楊翠翠,李林,張?zhí)m
(首都醫(yī)科大學宣武醫(yī)院藥物研究室神經(jīng)變性病教育部重點實驗室,北京 100053)
阿爾茨海默?。ˋlzheimer's disease,AD)又稱老年性癡呆,是一種以進行性認知障礙和記憶力損害為主的中樞神經(jīng)系統(tǒng)退行性疾病,是臨床較為常見的神經(jīng)系統(tǒng)退行性病變[1]。其腦部典型的病理改變?yōu)樯窠?jīng)元丟失,細胞外有大量由β-淀粉樣蛋白(βamyloid,Aβ)組成的老年斑(senile plaques,SP)、神經(jīng)細胞內(nèi)神經(jīng)纖維絲纏結(neurofibrillary tangles,NFTs)等[1]。
目前,AD動物模型的建立有很多種,但每種動物模型均有局限性,并不能完全模擬AD的病理特征。該文對AD研究中常用動物模型進行綜述并對各類模型的優(yōu)缺點進行評價。
Aβ是老年斑的主要組成成分。Aβ是各種原因誘發(fā)AD的共同通路,是AD形成和發(fā)展的關鍵因素[2,3]。
淀粉樣前體蛋白(amyloid precursor protein,APP)基因突變時,β-APP主要由β-2分泌酶和γ-2分泌酶作用裂解為 Aβ[4,5],Aβ聚集可形成神經(jīng)毒性的原纖維,進而形成SP,從而加重AD的發(fā)展。轉APP基因模型是通過將外源性APP基因?qū)?,整合到基因組中后穩(wěn)定的表達并遺傳給后代。由于動物過多表達APP基因或其突變基因,導致Aβ沉積。1)Tg2576小鼠是轉人類APP695基因小鼠,6~8月時腦內(nèi)Aβ開始升高,10個月左右可見Aβ沉積,神經(jīng)炎斑形成,且隨年齡增加而加重,同時發(fā)現(xiàn)突觸丟失和小膠質(zhì)細胞增生[6]。此外,Tg2576小鼠Aβ淀粉變性可誘導tau蛋白聚積,使其空間記憶能力下降,對移位物體分辨能力降低[7]。2)APP23小鼠由轉人類APP695鼠和APP V717I鼠交配得來,3個月時出現(xiàn)空間記憶障礙,6個月時已有Aβ沉積,24個月時在皮質(zhì)和海馬出現(xiàn)大量Aβ,并且隨著年齡增長Aβ出現(xiàn)數(shù)量和體積增多[8]。3)APPswe/PS-1雙轉基因小鼠可表達人突變的PS-1(M146L)基因和APP(K670N,671N)基因,該轉基因小鼠在12w后,其皮層和海馬可見Aβ沉積,沉積隨年齡逐漸增加[9]。該模型主要應用于研究PS-1在Aβ沉積中的作用。9個月時,轉基因鼠活動次數(shù)減少,空間記憶能力降低[10]。
評價:APP轉基因小鼠及APP/PS-1雙轉基因小鼠是目前國際最為認可的AD動物模型,是AD藥效學評價的金標準。但其造價昂貴,成模周期較長,一定程度上制約了該模型的廣泛應用。
由于轉基因動物成本高,試驗周期較長,腦內(nèi)注射Aβ建立擬癡呆模型可一定程度替代轉基因模型用于研究Aβ與AD發(fā)病的關系及藥物干預。體外實驗表明Aβ在1mol濃度時即對神經(jīng)元產(chǎn)生毒性作用。腦內(nèi)注射Aβ可使動物產(chǎn)生與AD相似的行為障礙和記憶缺損癥狀,Aβ沉積,氧化應激損傷等[11]。注射Aβ是目前較常用的一種擬AD動物模型[12,13],其制備方法有海馬內(nèi)單點注射、海馬內(nèi)多點注射、側腦室注射等。大鼠左側側腦室一次性注射聚集態(tài)的Aβ25-35,可以造成大鼠空間記憶能力降低,膠質(zhì)細胞炎癥反應,但并未有典型NFTs的形成[14,15];Yamaguchi等[16]采用大鼠側腦室內(nèi)一次性注射聚集態(tài)Aβ25-35,發(fā)現(xiàn)AD模型大鼠出現(xiàn)學習記憶障礙。
評價:該模型成本少,試驗周期較轉基因動物短,可用于探討Aβ在AD中的發(fā)病機制。不足:1)對動物導入Aβ時,注射本身將對腦組織形成局灶性穿透性損傷;2)大量的Aβ聚集在注射位點局部而不是彌散地分布到腦內(nèi)。
Tau蛋白是一種微管相關蛋白,具有穩(wěn)定微管,促進微管裝配的功能。異常過度磷酸化的tau蛋白是NFTs的核心。目前認為tau蛋白磷酸化是體內(nèi)多種蛋白激酶,如糖原合成酶激酶-3(GSK-3)、周期蛋白依賴性激酶-5(cdk-5)、蛋白激酶 A(PKA)等引起的磷酸化和PPs去磷酸化兩種作用失調(diào)所導致。根據(jù)以上原理,目前的動物模型制作主要分為抑制tau PPs所致tau蛋白磷酸化模型及激活tau蛋白激酶所致tau蛋白磷酸化模型。
岡田酸(okadaicacid,OA)是一種絲氨酸/蘇氨酸蛋白磷酸酯酶抑制劑,是PP1和PP2A的抑制劑。將OA注射到大鼠側腦室或者海馬均可導致大鼠空間記憶力下降以及tau蛋白在ser396、ser199/202、ser404 等 位 點 的 磷 酸 化 顯 著 增 加[17,18]。Wortmannin(WT)能夠抑制磷脂酰肌醇3激酶抑制劑(PI3K)的活性,從而抑制GSK-3β在ser9位點的磷酸化而導致GSK-3β活性增高,因此 WT造??梢詫е麓笫罂臻g記憶力下降,GSK-3β活性增加,tau蛋白在ser396/404和ser199/202等位點的磷酸化[19]。該模型只有tau蛋白高度磷酸化的表現(xiàn),沒有Aβ的病理表現(xiàn)。
評價:以上兩種模型成模周期短,只有tau蛋白的病理表現(xiàn),適合研究tau蛋白磷酸化相關的機制及拮抗tau蛋白磷酸化為靶標的藥物作用機制。但造模方式較為復雜,需定位準確,工具藥藥量適中。
為了闡明tau蛋白在AD病理過程中的發(fā)生機制,一些學者構建了轉人類tau蛋白基因的轉基因動物,主要有P301L、轉人類野生型tau基因小鼠,其中P301L包括JNPL3與rTg4510。P301L出現(xiàn)神經(jīng)元丟失和NFTs,但不會出現(xiàn)Aβ淀粉樣斑塊,90%的動物會存在輕度運動功能障礙,在動物腦干、小 腦 和 脊 髓 中 均 可 見 NFTs[20,21]。 相 比 之 下,Ishihara等[22]在過表達人類最小tau蛋白片段轉基因小鼠的海馬、扁桃體、內(nèi)嗅皮質(zhì)形成congophilic tau,并首次檢測出類NFTs的特定的并與β折疊片層結構結合的包涵物。Andorfer[23]在過表達人類tau蛋白片段轉基因小鼠(tau蛋白基因敲除)中發(fā)現(xiàn),6個月后在皮層、海馬部位出現(xiàn)tau蛋白磷酸化和NFTs,在紋狀體,小腦和脊髓中較少或無tau蛋白磷酸化和NFTs的產(chǎn)生,這與人類AD的病理變化相似。此鼠15個月出現(xiàn)神經(jīng)元丟失,與P301L不同的是,不出現(xiàn)運動功能的變化。
評價:轉基因動物發(fā)病時間長,在多個腦區(qū)出現(xiàn)tau蛋白磷酸化和NFTs,一定程度上模擬了人類AD病理變化和行為學改變特征。但存在成本高、外源基因不穩(wěn)定等問題。
隨著實驗技術的完善和進步,出現(xiàn)了同時表達AD的兩大典型病理變化Aβ和NFTs的轉基因動物。Oddo等分別把兩種突變基因 APP-Swe和tauP301L顯微注射入單轉PS1M146V基因鼠純合子的胚胎干細胞中,經(jīng)篩選得到3xTg-AD小鼠。該轉基因小鼠腦內(nèi)逐漸出現(xiàn)SP和NFTs,長時程增強電位隨年齡增長而逐漸下降,這一改變出現(xiàn)在SP和 NFTs形成之前[24-26]。
評價:多種轉基因組合方法全面模擬了AD主要病理變化和行為學改變特征。轉基因動物的缺點在于難以重復、外源性基因表達不穩(wěn)定、繁殖能力低下、抵抗疾病能力差、成本昂貴等問題。但是轉基因動物模型更能全面模擬AD發(fā)病的過程,具有廣闊的應用前景,在越來越多的研究中得到應用。
膽堿能神經(jīng)遞質(zhì)是腦內(nèi)重要的化學物質(zhì),它沿著中膈、海馬、基底前腦系統(tǒng)投射到皮質(zhì),傳導沖動反復出現(xiàn),使之有可能學習新的知識。AD患者腦中膽堿能神經(jīng)元缺失、突觸前乙酰膽堿的合成降低、膽堿乙酰轉移酶的活性和對膽堿的攝取能力明顯下降,這些變化與患者的認知功能損害程度呈正相關[27]。因此通過破壞動物大腦的膽堿能系統(tǒng),導致學習記憶障礙而制作AD動物模型。
此動物模型主要通過損毀海馬傘使動物出現(xiàn)學習和記憶功能障礙而建立。Hefti等[28]通過切斷海馬傘的方式造成膽堿能神經(jīng)元丟失及動物空間定向和記憶障礙。此外,通過電損傷Meynert基底核也可導致動物大腦皮層乙酰膽堿含量明顯降低,從而破壞動物學習記憶能力。
評價:采用該方法建立動物模型周期較短,但手術定位困難,難免損傷手術附近部位。
此AD模型主要采用化學手段破壞膽堿能系統(tǒng)建立。大鼠腹腔注射東莨菪堿及樟柳堿(膽堿能拮抗劑)后,可阻斷動物大腦皮層中乙酰膽堿受體的結合位點,引起膽堿能系統(tǒng)功能障礙[29]。
另外,通過腦室或核周內(nèi)注射某些神經(jīng)毒素損害特定區(qū)域的神經(jīng)元,可導致學習記憶能力降低和膽堿能功能喪失。興奮性氨基酸主要有:海人酸(KailllCaeid,KA)、鵝 膏 覃 氨 酸 (Ibotenicaeid,IBO)、N-甲基-D-天門冬氨酸(NMDA)、使君子酸等,注入大鼠 Meynert基底核可建立AD模型[30]。此法可導致膽堿能神經(jīng)元減少、皮質(zhì)膽堿乙?;D移酶(ChAT)活性降低,但不破壞通過此區(qū)域的神經(jīng)纖維。
評價:該模型可復制AD膽堿能功能減退的特征性病理變化,是AD藥物評價常用的動物模型。制模時需在應用的藥物種類、劑量、作用部位及時間等方面優(yōu)化條件,才能獲得比較理想的模型病理狀態(tài)。該模型不出現(xiàn)AD的典型病理改變——老年斑和NFTs,因此只能應用于膽堿能系統(tǒng)的機制研究及藥物評價。
AD是一個與年齡密切相關的疾病,衰老因素在AD發(fā)病過程中起著重要作用。隨著世界人口老齡化加重,AD的患病率明顯上升,給患者和社會帶來沉重的負擔。以衰老為AD發(fā)病基礎的動物模型成為實驗研究中不可或缺的部分。
通過動物的自然衰老獲得AD動物模型,包括老齡化小鼠、大鼠、猴及狗等。此模型的認知功能障礙等神經(jīng)系統(tǒng)改變是自然發(fā)生的,與AD真實的病理生理改變更為接近[31]。大鼠、小鼠及猴是自然衰老模型中較為常用的動物。老年大鼠、小鼠及猴出現(xiàn)突觸缺失、膽堿能神經(jīng)元減少、Aβ沉積等病理變化[32,33]
近年來研究表明,老年狗能夠出現(xiàn)類似AD的記憶力障礙,但是缺少檢測狗記憶力障礙的合適手段。Salvin等[34]最近研發(fā)出一種sand maze用來檢測狗空間記憶能力,并發(fā)現(xiàn)老年狗穿越目標區(qū)域次數(shù)明顯低于青年狗。
評價:1)AD是一種不同于正常衰老的進行性神經(jīng)退行性疾病,故老齡動物有其局限性,只是模擬了部分與人類正常衰老相關的神經(jīng)變化改變,并不能全面模擬AD的變化。2)飼養(yǎng)周期和實驗周期長、病死率高等缺點,大大限制了該模型的應用。
SAMP8小鼠與自然衰老小鼠相似,有類似老年癡呆腦部病理改變及學習記憶功能降低的變化[35],但與自然衰老小鼠或者大鼠相比,其出現(xiàn)類似AD腦內(nèi)病理變化較早。有研究表明,10月齡SAM鼠與22月齡wistar大鼠均能出現(xiàn)氧化損傷、炎癥反應及凋亡[36]。1~5月齡的SAMP8鼠腦內(nèi)即出現(xiàn)脂質(zhì)過氧化,氧自由基增加,學習記憶力損傷等變化[37]。在5月齡的時候,與SAMR1相比,SAMP8鼠腦內(nèi)出現(xiàn)tau蛋白高度磷酸化,其中海馬、皮層、紋狀體較為明顯,小腦內(nèi)無tau蛋白高度磷酸化[38]。
評價:該模型衰老時間短,出現(xiàn)AD腦內(nèi)病理變化早,縮短研究周期。缺陷:1)SAMP8小鼠與AD發(fā)病過程和機制是否一致有待進一步研究;2)實驗成本高;3)SAMP8小鼠壽命短,不適合用于長周期的實驗。
注射D-半乳糖誘導后,動物中樞神經(jīng)系統(tǒng)可出現(xiàn)例如動物學習能力下降,神經(jīng)細胞病理改變,神經(jīng)元丟失,線粒體腫脹呈空泡狀等退行性病變,與老年動物腦內(nèi)病理變化表現(xiàn)一致,故其常作為抗衰老藥物研究模型[39]。羅煥敏等[40]將NIH小鼠腹腔注射D-半乳糖120mg/kg連續(xù)60d,小鼠大腦皮層出現(xiàn)類老年斑的病理改變,在海馬區(qū)可見神經(jīng)元變性壞死。但此類模型未出現(xiàn)NTFs及老年斑樣改變。
線粒體異常的氧化磷酸化,尤其是COX在AD發(fā)病中的作用引起了人們的重視。多項研究表明,AD患者線粒體內(nèi)COX活性明顯減少且較為特異[41-45]。Mosconi利用正電子斷層掃描(Positron Emission Tomography,PET)檢查顯示AD患者腦組織氧化和能量代謝受損,主要表現(xiàn)為腦顳部及頂部葡萄糖利用(glucose utilization,GU)減少[46]。目前研究發(fā)現(xiàn)采用NaN3可造成動物學習記憶障礙。采用微泵長期、緩慢、恒速地在大鼠皮下灌注一定濃度的NaN3后進行Morris水迷宮實驗,測定后發(fā)現(xiàn)其空間學習記憶能力受到損傷,holeboard迷宮實驗結果也表明其存在空間記憶保持的缺陷[47]。有學者研究表明,微泵恒速皮下灌注NaN31mg/(kg·h),30d 即 可 出 現(xiàn) 學 習 記 憶 障 礙(Morris水迷宮和避暗反應),但不引起大鼠興奮性、新異環(huán)境感知和緊張情緒的改變(曠場分析);增加劑量致2mg/(kg·h),模型大鼠學習記憶障礙加重,且出現(xiàn)興奮性,新異環(huán)境感知和緊張情緒的異常。此模型大鼠腦內(nèi)可出現(xiàn)ChAT活性降低和海馬神經(jīng)元損傷。
評價:此模型模擬AD長時程、進行性惡化的發(fā)病特點。NaN3有毒性,造模時需要對其用量及實驗操作手段嚴格要求。此外,造模所用微泵價格昂貴,造模成本較高。
目前常用的AD動物模型多為針對特定發(fā)病機制和靶點而制備,因此多數(shù)模型只能模擬AD諸多病理變化中的一個側面,而不能全面體現(xiàn)AD的病理、生化及神經(jīng)行為學等方面的全部變化特征。我們應根據(jù)不同的實驗目的選擇合適的模型。隨著對AD發(fā)病分子機制認識的不斷深入,能模擬AD多個發(fā)病環(huán)節(jié)及病理進程的新動物模型將不斷出現(xiàn)。
[1]莊瑩,陳杰.阿爾茨海默病病因及發(fā)病機制研究進展[J].吉林醫(yī)藥學院學報,2008,29(2):101-104.
[2]Lu YL,Lu K,Chen ZM,et al.Changes of neuropeptide in serum and CSF of muti-infarct dementic patient[J].Di-si Junyi Daxue Xuebao:J Fourth Mil Med Univ,2001,22(6):566-567.
[3]呂俊華,郭晶,楊文豪.綠茶多酚對D-半乳糖Aβ25-35誘導的AD模型小鼠學習記憶障礙的改善作用[J].中藥材,2006,29(4):352-354.
[4]巴根,湯雋,張進.阿爾茨海默病發(fā)病機制的相關研究進展[J].中國全科醫(yī)學,2006,9(11):937-938.
[5]Gordon MN,King DL,Diamond DM,et al.Correlation between cognitive deficits and Abeta deposits in transgenic APP+PS1mice[J].Neuroboil Ageing,2001,22(3):377-385.
[6]Kawarabayashi T,Younkin LH,Saido TC,et al.Agedependent changes in brain,CSF,and plasma amyloidβ protein in the Tg2576transgenic mouse model of Alzheimer's disease[J].J Neurosci,2001,21(2):372-381.
[7]Ognibene E,Middei S,Daniele S,et al.Aspects of spatial memory and behavioral disinhibition in Tg2576transgenic mice as a model of Alzheimer's disease[J].Behav Brain Res,2005,156(2):225-232.
[8]Kelly PH,Bondolfi L,Hunziker D,et al.Progressive agerelated impairment of cognitive behavior in APP23transgenic mice[J].Neurobiol Aging,2003,24(2):365-378.
[9]Su D,Zhao Y,Xu H,et al.Isoflurane exposure during midadulthood attenuates age-related spatial memory impairment in APP/PS1transgenic mice[J].PloS one,2012,7(11):e50172.
[10]Ferguson SA,Sarkar S,Schmued LC.Longitudinal behavioral changes in the APP/PS1transgenic Alzheimer's Disease model[J].Behav Brain Res,2013,242:125-134.
[11]Tian X,Wang J,Dai J,et al.Hyperbaric oxygen and Ginkgo Biloba extract inhibit Aβ25-35-induced toxicity and oxidative stress in vivo:apotential role in Alzheimer's disease[J].Int J Neurosci,2012,122(10):563-569.
[12]Giménez-Llort L,Blázquez G,Ca?ete T,et al.Modeling behavioral and neuronal symptoms of Alzheimer′s disease in mice:a role for intraneuronal amyloid[J].Neurosci Biobehav Rev,2007,31(1):125-147.
[13]Lord A,Kalimo H,Eckman C,et al.The Arctic Alzheimer mutation facilitates early intraneuronal Abeta aggregation and senile plaque formation in transgenic mice[J].Neurobiol Aging,2006,27(1):67-77.
[14]楊曉娟,張生林,陳蕓,等.新型復合式老年癡呆動物模型的建立[J].中西醫(yī)結合心腦血管病雜志,2006,4(4):318-320.
[15]Lee YW,Kim DH,Jeon SJ,et al.Neuroprotective effects of salvianolic acid B on an Aβ25-35peptide-induced mouse model of Alzheimer's disease[J].Eur J Pharmacol 2013,704(1-3):70-77.
[16]Yamaguchi Y,Kawashima S.Effects of amyloid-β-25-35on passive avoidance,radial-arm maze learning and choline acetyltransferase activity in the rat[J].Eur J Pharmacol,2001,412(3):265-272.
[17]白娟,張生林,楊寧寧,等.吡格列酮對AD大鼠模型學習記憶及 GSK-3β、p-tau蛋 白 的 影 響 [J].中 國 醫(yī) 療 前 沿,2010,5(21):28-29.
[18]Li L,Liu J,Yan X,et al.Protective effects of ginsenoside Rd against okadaic acid-induced neurotoxicity in vivo and in vitro[J].J Ethnopharmacol,2011,138(1):135-141.
[19]Liu SJ,Zhang AH,Li HL,et al.Overactivation of glycogen synthase kinase-3by inhibition of phosphoinositol-3kinase and protein kinase C leads to hyperphosphorylation of tau and impairment of spatial memory[J].J Neurochem,2003,87(6):1333-1344.
[20]王艷艷,陳汝筑,朱小南,等.含P301L突變的Tau轉基因小鼠純合子品系的建立及鑒定[J].中國應用生理學雜志,2012,28(3):221-224.
[21]Mustroph ML,King MA,Klein RL,et al.Adult-onset focal expression of mutated human tau in the hippocampus impairs spatial working memory of rats[J].Behav Brain Res,2012,233(1):141-148.
[22]Ishihara T,Zhang B,Higuchi M,et al.Age-Dependent Induction of Congophilic Neurofibrillary Tau Inclusions in Tau Transgenic Mice[J].Am J Pathol,2001,158(2):555-562.
[23]Andorfer C, Kress Y, Espinoza M, et al.Hyperphosphorylation and aggregation of tau in mice expressing normal human tau isoforms[J].J Neurochem,2003,86(3):582-590.
[24]Oddo S,Caccamo A,Shepherd JD,et al.Triple-transgenic model of Alzheimer's disease with plaques and tangles:intracellular Aβand synaptic dysfunction[J].Neuron,2003,39(3):409-421.
[25]Stieler JT,Bullmann T,Kohl F,et al.The physiological link between metabolic rate depression and tau phosphorylation in mammalian hibernation[J].PloS one,2011,6(1):e14530.
[26]Wang LL,Na X,Zhu XN,et al.Generation of Tau/App/PS1 triple-transgenic mouse model and the study of its biological characteristics[J].Zhongguo Ying Yong Sheng Li Xue Za Zhi.2012,28(4):294-297
[27]Whitehouse PJ.Cholinergic therapy in dementia[J].Acta Neurol Scand Suppl,1993,149:42-45.
[28]Hefti F,Dravid A,Hartikka J.Chronic intraventricular injections of nerve growth factor elevate hippocampal choline acetyltransferase activity in adult rats with partial septohippocampal lesions[J].Brain Res,1984,293(2):305-311.
[29]楊軍,王靜.腦康泰膠囊對小鼠學習記憶的改善作用[J].中藥新藥與臨床藥理,2000,11(1):29-31.
[30]Scali C,Prosperi C,Vannucchi MG,et al.Brain inflammatory reaction in an animal model of neuronal degeneration and its modulation by an anti-inflammatory drug:implication in Alzheimer's disease[J].Eur J Neurosci,2000,12(6):1900-1912.
[31]Woodruff-Pak DS,Trojanowski JQ.The older rabbit as an animal model:Implications for Alzheimer's disease[J].Neurobiol Aging,1996,17(2):283-290.
[32]Mostany R,Anstey JE,Crump KL,et al.Altered synaptic dynamics during normal brain aging[J].J Neurosci,2013,33(9):4094-4104.
[33]Ni C,Tan G,Luo A,et al.Melatonin Premedication Attenuates Isoflurane Anesthesia-Induced β-Amyloid Generation and Cholinergic Dysfunction in the Hippocampus of Aged Rats[J].Int J Neurosci,2013,123(4):213-220.
[34]Salvin HE,McGreevy PD,Sachdev PS,et al.The canine sand maze:an appetitive spatial memory paradigm sensitive to agerelated change in dogs[J].J Exp Anal Behav,2011,95(1):109-118.
[35]Butterfield DA,Poon HF.The senescence-accelerated prone mouse(SAMP8):a model of age-relatedcognitive decline with relevance to alterations of the gene expression and proteinabnormalities in Alzheimer's disease[J].Exp Gerontol,2005,40(10):774-783.
[36]Tresguerres JA,Kireev R,F(xiàn)orman K,et al.Effect of chronic melatonin administration on several physiological parameters from old Wistar rats and SAMP8mice[J].Curr Aging Sci,2012,5(3):242-253.
[37]Sun CY,Qi SS,Zhou P,et al.Neurobiological and pharmacological validity of curcumin in ameliorating memory performance of senescence-accelerated mice[J].Pharmacol Biochem Behav,2013,105:76-82.
[38]Canudas AM,Gutierrez-Cuesta J,Rodríguez MI,et al.Hyperphosphorylation of microtubule-associated protein tau in senescence-accelerated mouse(SAM)[J].Mech Ageing Dev,2005,126(12):1300-1304.
[39]Shang YZ,Gong MY,Zhou XX,et al.Improving effects of SSF on memory deficits and Pathological changes of neural and immunological systems in senescent mice[J].Acta Pharmacol Sin,2001,22(12):1078-1083.
[40]羅煥敏,陳子晟.一種新的老年癡呆動物模型[J].中國老年學雜志,2003,3(23):179-182
[41]Parker WD Jr,F(xiàn)illey CM,Parks JK.Cytochrome oxidase deficiency in Alzheimer′s disease [J].Neurology,1990,40(8):1302-1303.
[42]Parker WD Jr,Mahr NJ,F(xiàn)illey CM,et al.Reduced platelet cytochrome c oxidase activity in Alzheimer′s disease[J].Neurology,1994,44(6):1086-1090.
[43]Mutisya EM,Bowling AC,Beal MF.Cortical cytochrome oxidase activity is reduced in Alzheimer′s disease [J].J Neurochem,1994,63(6):2179-2184.
[44]Parker WD Jr,Parks JK.Cytochrome c oxidase in Alzheimer′s disease brain:purification and characterization[J].Neurology,1995,45(3Pt 1):482-486.
[45]李子艷,馬慧冬.阿爾茨海默病轉基因小鼠的行為學檢測方法[J].中國醫(yī)藥導報,2011,8(16):13-15.
[46]Mosconi L.Brain glucose metabolism in the early and specific diagnosis of Alzheimer's disease.FDG-PET studies in MCI and AD[J].Eur J Nucl Med Mol Imaging,2005;32(4):486-510.
[47]Callaway NL,Riha PD,Wrubel KM,et al.Methylene blue restores spatial memory retention impaired by an inhibitor of cytochrome oxidase in rats[J].Neurosci Lett,2002,332(2):83-86.