代紅艷　于翠梅等

摘 要：【目的】探索以原核表達的草莓輕型黃邊病毒（SMYEV）外殼蛋白（CP）為抗原制備抗血清的方法，從而建立利用ELISA檢測SMYEV的技術(shù)體系?！痉椒ā坷肐PTG誘導(dǎo)SMYEV CP重組蛋白在大腸桿菌中表達，分離純化重組蛋白并以其為抗原對新西蘭兔進行免疫。血清效價達到要求后，分離純化抗血清并利用DAC-ELISA對草莓植株進行SMYEV檢測，同時利用RT-PCR對DAC-ELISA檢測結(jié)果進行驗證?！窘Y(jié)果】宿有SMYEV CP基因的大腸桿菌經(jīng)IPTG誘導(dǎo)后出現(xiàn)一條52.0 ku左右的特異性重組蛋白譜帶，以純化的重組蛋白為抗原制備出專一性較強的針對SMYEV的抗血清，該抗血清稀釋800倍后仍能有效檢測草莓植株中的SMYEV。利用DAC-ELISA和RT-PCR對26份草莓試材分別進行SMYEV檢測，2種檢測方法的檢測結(jié)果基本一致?！窘Y(jié)論】以原核表達的SMYEV CP為抗原可以制備出專一性較強、效價較高的SMYEV的抗血清。

關(guān)鍵詞： 草莓輕型黃邊病毒（SMYEV）； CP； 原核表達； 抗血清； ELISA

中圖分類號：S668.4 文獻標志碼：A 文章編號：1009-9980？穴2013？雪04-0578-04

草莓輕型黃邊病毒（Strawberry mild yellow edge virus， SMYEV）是一種嚴重危害草莓生產(chǎn)的病毒，通過蚜蟲持久性傳播，在世界上廣泛分布[1]。SMYEV歸屬于馬鈴薯X病毒屬（Potexvirus），其病毒粒子為線形，基因組為1條單鏈RNA，全長約6 000個核苷酸，包含5個開放閱讀框（ORF）[2]。隨著SMYEV在世界各地廣泛傳播，SMYEV生物學(xué)特性也不斷變化，不同分離物在不同草莓病毒指示植物上癥狀表現(xiàn)多樣，這為病毒鑒定、病害防治帶來了困難[3]。

病毒檢測是病毒研究的一項重要內(nèi)容，簡單、快速、靈敏的病毒檢測方法的建立對于病毒病的防治具有重要意義。早期檢測SMYEV的方法為指示植物小葉嫁接法，其周期長，檢測效率較低[1]。近年來，RT-PCR成為SMYEV檢測的主要方法[4-6]。利用RT-PCR檢測病毒具有靈敏度高、周期短、試材用量少等優(yōu)點，但是成本較高，而且對實驗室條件和操作人員的素質(zhì)要求也較高?；诳寡宓拿嘎?lián)免疫吸附分析（ELISA）是病毒檢測中常用的方法之一，具有快速、成本低廉、靈敏度高等優(yōu)點，可以大規(guī)模應(yīng)用于植物病毒的檢測[7]。應(yīng)用ELISA技術(shù)檢測病毒的前提條件是具有該病毒的抗血清。傳統(tǒng)的病毒抗血清制備是以純化病毒粒子為抗原，SMYEV在草莓植株內(nèi)含量較低，病毒粒子的純化很困難[8]。以原核表達病毒外殼蛋白（coat protein， CP）為基礎(chǔ)的抗血清制備，克服了傳統(tǒng)通過提純病毒粒子并以病毒粒子為抗原制備抗血清的種種弊端，并且能夠大量獲得特異性高的抗血清。這種技術(shù)已在柑橘速衰病毒（Citrus tristeza virus）[9]、沙地葡萄莖痘伴隨病毒（Rupestris stem pitting associated virus）[10]、蘋果褪綠葉斑病毒（Apple chlorotic leaf spot virus）[11]、蘋果莖痘病毒（Apple stem pitting virus）[12]等果樹病毒上獲得成功。

在克隆SMYEV分離物SY05的CP基因全長并實現(xiàn)在大腸桿菌中表達重組蛋白的基礎(chǔ)上[13]，我們從大腸桿菌細胞中純化SMYEV CP，并制備其抗血清，比較分析抗血清檢測病毒與RT-PCR檢測病毒的一致性與靈敏性，為通過ELISA技術(shù)大規(guī)模檢測SMYEV奠定基礎(chǔ)。

1 材料和方法

1.1 材料

用于SMYEV檢測方法比較分析的草莓試材有26份，分為兩類：一類是離體保存的試管苗，品種為‘布蘭登堡；另一類是草莓田間植株，包括25個品種。

1.2 SMYEV CP在原核細胞中誘導(dǎo)表達及電泳分析

1.3 抗血清制備

從菌液中分離純化重組蛋白，然后以重組蛋白為抗原對2只成年新西蘭兔進行免疫。初次免疫時將重組蛋白1 mL（1 g·L-1）與弗氏完全佐劑1∶1混勻后，用5 mL注射器進行背部多點注射。初次免疫后每2周加強免疫一次，加強免疫用同樣量重組蛋白與不完全弗氏佐劑1∶1混合后背部皮下多點注射。每次加強免疫后14～15 d，從耳緣靜脈取血液1 mL，常規(guī)方法分離血清，用間接ELISA法測定血清效價。血清效價達到要求后，取血并按照常規(guī)方法分離純化抗血清。

1.4 DAC-ELISA檢測SMYEV

1.5 RT-PCR檢測SMYEV

2 結(jié)果與分析

2.1 SMYEV原核表達產(chǎn)物的SDS-PAGE分析

2.2 SMYEV抗血清的制備

2.3 SMYEV抗血清在病毒檢測時的應(yīng)用效價

2.4 ELISA與RT-PCR檢測SMYEV效果比較

利用DAC-ELISA和RT-PCR分別對26份草莓材料進行SMYEV檢測。DAC-ELISA檢測結(jié)果顯示，3份草莓材料攜帶SMYEV，分別是：‘布蘭登堡、‘JA3田間苗和‘布蘭登堡組培苗。RT-PCR 檢測結(jié)果表明，3份ELISA檢測表現(xiàn)陽性的試材在RT-PCR檢測中也全部為陽性，但是有1份試材，即‘幸香田間苗，在DAC-ELISA檢測中表現(xiàn)為陰性，而在RT-PCR檢測中為陽性。

3 討 論

ELISA方法因操作簡便、成本低等特點適宜病毒的大規(guī)模檢測，特異性抗血清的制備是其能否應(yīng)用的關(guān)鍵。由于SMYEV在草莓的病毒含量極低，病毒粒體為柔軟的線條形，進行病毒粒子純化時，病毒粒體間易相互聚集，易被污染，因此通過病毒粒子的分離和提純制備抗血清相當困難[8]。Jawee等[16]以昆諾藜中純化出的SMYEV病毒粒子為抗原制備了SMYEV抗血清，但ELISA檢測草莓田間帶病毒材料時只在一定時期內(nèi)（1月至5月）效果較好。本研究改變傳統(tǒng)的以病毒粒子為抗原制備抗血清的方法，采用基因工程技術(shù)，利用原核表達的SMYEV的CP為抗原制備抗血清，克服了SMYEV病毒粒子難以分離提純的困難，而且純化的重組CP蛋白相對于提純的病毒粒子而言，不含寄主植物的任何成分，不受寄主蛋白的干擾，所以所制備的抗血清特異性強。

本研究比較了ELISA與RT-PCR檢測SMYEV技術(shù)的效果，結(jié)果表明1個RT-PCR檢測陽性的樣本未能通過ELISA檢測出來，其可能的主要原因是ELISA檢測病毒的靈敏度低于RT-PCR。Hu等[17]在檢測香蕉植株中黃瓜花葉病毒（cucumber mosaic virus）的研究中發(fā)現(xiàn)，RT-PCR檢測CMV的靈敏性比ELISA高100倍，而Sanchez-Navarro等[18]在PNRSV上檢測得到類似的結(jié)果。另一個可能的原因是血清型差異。目前GenBank中已報道SMYEV CP基因序列近30個，不同分離物間序列變異較大，存在較多插入、缺失位點，不同分離物核苷酸序列同源性也存在較大差異，因此SMYEV很可能存在血清型差異，從而影響ELISA檢測病毒的效果。

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