作用,后續(xù)的藥物效力仍在研究中;在血液的惡性腫瘤臨床Ⅰ,Ⅱ期實驗中,5-aza-CdR單劑量就對急性白血病有療效,對進展中的慢性粒細胞白血病有中等的療效[7]。但5-aza-CdR在膀胱癌中的研究和應(yīng)用甚少,故本研究先從體外實驗出發(fā),用不同濃度的5-aza-CdR處理膀胱癌T24和BIU-87細胞,發(fā)現(xiàn)5-aza-CdR可以抑制體外膀胱癌細胞的增殖,并可促使細胞凋亡;另一方面,從抑癌基因hepaCAM角度出發(fā),發(fā)現(xiàn)5-aza-CdR可使hepaCAM基因重新表達。hepaCAM自2005年發(fā)現(xiàn)以來,一直都在研究其結(jié)構(gòu)和功能[8-9],至于它在腫瘤組織中表達低下或缺失的原因研究較少。本研究發(fā)現(xiàn)5-aza-CdR可逆轉(zhuǎn) hepaCAM基因表達,而5-aza-CdR又是DNA甲基轉(zhuǎn)移酶的抑制劑,可逆轉(zhuǎn)抑癌基因的甲基化,那么5-aza-CdR使hepaCAM重新表達的原因是否會由于5-aza-CdR逆轉(zhuǎn)了抑癌基因hepaCAM的甲基化;5-aza-CdR對膀胱癌細胞的抑制作用也是否也源于hepaCAM基因的重新表達,或者是其單純的抑制作用,又或者有兩種機制一起作用,這些問題都需要進一步的研究。然而,5-aza-CdR應(yīng)用于膀胱癌,可使很大一部分的抑癌基因得到重新表達,從另個方面又增強了抑制腫瘤生長的作用,故設(shè)想若結(jié)合精確的手術(shù)治療,常規(guī)化療,以及新型的藥物治療,比如5-aza-CdR,可能會給膀胱癌治療帶來新的前景。
[1]Hanahan D,Weinberg RA.The hallmarks of cancer[J].Cell,2000,100:57 - 70.
[2]Jones PA,Baylin SB.The fundamental role of epigenetic events in cancer[J].Nat Rev Genet,2002,3:415 -428.
[3]Tao L,Wang W,Li L,et al.DNA hypomethylation induced by drinking water disinfection by-produe in mouse and rat kidney[J].Toxieol Sci,2005,87:344 -352.
[4]Strahl BD,Allis CD.The language of covalent histone modifications[J].Nature,2000,403:41 -45.
[5]Tamer E.Fandy.Development of DNA methyltransferase inhibitors for the treatment of neoplastic diseases[J].Curr Med Chem,2009,16:2075-2085.
[6]劉麗喬,羅達亞,付晶晶,等.5-aza-CdR對人結(jié)腸癌Caco-2細胞系P16基因甲基化狀態(tài)及其生物學表型的影響[J].基礎(chǔ)醫(yī)學與臨床,2011,31:161-165.
[7]J.Goffin,E.Eisenhauer.DNA methltransferase inhibitorsstate of the art[J].Ann Oncology,2002,13:1699 -1716.
[8]Zhang QL,Luo CL,Wu XH,et al.HepaCAM induces G1phase arrest and promotes c-Myc degradation in human renal cell carcinoma[J].J Cell Biochem,2011,112:2910-2919.
[9]He Y,Wu X,Luo C,et al.Functional significance of the hepaCAM gene in bladder cancer [J].BMC Cancer,2010,10:83 -89.
[10]Ehdaie B,Smith SC,Theodorescu D,et al.Personalized medicine in advanced urothelial cancer:when to treat,how to treat and who to treat[J].Can Urol Assoc J,2009,3:232-236.
[11]文進,李漢忠,紀志剛,等.蘋果酸舒尼替尼抑制膀胱癌T24細胞系的體外增殖[J].基礎(chǔ)醫(yī)學與臨床,2011,31:988-990.
[12] Epstein JI,Amin MB,Reuter VR,et al.The World Health Organization/International Society of Urological Pathology consensus classification of urothelial(transitional cell)neoplasms of the urinary bladder[J].Bladder Consensus Conference Committee.Am J Surg Pathol,1998,22:1435-1448.
[13]Lee R,Droller MJ.The natural history of bladder cancer.Implications for therapy[J].Urol Clin North Am,2000,27:1-13.
[14]Plissonnier ML,F(xiàn)auconnet S,Bittard H,et al.The antidiabetic drug ciglitazone induces high grade bladder cancer cells apoptosis through the up-regulation of TRAIL[J].PLoS One,2011,6:e28354.