冉 玥,焦必寧,*,趙其陽(yáng),田 玲,蘇學(xué)素,曾朝波
(1.西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,重慶 400715;2.農(nóng)業(yè)部柑橘產(chǎn)品質(zhì)量安全風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估實(shí)驗(yàn)室,西南大學(xué)柑橘研究所,重慶 400712;3.西南大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,重慶 400716)
柑橘有豐富的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值和獨(dú)特的感官品質(zhì),其果實(shí)及果汁是世界消費(fèi)最多的水果產(chǎn)品之一。柑橘果實(shí)中含有大量的類黃酮、類胡蘿卜素、維生素、酚酸等多種生理活性物質(zhì),還含有幾乎只存在于柑橘屬中的多甲氧基黃酮如川皮苷、桔黃酮等[1]。研究表明類黃酮物質(zhì)具有抗炎活性[2-3]、抗癌作用、抗動(dòng)脈粥樣硬化、抗氧化功能[4]和抗菌[5]等多種生理作用,國(guó)內(nèi)外已有不少相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道將其用于功能食品和功能飼料的生產(chǎn)研究中。此外,類黃酮種類和含量的差異可作為鑒別柑橘產(chǎn)品摻假[6]、品種及原產(chǎn)地識(shí)別的依據(jù)[6-7]。Sentandreu等[8]研究了利用類黃酮組成及其含量并結(jié)合多元統(tǒng)計(jì)判別分析方法可識(shí)別不同種類柑橘汁,結(jié)果顯示,黃芩素與川皮苷含量比例與多甲氧基黃酮總含量可作為區(qū)分不同品種柑橘汁的特征性成分,能夠顯著地將7種柑橘汁區(qū)分開來(lái)。
目前已有不少柑橘類黃酮檢測(cè)的方法報(bào)道,其中普通高效液相色譜法[9-13]為主流的分析方法,還存在分析耗時(shí)長(zhǎng)、測(cè)定的類黃酮化合物種類較少、精確度不高等問(wèn)題。而超高效液相色譜法(ultra performance liquid chromatography,UPLC),基于小顆粒填料、低系統(tǒng)體積及快速檢測(cè)等技術(shù),具有快速高效、高分離度等特點(diǎn)[14-15],現(xiàn)已廣泛應(yīng)用于食品、藥物中各類物質(zhì)的分析檢測(cè)中。Spácil等[16]比較了高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)和UPLC同時(shí)分離9種類黃酮物質(zhì)的效果,結(jié)果表明,UPLC所用時(shí)間短2.5倍,使用溶劑少5.5倍,而分離度卻高1.7倍。目前國(guó)內(nèi)較少有超高效液相檢測(cè)柑橘中類黃酮的方法報(bào)道。本研究采用正交試驗(yàn)優(yōu)化樣品前處理方法,確定最佳儀器分析條件,建立超高效液相色譜-二極管陣列檢測(cè)器法同時(shí)測(cè)定柑橘中11種類黃酮物質(zhì)的方法。
柑橘樣品均采自中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院柑桔研究所國(guó)家果樹種質(zhì)重慶柑橘圃。
圣草枸櫞苷(純度97.4%)、柚皮素-7-β-蕓香糖苷(純度95.0%)、新橙皮苷(純度99.9%)、香風(fēng)草甙(純度93.1%)、柚皮素(純度98.2%)、橘黃酮(純度97.1%)、橙皮素(純度94.6%)(標(biāo)準(zhǔn)品) 美國(guó)Chroma Dex公司;甜橙黃酮標(biāo)準(zhǔn)品(純度98.5%) 德國(guó)Phytolba公司;川皮苷標(biāo)準(zhǔn)品(純度96.4%) 美國(guó)Sigma公司;橙皮苷(純度93.7%)、柚皮苷(純度97.3%)(標(biāo)準(zhǔn)品) 瑞士Fluka公司;甲醇(色譜純) 德國(guó)CNW Technologies有限公司。
Acquity UPLC色譜儀(配有PDA檢測(cè)器及Empour工作站) 美國(guó)Waters公司;3K15高速冷凍離心機(jī) 美國(guó)Sigma公司;KQ5200DE超聲波清洗器 江蘇昆山市超聲儀器有限公司;超純水器 美國(guó)Millpore公司;0.22μm有機(jī)相針式濾器 上海安譜科學(xué)儀器有限公司。
1.3.1 標(biāo)準(zhǔn)品溶液的制備
準(zhǔn)確稱取圣草枸櫞苷、柚皮素-7-β-蕓香糖苷、柚皮苷、橙皮苷、新橙皮苷、香風(fēng)草甙、柚皮素、橙皮素、甜橙黃酮、川皮苷和橘黃酮各5.00mg,分別用色譜純甲醇溶解并定容至10.00mL容量瓶中,配成500mg/L標(biāo)準(zhǔn)品的母液備用。
采用逐級(jí)稀釋法用色譜純甲醇溶液將標(biāo)準(zhǔn)品溶液配制成一系列質(zhì)量濃度的混合標(biāo)準(zhǔn)品溶液。
1.3.2 樣品的制備
柑橘果皮樣品:鮮果皮磨細(xì)后備用。準(zhǔn)確稱取制好樣品1.00g于50mL離心管中,加入甲醇溶液10.00mL,50℃條件下超聲處理30min,以10000r/min離心10min,收集上清液,殘?jiān)?0mL提取劑重復(fù)提取兩次,合并上清液定容至50mL,0.22μm微孔濾膜過(guò)濾后待測(cè)。
柑橘汁樣品:采用手動(dòng)壓榨法制取新鮮柑橘果汁,用雙層紗布過(guò)濾后備用。準(zhǔn)確吸取制好果汁樣品2.00mL置于50mL離心管中,加入10.00mL甲醇振蕩1min,以10000r/min離心10min,分離上清液,殘?jiān)?0mL提取劑重復(fù)提取一次,合并上清液定容至25mL,過(guò)0.22μm微孔濾膜后待測(cè)。
1.3.3 色譜條件
色譜柱:A C Q U I T Y U P L C B E H C18分析柱(2.1mm×100mm,1.7μm);流動(dòng)相:甲醇和0.2%乙酸溶液,采用梯度洗脫;柱溫:35℃;流速:0.3mL/min;定量波長(zhǎng)為283nm和330nm,波長(zhǎng)掃描范圍200~400nm,進(jìn)樣量為3.0μL。以保留時(shí)間結(jié)合光譜掃描圖定性,采用外標(biāo)法定量。
對(duì)11種類黃酮(8種黃烷酮和3種多甲氧基黃酮)標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)進(jìn)行掃描,屬黃烷酮類的圣草枸椽苷、柚皮素-7-β-蕓香糖苷、柚皮苷、橙皮苷、新橙皮苷、香風(fēng)草甙、柚皮素和橙皮素均在283nm附近有最大吸收峰,而屬于多甲氧基黃酮的橙黃酮在330nm附近有最大吸收峰,川皮苷和橘黃酮在270nm和330nm附近都有最大吸收峰,綜合考慮最終選取283nm和330nm分別作為黃烷酮和多甲氧基黃酮的定量檢測(cè)波長(zhǎng)。
表 1 流動(dòng)相洗脫程序Table 1 Gradient elution program
隨著柱溫升高,色譜柱的柱效增加,分析時(shí)間縮短,但對(duì)目標(biāo)物的分離度有一定影響。綜合考慮確定35℃作為色譜柱分析時(shí)的溫度。
實(shí)驗(yàn)比較不同流動(dòng)相溶液的分離效果,結(jié)果顯示采用乙腈-乙酸溶液作為流動(dòng)相時(shí),在橙黃酮、川皮苷和橘黃酮出峰處存在較強(qiáng)基線干擾,而使用甲醇-乙酸溶液作為流動(dòng)相時(shí)可消除基線干擾,因此選擇甲醇-乙酸溶液作為色譜分析的流動(dòng)相體系。對(duì)于11種類黃酮物質(zhì)來(lái)說(shuō),其結(jié)構(gòu)和性質(zhì)相似,需采用梯度洗脫的方式進(jìn)行分離,經(jīng)優(yōu)化確定梯度洗脫條件如表1所示。在該條件下,11種類黃酮標(biāo)樣和柑橘樣品色譜圖見圖1,根據(jù)相對(duì)保留時(shí)間并結(jié)合待測(cè)化合物的特征吸收波譜進(jìn)行定性。由圖1可以看出,樣品中類黃酮化合物與其他雜質(zhì)分離,各個(gè)物質(zhì)的峰形良好,分離度高。因此本方法適合柑橘中類黃酮化合物的測(cè)定。
圖 1 11種類黃酮標(biāo)準(zhǔn)混合溶液和柑橘樣品的超高效液相色譜圖(283nm和330nm)Fig.1 UPLC chromatograms of eleven flavonoids and citrus sample at 283 nm and 330 nm
2.3.1 柑橘果皮樣品前處理?xiàng)l件優(yōu)化
以鮮果皮作為試材,參考文獻(xiàn)[17]方法,通過(guò)單因素和正交試驗(yàn)優(yōu)化果皮前處理?xiàng)l件。
單因素試驗(yàn)比較甲醇、70%甲醇溶液、DMF、DMSO、甲醇+DMF(1+1)和甲醇+DMSO(1+1)等提取劑的提取效果,結(jié)果表明甲醇提取效果最佳。樣品提取溫度、超聲時(shí)間和提取次數(shù)優(yōu)化結(jié)果見圖2,結(jié)果表明,樣品提取溫度50℃、超聲時(shí)間30min、提取3次時(shí),類黃酮提取量達(dá)最高。
圖 2 提取溫度(A)、時(shí)間(B)和次數(shù)(C)對(duì)果皮中類黃酮提取量影響Fig.2 Effects of extraction temperature (A), time (B) and times (C) on the total contents of flavonoids in peel
采用正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)確定超聲時(shí)溫度、超聲時(shí)間和提取次數(shù)3個(gè)因素的最佳組合。分別選取其中的4個(gè)水平:30、40、50、60℃;10、20、30、40min;1、2、3、4次。選擇L16(45)正交表,將3個(gè)因素分別定為第1、2、3列,根據(jù)正交表安排進(jìn)行試驗(yàn)。正交試驗(yàn)安排及結(jié)果見表2。由表2結(jié)果的直觀分析及表3中對(duì)試驗(yàn)結(jié)果的方差分析可以看出3個(gè)因素中最佳水平分別為50℃、30min和3次。此外,由極差大小可判定出3個(gè)因素對(duì)提取出類黃酮總量的影響大小為提取次數(shù)>提取溫度>提取時(shí)間,且在置信概率為95%時(shí),提取次數(shù)對(duì)類黃酮提取量有顯著性影響。另一方面結(jié)果中的兩空列的值可代表因素間的相互作用和實(shí)驗(yàn)中誤差大小,兩列的極差值和偏差平方和的值都較小,表明因素間沒(méi)有相互作用以及誤差很小。
結(jié)合單因素和正交試驗(yàn)結(jié)果,最終確定果皮中類黃酮的最佳提取條件為樣品經(jīng)甲醇50℃超聲30min,重復(fù)提取3次。這與傳統(tǒng)的浸提[18]或索氏提取法[19]等相比大大縮短了分析時(shí)間。
表 2 類黃酮的最佳提取條件正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Experiment design and results of orthogonal test for extraction of flavonoids
表 3 試驗(yàn)結(jié)果方差分析表Table 3 Analysis of variance of the test results
2.3.2 柑橘果汁樣品前處理?xiàng)l件的優(yōu)化
參考果皮處理方法,使用甲醇作為提取劑,經(jīng)多次實(shí)驗(yàn)確定振蕩1min后以10000r/min的轉(zhuǎn)速離心10min為前處理方式。實(shí)驗(yàn)比較提取次數(shù)對(duì)總類黃酮提取量的影響,結(jié)果見圖3。由圖3可看出,隨著提取次數(shù)的增加,類黃酮提取總量增加。但對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析后顯示,提取2、3次和4次的結(jié)果間并無(wú)顯著性差異??紤]實(shí)驗(yàn)成本和環(huán)保方面,選擇提取2次作為果汁的提取方法。
圖 3 提取次數(shù)對(duì)果汁中類黃酮提取總量的影響Fig.3 Effect of extraction times on total contents of flavonoids in juice
在上述色譜分析條件下,測(cè)定一系列質(zhì)量濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液。以測(cè)得的各個(gè)類黃酮物質(zhì)積分峰面積為縱坐標(biāo),質(zhì)量濃度(mg/L)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。各類黃酮的回歸方程、相關(guān)系數(shù)、線性范圍和方法檢出限如表4所示,11種類黃酮的檢出限(RSN=3)為0.005~0.02mg/kg,在各個(gè)類黃酮物質(zhì)相應(yīng)的線性范圍內(nèi)其質(zhì)量濃度與積分峰面積呈現(xiàn)出良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)達(dá)到0.9993以上。
表 4 11種類黃酮的線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)及檢出限Table 4 Linear range, linear equation, correlation coefficient and the limits of detection (LODs) of the investigated flavonoids
將同一標(biāo)準(zhǔn)溶液連續(xù)進(jìn)樣6次,以11種類黃酮物質(zhì)的積分峰面積為對(duì)象,計(jì)算其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差,以考察色譜儀器的精密度。結(jié)果表明,各類黃酮的其相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)介于0.9%~1.3%,充分說(shuō)明儀器具有較高的精密度。在不同時(shí)間內(nèi)以該方法重復(fù)測(cè)定同一實(shí)際樣品5次,上機(jī)進(jìn)樣量3μL,通過(guò)計(jì)算RSD以考察方法的重復(fù)性,結(jié)果顯示各類黃酮的RSD值為2.3%~4.2%,表明該方法具有良好的重復(fù)性。
表 5 果皮和果汁回收率實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 5 The results of recovery test
分別對(duì)果皮和果汁樣品進(jìn)行兩個(gè)水平的加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn),每個(gè)實(shí)驗(yàn)均6次重復(fù)。根據(jù)樣品中各類黃酮物質(zhì)含量確定該種物質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)樣加入量,按上述前處理方法及分析方法進(jìn)行實(shí)驗(yàn),驗(yàn)證該方法的準(zhǔn)確性。結(jié)果如表5所示,果皮中各類黃酮物質(zhì)的平均回收率在94.6%~100.2%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差在1.1%~3.7%,果汁中各類黃酮平均回收率在94.5%~101.8%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差在0.9%~3.9%。結(jié)果表明上述實(shí)驗(yàn)方法準(zhǔn)確度較高,能應(yīng)用于柑橘中類黃酮物質(zhì)的檢測(cè)分析。
采用上述方法對(duì)檸檬、臍橙、南豐蜜橘和砂糖橘4個(gè)樣品的果皮和果汁中類黃酮含量進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果如表6所示。不同品種柑橘含有類黃酮種類和含量差異較大。檸檬中含有較多的圣草枸櫞苷,臍橙中含有較多的柚皮素-7-β-蕓香糖苷與橙皮苷,而南豐蜜橘和砂糖橘果皮中均含有較多多甲氧基黃酮類。幾種柑橘中均未檢測(cè)出柚皮苷、柚皮素與新橙皮苷且果汁中類黃酮含量遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于果皮中的含量。
表 6 4種柑橘樣品中類黃酮含量測(cè)定Table 6 The contents of flavonoids in four citrus
建立了快速有效的同時(shí)測(cè)定柑橘樣品中11種類黃酮物質(zhì)方法,11min內(nèi)上述物質(zhì)得到完全分離。該方法具有良好的精密度和準(zhǔn)確度,檢出限低,能滿足分析要求。11種類黃酮物質(zhì)在線性范圍內(nèi),其質(zhì)量濃度與積分峰面積均呈現(xiàn)出良好的線性關(guān)系。分析時(shí)間僅為普通液相色譜法的1/4,有機(jī)溶劑消耗較少,既降低了成本又減少了環(huán)境污染??勺鳛楦涕贅悠分蓄慄S酮常規(guī)檢測(cè)分析方法。
[1] LI Shiming, PAN Minhsiung, TAN Di, et al. Chemistry and health effects of polymethoxyflavones and hydroxylated polymethoxyflavones[J]. Journal of Functional Foods, 2009, 1(1): 2-12.
[2] 王磊, 蘇學(xué)素, 付陳梅, 等. 柑橘中多甲氧基黃酮生物活性及應(yīng)用研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2009, 30(7): 285-290.
[3] HUANG Yungsheng, HO Suchen. Polymethoxy flavones are responsible for the anti-inflammatory activity of citrus fruit peel[J]. Food Chemistry, 2010, 119(3): 868-873.
[4] KIM H G, KIM G S, PARK S, et al. Flavonoid profiling in three citrus varieties native to the Republic of Korea using liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry: contribution to overall antioxidant activity[J]. Biomedical Chromatography, 2012, 26(4): 464-70.
[5] KIM, H G, KIM G S, LEE J H, et al. Determination of the change of flavonoid components as the defence materials of Citrus unshiu Marc fruit peel against Penicillium digitatum by liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry[J]. Food Chemistry, 2011, 128(1): 549-545.
[6] PAN G G, KILMARTIN P A, SMITH B G, et al. Detection of orange juice adulteration by tangelo juice using multivariate analysis of polymethoxylated flavones and carotenoids[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 2002, 82(4): 421-427.
[7] ESCRICHE I, KADAR M, DOMENECH E, et al. Using flavonoids, phenolic compounds and headspace volatile profile for botanical authentication of lemon and orange honeys[J]. Food Research International, 2011, 44(5): 1504-1513.
[8] SENTANDREU E, IZPUIERDO L, SENDRA J M. Differentiation of juices from clementine (Citrus clementina), clementine-hybrids and satsuma (Citrus unshiu) cultivars by statistical multivariate discriminant analysis of their flavanone-7-O-glycosides and fully methoxylated flavones content as determined by liquid chromatography[J]. European Food Research and Technology, 2007, 224(4): 421-429.
[9] 吳桂蘋, 蘇學(xué)素, 焦必寧. 柑橘活性成分檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2006, 32(9): 116-121.
[10] 李煥霞, 吳桂蘋, 王華. 甜橙皮渣膳食纖維中類黃酮化合物含量分析[J]. 飲料工業(yè), 2008, 11(9): 33-35.
[11] BERMEJO A, LLOSA M J, CANO A. Analysis of bioactive compounds in seven citrus cultivars[J]. Food Science and Technology International, 2011, 17(1): 55-62.
[12] GREEN C O, WHEATLEY A O, MORRISON E Y, et al. Determination of polymethoxylated flavones in peels of selected Jamaican and Mexican citrus (Citrus spp.) cultivars by highperformance liquid chromatography[J]. Biomedical Chtomatography, 2007, 21(1): 48-54.
[13] BELAJOVA E, SUHAJ M. Determination of phenolic constituents in citrus juices: method of high performance liquid chromatography[J]. Food Chemistry, 2004, 86(3): 339-343.
[14] YU K, LITTLE D, PLUMB R, et al. High-throughput quantification for a drug mixture in rat plasma-a comparison of ultra performance liquid chromatography/tandem mass spectrometry with highperformance liquid chromatography/tandem mass spectrometry[J]. Rapid Commun Mass Spectrom, 2006, 20(4): 544-552.
[15] GRUZ J, NOVAK O, STMAD M. Rapid analysis of phenolic acids in beverages by UPLC-MS/MS[J]. Food Chemistry, 2008, 111(3): 789-794.
[16] SPACIL Z, NOVAKOVA L, SOLICH P. Analysis of phenolic compounds by high performance liquid chromatography and ultra performance liquid chromatography[J]. Talanta, 2008, 76(1): 189-199.
[17] 付陳梅, 吳桂蘋, 蘇學(xué)素, 等. 液相色譜法測(cè)定柑橘果實(shí)中類黃酮方法研究[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2008, 34(2): 121-125.
[18] RAMFUL D, BAHORUN T, BOURDON E, et al. Bioactive phenolics and antioxidant propensity of flavedo extracts of Mauritian citrus fruits: potential prophylactic ingredients for functional foods application[J]. Toxicology, 2010, 278(1): 75-87.
[19] STALIKAS C D. Extraction, separation, and detection methods for phenolic acids and flavonoids[J]. Journal of Separation Science, 2007, 30(18): 3268-3295.