国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

不同熱處理對沙門氏菌DNA消亡的影響

2013-08-07 09:16:04李苗云趙改名柳艷霞高曉平黃現(xiàn)青張秋會(huì)
食品科學(xué) 2013年5期
關(guān)鍵詞:沸水肉品電泳

劉 杰,李苗云*,趙改名,柳艷霞,高曉平,田 瑋,黃現(xiàn)青,張秋會(huì)

(河南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院,河南 鄭州 450002)

沙門氏菌廣泛分布于自然界,是腸桿菌科中一種常見、重要的人畜共患病原菌之一,對人類和動(dòng)物具有極大危害,沙門氏菌污染能使人類發(fā)生傷寒、副傷寒、敗血癥、腸胃炎和食物中毒等病癥[1-3]。其中肉、蛋、乳等營養(yǎng)豐富的食品是沙門氏菌的主要傳播介質(zhì),直接影響著人們的飲食健康安全[4-5]。近年來,核酸分析被廣泛應(yīng)用于病原菌的檢測,具有檢測范圍廣、敏感度高、特異性好等優(yōu)點(diǎn),大大提高了檢測的效率,縮短了檢測流程,但其存在假陽性偏高等問題[5-9]。魯玉俠等[10]研究了121℃、15min 處理后沙門氏菌的PCR擴(kuò)增效果,結(jié)果顯示PCR產(chǎn)物電泳條帶很明顯。Malorny[11]、Nocker[12]、Oliveira[13]等研究指出死菌DNA會(huì)長期存在。另外,很多研究者[14-18]指出死菌DNA的存在使基因水平的檢測方法高估了樣品中活菌的水平。而我國肉類食品有低溫、高溫、涮、煎、烤等多種加工和消費(fèi)方式,常用的熱處理方式對沙門氏菌致死情況和DNA的破壞程度不是很清楚。本實(shí)驗(yàn)?zāi)M肉品在加工和消費(fèi)過程中常用的幾種加熱處理過程,以研究不同熱處理對沙門氏菌致死效果以及對沙門氏菌DNA消亡的影響,為肉品消費(fèi)時(shí)的安全性和沙門氏菌檢測技術(shù)的研究提供依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 菌株與試劑

沙門氏菌標(biāo)準(zhǔn)菌株(ASI.1859F3) 雙匯集團(tuán)技術(shù)中心提供。

U N I Q-1 0 柱式細(xì)菌基因組抽提試劑盒 生工生物工程(上海)有限公司;2×PCR Solution Premix PrimeSTAR?HS 寶生物工程大連有限公司;平板計(jì)數(shù)瓊脂培養(yǎng)基 北京路橋技術(shù)有限責(zé)任公司。

1.2 儀器與設(shè)備

HIRAYAMA高壓滅菌鍋 日本Hirayama公司;UVP凝膠成像系統(tǒng) 美國UVP公司;梯度PCR儀 德國Biometra公司;HH-501恒溫水浴鍋 金壇市杰瑞爾電器有限公司;DYY-12型電泳儀 北京六一儀器廠。

1.3 方法

1.3.1 菌株培養(yǎng)

取沙門氏菌標(biāo)準(zhǔn)菌株ASI.1859F3接種到5mL液體LB培養(yǎng)基中。37℃、180r/min振蕩培養(yǎng)14~16h,使菌液達(dá)到對數(shù)生長期。平板計(jì)數(shù)得到初始菌濃。

1.3.2 不同熱處理對沙門氏菌存活狀況的影響

模擬肉品在加工和消費(fèi)過程中常用的熱處理過程,取1mL過夜培養(yǎng)的標(biāo)準(zhǔn)菌液加入到1.5mL PE管中,分別按照65℃保溫20min、85℃保溫30min、沸水浴2min、沸水浴3min、121℃保溫15min進(jìn)行加熱處理。處理后的菌液進(jìn)行平板計(jì)數(shù),每種處理3個(gè)平行。

1.3.3 基因組DNA的提取

取菌液1mL,10000r/min離心1min,棄上清收集菌體,UNIQ-10柱式細(xì)菌基因組抽提試劑盒抽提基因組DNA,制備的DNA樣品溶解于50μL TE緩沖液中,保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.4 熱處理后沙門氏菌不同放置時(shí)間對基因組DNA消亡的影響

對不同熱處理后完全失活的組別進(jìn)行室溫放置,每隔1d取菌液1mL提取基因組DNA,1.5%的瓊脂糖凝膠電泳120V,25min,EB染色后紫外分析儀進(jìn)行分析。

1.3.5 熱致死后沙門氏菌殘存DNA的PCR擴(kuò)增

致死后的菌液經(jīng)過一段時(shí)間放置后按1.3.3節(jié)方法提取基因組DNA,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。引物根據(jù)已發(fā)表的鼠傷寒沙門氏菌特異性inva基因核苷酸序列(GenBank AE008832)設(shè)計(jì),上游引物(5’-GTG AAA TAA TCG CCA CGT CGG GCA A-3’);下游引物(5’-TCA TCG CAC CGT CAA AGG AAC C-3’),擴(kuò)增片段長度為285bp[19]。引物由寶生物工程大連有限公司合成。采用20μL反應(yīng)體系:2×PCR Solution Premix PrimeSTAR?HS 10μL、1μmol/L Forward Primer 2μL、1μmol/L Reverse Primer 2μL、DNA模板 2μL、dH2O(滅菌蒸餾水)4μL。反應(yīng)參數(shù):95℃、30s;95℃、5s;64℃、34s進(jìn)行40個(gè)循環(huán),最后72℃延伸2min。取3μL PCR產(chǎn)物進(jìn)行電泳,并進(jìn)行紫外光譜分析。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同加熱處理后對沙門氏菌存活狀況的影響

表 1 不同加熱處理對沙門氏菌的致死情況Table 1 The death status of Salmonella under different heat treatments

從表1可知,所采取的5種熱處理方式均能有效殺死菌液中的沙門氏菌,其中65℃ 20min、85℃ 30min、沸水浴3min、121℃ 15min處理能完全殺死菌液中沙門氏菌,沸水浴2min處理后雖不能完全殺死菌液中的沙門氏菌,但其菌落形態(tài)已發(fā)生明顯變化,處理前菌落邊緣光滑,呈乳白色圓形菌落,處理后則菌落較小,顏色暗淡,邊緣呈不規(guī)則齒狀或放射狀的怪異形態(tài),繼續(xù)培養(yǎng)發(fā)現(xiàn)菌落生長緩慢。肉品在食用過程中經(jīng)常會(huì)在沸水中短時(shí)間處理,如火鍋中常見的“涮”,通常時(shí)間較短,對于沙門氏菌沸水中處理2min尚不能將其殺死,需要至少3min以上。因此,在肉品消費(fèi)過程中,需要提高殺菌時(shí)間以提高其安全性。

2.2 致死后沙門氏菌不同放置時(shí)間對基因組DNA消亡的影響

經(jīng)過平板計(jì)數(shù)后發(fā)現(xiàn),65℃ 20min、85℃ 30min、沸水浴3min、121℃ 15min處理后的沙門氏菌完全失活。對以上4種方式處理的菌液進(jìn)行室溫放置,每隔1d提取細(xì)菌基因組DNA,電泳后進(jìn)行分析。

2.2.1 65℃、20min處理后電泳結(jié)果

圖 1 65℃、20min處理后沙門氏菌DNA電泳圖譜Fig.1 Electrophoresis results of the DNA from Salmonella subjected to heat treatment at 65 ℃ for 20 min

由圖1可知,與原菌液相比,65℃、20min處理后的菌液DNA的條帶亮度明顯變?nèi)?,但仍能看出清晰的條帶。說明65℃、20min處理會(huì)破壞部分基因組DNA,影響DNA的提取效果,但不能完全使其降解。隨著放置時(shí)間的延長,DNA條帶慢慢變?nèi)?,說明致死后的細(xì)菌DNA會(huì)逐漸降解,但到18d為止,變化并不是很明顯。

2.2.2 85℃、30min處理后電泳結(jié)果

圖 2 85℃、30min處理后沙門氏菌DNA電泳圖譜Fig.2 Electrophoresis results of the DNA from Salmonella subjected to heat treatment at 85 ℃ for 30 min

由圖2可知,與原菌液相比,85℃、30min處理后的菌液DNA的條帶亮度明顯變?nèi)?。說明85℃、30min處理會(huì)破壞部分基因組DNA,隨著放置時(shí)間的延長,DNA條帶逐漸模糊,與65℃、20min處理相比變化更為明顯,說明85℃、30min致死后的細(xì)菌DNA降解速度更快,到18d為止,條帶已經(jīng)很模糊,但仍有完整的基因組DNA存在。

2.2.3 沸水浴3min處理后電泳結(jié)果

圖 3 沸水浴3min處理后沙門氏菌DNA電泳圖譜Fig.3 Electrophoresis results of the DNA from Salmonella subjected to boiling for 3 min

由圖3可知,沸水浴3min處理后的菌液在放置1、2、4d后可以看到很微弱DNA的條帶,放置6d后條帶消失。這說明沸水浴3min處理對基因組DNA的破壞程度很大,且對DNA提取效果的影響很大。隨著放置時(shí)間的延長,DNA降解速度很快,到第6天時(shí)基因組DNA已經(jīng)大部分降解,無可見條帶。

2.2.4 121℃、15min處理后電泳結(jié)果

由圖4可知,菌液經(jīng)過121℃、15min處理后,基因組DNA條帶完全消失。說明121℃、15min處理會(huì)嚴(yán)重破壞基因組DNA,處理后已經(jīng)沒有完整的基因組DNA存在。

圖 4 121℃、15min處理后沙門氏菌DNA電泳圖譜Fig.4 Electrophoresis results of the DNA from Salmonella subjected to sterilization at 121 ℃ for 15 min

2.2.5 長時(shí)間放置后死菌殘存DNA的PCR擴(kuò)增結(jié)果

圖 5 長時(shí)間放置后死菌殘存DNA的PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.5 PCR amplifi cation of DNA in dead bacilli after long storage period

由圖5可知,沙門氏菌在經(jīng)過65℃ 20min、85℃ 30min、沸水浴3min、121℃ 15min處理致死并放置相當(dāng)長一段時(shí)間后,其DNA擴(kuò)增條帶依然很明顯。沸水浴3min和121℃、15min處理后DNA的擴(kuò)增條帶比65℃、20min和85℃、30min處理后的有些暗淡。這說明雖然DNA電泳條帶已經(jīng)很模糊或消失,但死亡的細(xì)胞中仍存在有大量的目的基因片段存在,且這些基因片段消亡速度很慢,會(huì)在很長一段時(shí)間內(nèi)對PCR擴(kuò)增產(chǎn)生極大的作用。高溫處理對DNA的破壞則更為明顯。

由圖1~5可知,經(jīng)過不同溫度處理后,完整的基因組DNA會(huì)發(fā)生不同程度的降解,在經(jīng)過沸水浴3min和121℃、15min處理后的細(xì)胞中已經(jīng)很少有完整的大分子質(zhì)量的DNA存在,而是降解為了各種不同大小的基因碎片。沙門氏菌受到較低溫度處理時(shí),其基因組DNA的完整性受到的破壞程度相對較小,但DNA會(huì)隨著時(shí)間的延長也逐漸降解為分子質(zhì)量較小的片段。這些片段就包括引起PCR特異性擴(kuò)增的目的基因片段。這些分子質(zhì)量相對較小的片段會(huì)長期存在于死細(xì)胞中并且很不容易消亡,從而對基于DNA技術(shù)進(jìn)行的病原菌檢測等產(chǎn)生干擾作用。沙門氏菌DNA消亡速度與溫度高低和處理的時(shí)間長短有關(guān),加熱溫度越高、時(shí)間越長,沙門氏菌DNA消亡速度越快。

沙門氏菌是鮮肉及其制品中常見的,也是我國對肉品主要檢測和控制的食源性病原菌之一。肉類食品有多種加工和消費(fèi)方式,如“涮”、“煎”等,通常時(shí)間較短,本實(shí)驗(yàn)研究表明,對于沙門氏菌沸水中處理2min尚不能將其殺死,所以,需要提高殺菌時(shí)間以提高其安全性。而目前,PCR等分子技術(shù)在病原菌檢測方面的應(yīng)用越來越多,但從本實(shí)驗(yàn)結(jié)果來看,各種加工肉制品在經(jīng)過不同溫度殺菌以后,雖然肉品中的細(xì)菌被滅活,但加熱處理并不能使細(xì)菌基因組DNA完全降解消亡,大量的基因片段仍然殘存在死亡的細(xì)胞當(dāng)中,而且消亡速度很慢,尤其在較低溫度處理的肉品中更為明顯,這與死菌DNA會(huì)長期存在的研究結(jié)果一致[11-13]。121℃、15min處理后沙門氏菌的PCR研究結(jié)果與魯玉俠等[10]一致。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,加熱溫度越高、時(shí)間越長,沙門氏菌DNA消亡速度越快,這對于經(jīng)過不同加工方式處理后的產(chǎn)品,如果應(yīng)用PCR等技術(shù)分析檢測沙門氏菌,會(huì)對檢測結(jié)果產(chǎn)生很大的干擾作用,直接影響檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。

3 結(jié) 論

肉品在沸水中加熱時(shí)至少在3min以上才能使沙門氏菌完全滅活;加熱溫度越高、時(shí)間越長,沙門氏菌DNA消亡速度越快;不同溫度加熱后,菌液中仍存在大量的目的基因片段,對應(yīng)用DNA分析檢測沙門氏菌會(huì)產(chǎn)生很大的干擾作用,影響檢測結(jié)果的準(zhǔn)確性。

[1] TIRADO C, SCHMIDT K. WHO surveillance programme for control of foodborne infections and intoxications, results and trends across greater Europe[J]. Journal of Infection, 2001, 43: 80-84.

[2] WALLACE D J, GILDER T V, SHALLOW S, at al. Incidence of foodborne illnesses reported by the foodborne diseases active surveillance network (foodnet)-1997. foodnetworking group[J]. Journal of Food Protection, 2000, 63: 807-809.

[3] MALORNY B, HOORFAR J, BUNGE C, et al. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an international standard[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2003, 69: 290-296.

[4] ZHANG H M, SHI L, GUO S Y, et al. Identification and characterization of class 1 integron resistance gene cassettes among Salmonella strains isolated fromhealthy humans in China[J]. Microbiology and Immunology, 2004, 48(9): 639-645.

[5] MALORNY B, BUNGE C, HELMUTH R. A real-time PCR for the detection of Salmonella enteritidis in poultry meat and consumption eggs[J]. Journal of Microbiological Methods, 2007, 70(2): 245-251.

[6] MINAM H, SRINIVASAN V, GILLESPIE B E, et al. Application of SYBR green real-time PCR assay for specific detection of Salmonella spp. in dairy farm environmental samples[J]. International Journal of Food Microbiology, 2005, 102: 161-171.

[7] KNUT R, BIRGITTEM, SIGNEM D, et al. Use of ethidiummonoazide and PCR in combination for quantification of viable and dead cells in complex samples[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2005, 71(2): 1018-1024.

[8] PUSTERLA N, BYRNE B A, HODZIC E, et al. Use of quantitative real-time PCR for the detection of Salmonella spp. in fecal samples from horses at a veterinary teaching hospital[J]. The Veterinary Journal, 2010, 186: 252-255.

[9] PERELLE S, DILASSER F, MALORNY B, et al. Comparison of PCR-ELISA and lightcycler real-time PCR assays for detecting Salmonella spp. in milk and meat samples[J]. Molecular and Cellular Probes, 2004, 18: 409-420.

[10] 魯玉俠, 郭祀遠(yuǎn), 石磊. EMA-LAMP方法快速檢測死/活的食源性沙門氏菌[J]. 食品科學(xué), 2009, 30(22): 324-327.

[11] MALORNY B, TASSIOS P T, COOK N, et al. Standardization of diagnostic PCR for the detection of foodborne pathogens[J]. Food Microbiol, 2003, 83(1): 39-48.

[12] NOCKER A, CHEUNG C Y, CAMPER A K. Comparison of propidium monoazide with ethidium monoazide for differentiation of live vs. dead bacteria by selective removal of DNA from dead cells[J]. Journal of Microbiological Methods, 2006, 67: 310-320.

[13] OLIVEIRA S D, SANTOS L R, SCHUCH D M T, et al. Detection and identification of Salmonella from poultry-related samples by PCR[J]. Veterinary Microbiology, 2002, 87: 25-35.

[14] SEO K H, VALENTIN-BON I E, BRACKETT R E. Detection and enumeration of Salmonella enteritidis in homemade ice creamassociated with outbreak: comparison of conventional and real-time PCR methods[J]. Journal of Food Protection, 2006, 69(3): 639-643.

[15] WOLFFS P, NORLING B, RADSTRFM P. Risk assessment of falsepositive quantitative real-time PCR results in food, due to detection of DNA originating from dead cells[J]. Journal of Microbiological Methods, 2005, 60: 315-323.

[16] NOGVA H, DROMTORP S, NISSEN H, et al. Ethidium monoazide for DNA-based differentiation of viable and dead bacteria by 5V-nuclease PCR[J]. BioTechniques, 2003, 34(4): 804-813.

[17] WHYTE P, GILL K M, COLLINS J, et al. The prevalence and PCR detection of Salmonella contamination in raw poultry[J]. Veterinary Microbiology, 2002, 89: 53-60.

[18] LUO Jianfei, LIN Weitie, GUO Yong. Method to detect only viable cells in microbial ecology[J]. Appl Microbiol Biotechnol, 2010, 86: 377-384.

[19] MALORNY B, HOORFAR J, BUNGE C, et al. Multicenter validation of the analytical accuracy of Salmonella PCR: towards an international standard[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2003, 69: 290-296.

猜你喜歡
沸水肉品電泳
沸水浴消解-原子熒光光譜法測定土壤及水系沉積物中5種元素
輔助陽極在輕微型廂式車身電泳涂裝中的應(yīng)用
治毛囊炎
婦女生活(2019年3期)2019-03-18 01:59:58
像雞蛋一樣面對沸水
PPG第四屆電泳涂料研討會(huì)在長沙成功舉辦
上海建材(2017年4期)2017-04-06 07:32:03
改良的Tricine-SDS-PAGE電泳檢測胸腺肽分子量
淺析影響肉品質(zhì)量安全的幾大因素和對策
新形勢下畜禽屠宰檢疫與肉品品質(zhì)檢驗(yàn)
高密度二氧化碳?xì)⒕夹g(shù)及其在肉品工業(yè)中的應(yīng)用
慢性心力衰竭患者血清蛋白電泳的特點(diǎn)及其與預(yù)后的相關(guān)性分析
会理县| 大同县| 游戏| 阳曲县| 长阳| 会泽县| 浠水县| 巴彦淖尔市| 新民市| 高唐县| 时尚| 南丰县| 和田市| 丹东市| 杨浦区| 九江县| 福建省| 嘉祥县| 万盛区| 东兰县| 沁阳市| 浦东新区| 福建省| 兴城市| 区。| 巴塘县| 宁津县| 阿鲁科尔沁旗| 宣武区| 恩平市| 葵青区| 桃江县| 耿马| 吴川市| 收藏| 丰城市| 新闻| 东海县| 弋阳县| 浦城县| 顺昌县|