侯 瀟,高 建,李春雨,王 錚,金莉莉,王秋雨*
(遼寧大學(xué)生命科學(xué)院,遼寧 沈陽 110036)
馬鹿茸、馬鹿骨為可用于保健食品的生物資源。馬鹿角為已骨化的鹿茸或鋸茸后翌年春季脫落的角基,具有溫腎陽、強(qiáng)筋骨、行血消腫的功效[1]。馬鹿角膠為馬鹿角煎熬而成的膠塊,主要成分是蛋白質(zhì),含量為83.81%[2],有補(bǔ)腎陽、益精血和抗疲勞及增強(qiáng)機(jī)體免疫能力的作用[3-4]。馬鹿角膠的蛋白質(zhì)分子質(zhì)量大,難以透過生物膜,生物利用度低,通過化學(xué)、物理或酶解方法,降低蛋白質(zhì)分子質(zhì)量,可提高蛋白質(zhì)的吸收率和保健功能[5]。據(jù)報(bào)道[2]鹿角膠經(jīng)中性蛋白酶水解后能顯著提高正常雄性大鼠血清中睪酮水平,提高了鹿角蛋白的功能。大豆蛋白、牛乳酪蛋白、雞蛋清等通過酶法水解制備的多肽具有良好的免疫活性[6]。
為提高馬鹿角的生物利用率和生理藥理活性,本實(shí)驗(yàn)組在前期工作中研究了馬鹿角蛋白的提取和最佳酶解工藝[7]。馬鹿角粉碎后,經(jīng)80~90℃水浸法提取蛋白,3000r/min離心除去不溶物,上清液經(jīng)濃縮干燥得到馬鹿角蛋白。采用1kD超濾膜截留未酶解的蛋白,經(jīng)濃縮、冷凍干燥得到白色粉末狀的馬鹿角蛋白酶解物。酶解物易溶于水,多肽含量99%,Tricine-SDS-PAGE鑒定分子質(zhì)量小于3kD。采用BCA試劑盒測(cè)定馬鹿角蛋白和酶解物的蛋白含量。本實(shí)驗(yàn)研究該酶解物的抗氧化、抗疲勞和免疫活性,并與未水解的馬鹿角蛋白進(jìn)行比較,以期為馬鹿角蛋白的精深加工和高效利用提供參考。
體質(zhì)量為28~30g的30日齡、清潔級(jí)昆明小鼠100只,雌雄各半,購自遼寧中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物部。
馬鹿角購于鐵嶺西豐鹿產(chǎn)品交易中心;馬鹿角蛋白及酶解物在本實(shí)驗(yàn)室制備得到[7]。
丙二醛(MDA)檢測(cè)試劑盒、超氧化物歧化酶(SOD)檢測(cè)試劑盒 南京建成生物工程研究所;刀豆蛋白A (ConA) 美國(guó)Sigma公司;香菇多糖 浙江普洛康裕天然藥物有限公司;其他試劑均為分析純。
1.2.1 體外抗氧化活性的測(cè)定
將VC配制成質(zhì)量濃度分別為0.1、0.2、0.4、0.6、0.8mg/mL的溶液,將馬鹿角蛋白和馬鹿角酶解物分別稀釋成10、20、30、40、50mg/mL的溶液。作為待測(cè)液備用。
清除O2-·活性的測(cè)定采用鄰苯三酚自氧化法;清除·OH活性的測(cè)定采用水楊酸法;總還原力的測(cè)定采用鐵氰化鉀法[8-10]。
式中:ΔA對(duì)照為對(duì)照組鄰苯三酚自氧化時(shí)吸光度每分鐘變化量;ΔA樣品為樣品組鄰苯三酚自氧化時(shí)吸光度每分鐘變化量。
式中:A0為對(duì)照組的吸光度;A1為樣品組的吸光度。
1.2.2 體內(nèi)抗氧化活性的測(cè)定
30只昆明小鼠,隨機(jī)分為3組:空白對(duì)照組(同體積生理鹽水)、馬鹿角蛋白組(500mg/(kg·d))、馬鹿角蛋白酶解物組(500mg/(kg·d))。實(shí)驗(yàn)組蛋白和酶解物灌胃劑量參考海參肽功能研究使用劑量[11]。連續(xù)灌胃30d后,摘眼球取血,1500r/min離心取血清,檢測(cè)馬鹿角蛋白酶解前后對(duì)血清中SOD活性和MDA含量的影響。具體操作按試劑盒說明書進(jìn)行[12]。
1.2.3 抗疲勞活性研究
30只昆明小鼠隨機(jī)分為3組:空白對(duì)照組(同體積生理鹽水)、馬鹿角蛋白組(500mg/(kg·d))、馬鹿角蛋白酶解物組(500mg/(kg·d))。連續(xù)灌胃給藥30d后進(jìn)行負(fù)重游泳、肝糖原、血乳酸3項(xiàng)指標(biāo)的測(cè)定。負(fù)重游泳實(shí)驗(yàn):在末次灌胃后30min后,將小鼠的尾部負(fù)荷5%體質(zhì)量的鉛皮然后放入水深30cm、水溫(25±1)℃的游泳箱中游泳,記錄小鼠力竭游泳時(shí)間,即從入水至沉入水下10s不能浮出水面的時(shí)間[13]。血乳酸測(cè)定:小鼠于末次給予受試物30min后,在水深30cm、水溫30℃的游泳箱中不負(fù)重游泳10min后,眼球采血測(cè)定血清血乳酸含量[14]。肝糖原測(cè)定:小鼠于末次給予受試物30min后,30℃水箱中游泳10min,頸椎脫臼處死,取肝臟100mg,用蒽酮法測(cè)定肝糖原含量[15]。
1.2.4 免疫活性研究
40只昆明小鼠隨機(jī)分為4組:空白對(duì)照組(同體積生理鹽水)、陽性香菇多糖組(145mg/(kg·d))、馬鹿角蛋白組(500mg/(kg·d))、馬鹿角蛋白酶解物組(500mg/(kg·d))。連續(xù)灌胃給藥30d后進(jìn)行小鼠碳廓清率和淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化指標(biāo)的測(cè)定[11,16]。
1.2.4.1 小鼠碳廓清率測(cè)定
小鼠連續(xù)給藥30d,按10mL/kg尾靜脈注射稀釋4倍的印度墨汁,注射后開始計(jì)時(shí),分別于2、10min時(shí)眼眶取血20μL,立即置于盛有2mL 0.1% Na2CO3溶液的試管中。在波長(zhǎng)600nm處測(cè)其光密度OD1和OD2,測(cè)其吞噬指數(shù)α,以表示碳廓清率。
式中:t1、OD1為給墨汁后第一次取血的時(shí)間及所測(cè)OD值;t2、OD2為給墨汁后第二次取血的時(shí)間及所測(cè)OD值。
1.2.4.2 ConA誘導(dǎo)小鼠脾淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化實(shí)驗(yàn)
小鼠連續(xù)給藥30d后, 脫頸處死,75%酒精浸泡消毒3min后無菌取脾,將脾磨碎,200目篩網(wǎng)過濾,Hanks液清洗2次,每次洗后1000r/min離心10min,制備單細(xì)胞懸液,用RPMI1640培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞濃度為3×106個(gè)/mL,臺(tái)酚蘭染色應(yīng)使活細(xì)胞數(shù)量在95%以上。將一份脾細(xì)胞懸液分兩孔加入24孔板,每孔1mL,一孔加75μL ConA,另一孔對(duì)照,培養(yǎng)68h時(shí)每孔吸去0.7mL上清液,加入0.7mL不含血清培養(yǎng)液,同時(shí)每孔加入5mg/mL MTT 50μL,繼續(xù)培養(yǎng)4h。結(jié)束后加入1mL酸性異丙醇吹打混勻。測(cè)每一份脾細(xì)胞懸液在570nm波長(zhǎng)處的OD值,脾淋巴細(xì)胞增殖能力用OD實(shí)驗(yàn)組與OD對(duì)照組的差值表示。
1.2.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)
采用SPSS17.0軟件進(jìn)行單因素方差分析。
圖 1 馬鹿角蛋白和馬鹿角蛋白酶解物的O2-·清除能力(n=3)Fig.1 Comparison of superoxide anion radical scavenging activity between red deer antler protein and hydrolysate(n=3)
由圖1可知,馬鹿角蛋白酶解物對(duì)O2-·的清除能力明顯高于同等質(zhì)量濃度的馬鹿角蛋白,隨著測(cè)試質(zhì)量濃度的增加而增大。馬鹿角蛋白的半清除質(zhì)量濃度(IC50)為45.57mg/mL,而馬鹿角酶解物IC50為10.59mg/mL。陽性照組VC的IC50為0.42mg/mL。
圖 2 馬鹿角蛋白和馬鹿角蛋白酶解物的·OH清除能力(n=3)Fig.2 Comparison of hydroxyl radical scavenging activity between red deer antler protein and hydrolysate (n=3)
由圖2可知,馬鹿角蛋白酶解物對(duì)·OH的清除能力與同等質(zhì)量濃度的馬鹿角蛋白相比,差異極顯著,隨著質(zhì)量濃度的增加,其清除能力呈增大的趨勢(shì)。馬鹿角蛋白的半清除質(zhì)量濃度(IC50)為45.20mg/mL,而酶解物的IC50為7.63mg/mL。陽性對(duì)照組VC的IC50為0.28mg/mL。
由圖3可知,馬鹿角蛋白和酶解物均具有還原能力,且隨著質(zhì)量濃度增加而增大。同等質(zhì)量濃度的馬鹿角蛋白酶解物的還原力高于馬鹿角蛋白,統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示兩者差異極顯著。
圖 3 馬鹿角蛋白和馬鹿角蛋白酶解物的總還原能力(n=3)Fig.3 Comparison of total reducing power between red deer antler protein and hydrolysate (n=3)
圖 4 馬鹿角蛋白和馬鹿角蛋白酶解物對(duì)小鼠血清中SOD(A)、MDA(B)的影響(n=10)Fig.4 Comparative effects of red deer antler protein and hydrolysate on serum SOD activity (A) and MDA content (B) in mice (n=10)
由圖4可知,飼喂馬鹿角蛋白組、馬鹿角蛋白酶解物組的小鼠SOD活性和MDA含量與空白對(duì)照組相比均有極顯著差異性,顯示抗氧化功能顯著,且酶解物組SOD的活性和MDA的減少量均好于馬鹿角蛋白組,并具有顯著性差異。
圖 5 馬鹿角蛋白及馬鹿角蛋白酶解物對(duì)小鼠負(fù)重游泳時(shí)間(A)、血乳酸含量(B)和肝糖原含量(C)的影響(n=10)Fig.5 Comparative effects of red deer antler protein and hydrolysate on weight-loaded swimming time (A) and blood lactic acid (B) and liver glycogen contents (C) in mice(n=10)
由圖5可知,與空白對(duì)照組相比,馬鹿角蛋白組和酶解物組的小鼠游泳時(shí)間延長(zhǎng),乳酸含量降低,肝糖原含量增加,均有顯著性或極顯著性差異,酶解物的抗疲勞活性更強(qiáng)。
圖 6 馬鹿角蛋白和馬鹿角蛋白酶解物對(duì)小鼠碳廓清吞噬指數(shù)α(A)和脾淋巴細(xì)胞增殖能力(B)的影響(n=10)Fig.6 Comparative effects of red deer antler protein and hydrolysate on carbon clearance index (A) and lymphocyte proliferation (B) in mice (n=10)
由圖6可知,馬鹿角蛋白和馬鹿角蛋白酶解物能提高小鼠碳廓清吞噬指數(shù)α和脾淋巴細(xì)胞增殖能力,與空白對(duì)照組比較差異極顯著,且馬鹿角蛋白酶解物組活性高于馬鹿角蛋白組,具有顯著性差異。
O2-·和·OH是生物體內(nèi)主要的活性氧自由基,它們可以引起體內(nèi)脂質(zhì)過氧化。而使用生物抗氧化劑切斷過氧化鏈?zhǔn)椒磻?yīng),可以抑制機(jī)體的自由基損傷,從而保持最佳健康狀態(tài)和防治相關(guān)疾病,延緩衰老[17-18]。SOD對(duì)機(jī)體的氧化與抗氧化平衡起著至關(guān)重要的作用,可專一性清除O2-·,保護(hù)細(xì)胞免受損傷,MDA含量可以間接反映出機(jī)體脂質(zhì)過氧化的程度[19]。本研究通過對(duì)以上指標(biāo)的檢測(cè),顯示馬鹿角蛋白及其酶解物具有清除O2-·、·OH的能力和總還原力,可提高受試小鼠血清SOD活力并降低MDA含量,與空白對(duì)照組相比差異顯著,且酶解物組活性高于未酶解的馬鹿角蛋白。研究結(jié)果表明馬鹿角蛋白酶解物具有顯著的抗氧化活性。
在抗疲勞實(shí)驗(yàn)中,本實(shí)驗(yàn)選擇測(cè)定了受試小鼠負(fù)重游泳時(shí)間、能量物質(zhì)肝糖原和代謝產(chǎn)物血乳酸三項(xiàng)指標(biāo)。各指標(biāo)在運(yùn)動(dòng)時(shí)的變化程度與運(yùn)動(dòng)負(fù)荷強(qiáng)度一致的條件下,可作為動(dòng)物疲勞的評(píng)價(jià)指標(biāo)[20]。力竭游泳時(shí)間的長(zhǎng)短可以反應(yīng)受試動(dòng)物運(yùn)動(dòng)抗疲勞的能力[21],疲勞發(fā)生的早晚與糖原的儲(chǔ)備直接相關(guān),乳酸作為肌肉活動(dòng)的主要代謝產(chǎn)物,可以通過肌肉乳酸的含量來評(píng)價(jià)疲勞的程度[22]。持續(xù)運(yùn)動(dòng)后血乳酸的數(shù)值越低,表明疲勞消除越快。通過對(duì)以上指標(biāo)進(jìn)行實(shí)驗(yàn)測(cè)定,表明馬鹿角蛋白及其酶解物具有抗疲勞功效,與空白對(duì)照組比較差異顯著,馬鹿角蛋白酶解物的抗疲勞作用更強(qiáng)。
巨噬細(xì)胞是機(jī)體內(nèi)生物學(xué)作用最為活躍的細(xì)胞,具有吞噬、殺傷及消化病原體、殺傷腫瘤細(xì)胞,并在特異性免疫應(yīng)答中參與抗原的提呈及免疫調(diào)節(jié)作用[23]。淋巴細(xì)胞是體內(nèi)免疫活性細(xì)胞,淋巴細(xì)胞增殖能力的強(qiáng)弱,反應(yīng)機(jī)體免疫功能的高低[24]。本實(shí)驗(yàn)通過對(duì)碳廓清吞噬指數(shù)研究表明:馬鹿角蛋白及其酶解物對(duì)單核巨噬細(xì)胞吞噬功能具有明顯的促進(jìn)作用,能提高小鼠對(duì)血中碳粒膠體廓清速度,酶解物組的作用更為明顯;用ConA誘導(dǎo)小鼠脾淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化,馬鹿角蛋白及其酶解物的促淋巴細(xì)胞增殖能力與空白對(duì)照組相比較具有顯著差異性,后者的作用更明顯。
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