張 美 超,劉 廷 強(qiáng),王 東 明,金 鳳 燮,魚 紅 閃
(大連工業(yè)大學(xué) 生物工程學(xué)院,遼寧 大連 116034)
鼠李糖作為一種單糖,是甘露糖6位的一個(gè)羥基被氫取代最后變成—CH3的衍生物[1],它在自然界主要以L 型存在。鼠李糖在細(xì)菌和植物中分布最為廣泛,主要以與其他糖類或非糖類結(jié)合成多糖、糖苷或植物膠的形式存在于植物或細(xì)菌中。它可以作為藥物的中間體[2]、合成強(qiáng)心藥物、合成香料Furaneol[3-4],也可與其他物質(zhì)反應(yīng)形成風(fēng)味物、用作甜味劑[5-6]、還可作為腸道滲透測試劑使用[7],并具有明顯的抗癌的作用[8]。
生產(chǎn)鼠李糖的傳統(tǒng)方法是將天然植物中含有鼠李糖基的大分子天然苷類化合物,進(jìn)行酸堿水解后,通過分離純化技術(shù)獲得鼠李糖純品。但是由于鼠李糖多與其他單糖共存于天然苷類化合物中,酸堿水解后,產(chǎn)物含有多種單糖,不利于鼠李糖后續(xù)的分離純化,而且該法對環(huán)境污染大,因此不適宜大量制備。生物酶法因其具有水解特異性好、環(huán)境友好等特點(diǎn),為鼠李糖的制備提供了新的思路。已有文獻(xiàn)報(bào)道從自然界篩選菌株與天然植物中的有效成分共發(fā)酵從而轉(zhuǎn)化生成鼠李糖的工藝,李玉山等[9]利用酵母發(fā)酵,從蘆丁水解液中制備L-鼠李糖,其質(zhì)量濃度可達(dá)9.52g/L;魏勝華等[10]也利用酵母發(fā)酵轉(zhuǎn)化柚皮苷得到了高純度的鼠李糖。本實(shí)驗(yàn)室前期已篩選出一種蘆?。粒罄钐擒彰福撁改芴禺愋运馓J丁上的鼠李糖苷鍵,生成異槲皮苷和鼠李糖[11]。本論文通過大孔吸附樹脂,結(jié)合結(jié)晶法,對蘆丁水解產(chǎn)物進(jìn)行分離純化,從而制備高純度的鼠李糖,為生物轉(zhuǎn)化法大量生產(chǎn)鼠李糖提供研究依據(jù)。
鼠李糖、蘆丁、槲皮素、異槲皮苷樣品,美國Sigma公司;菌種Absidiasp.R9g,大連工業(yè)大學(xué)生物工程學(xué)院菌種保藏所;薄層層析板Silica Gel-60-F254,德國Merck 公司;SP207 大孔吸附樹脂,日本三菱化成工業(yè)公司。
1.2.1 大孔吸附樹脂分離酶解產(chǎn)物
采用由日本三菱化成工業(yè)公司生產(chǎn)的Sepabeads SP207 大孔吸附樹脂,它以聚苯乙烯基苯為基體,并在苯乙烯基體上接了一個(gè)溴,非常適合分離蘆丁、異槲皮苷等極性不大的芳香類化合物。24g蘆丁經(jīng)酶解后,酶解液反復(fù)上樣,薄層層析跟蹤檢測,直至異槲皮苷被充分吸附為止。對吸附達(dá)飽和的SP207大孔吸附樹脂柱,用去離子水充分洗滌,收集鼠李糖粗液,進(jìn)行減壓濃縮,即為鼠李糖粗糖液。
1.2.2 鼠李糖的精制
取濃縮后的鼠李糖粗糖液,分別配制糖溶液質(zhì)量濃度為0.60、0.50、0.40、0.30、0.20、0.10g/mL的鼠李糖溶液各4 mL,并放于干燥器中靜置結(jié)晶。定期觀察晶體的生長狀態(tài),待晶體析出,分別收集晶體,干燥。
1.2.3 鼠李糖的檢測方法
1.2.3.1 薄層層析法(TLC)檢測
用微量點(diǎn)樣器吸取標(biāo)準(zhǔn)品及樣品,點(diǎn)樣于薄層層析板上,將點(diǎn)好樣品的薄層層析板放入層析缸中展開。糖類物質(zhì):展開劑為V(正丁醇)∶V(吡啶)∶V(水)=6∶4∶1,顯色劑為苯酚-硫酸(3g苯酚加5mL濃硫酸,再加95mL無水乙醇)。黃酮類物質(zhì):展開劑為V(乙酸乙酯)∶V(丁酮)∶V(甲醇)∶V(水)=10∶7∶1∶1,于紫外燈下觀察。比較樣品點(diǎn)與標(biāo)準(zhǔn)品點(diǎn)位置可知樣品中所含成分。
1.2.3.2 高效液相色譜法(HPLC)檢測
分別取20μL 鼠李糖和葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液(1.0mg/mL)和待測樣品溶液(1.0 mg/mL)進(jìn)行HPLC檢測。通過待測樣品HPLC圖譜與鼠李糖標(biāo)準(zhǔn)品及葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的HPLC圖譜的出峰時(shí)間比對來確定樣品的組分。HPLC 條件如下:色譜柱,Kromasil NH2(4.6 mm×250 mm,5μm),流動(dòng)相為V(乙腈)∶V(水)=80∶20,體積流量為1 mL/min,柱溫為35 ℃,進(jìn)樣量為20μL,載氣為氮?dú)?,體積流量為2L/min,載氣壓力為0.1 MPa,ELSD 的漂移管溫度為80 ℃。
1.2.3.3 DNS測糖法
配制1mg/mL的鼠李糖溶液25mL,分別取1、2、3、4、5mL于5支刻度管中,并分別用去離子水定容至10 mL,即為標(biāo)準(zhǔn)品鼠李糖梯度溶液。以標(biāo)準(zhǔn)糖濃度作縱坐標(biāo),光密度OD540nm為橫坐標(biāo),作標(biāo)準(zhǔn)曲線。樣品測定參照標(biāo)準(zhǔn)曲線測定步驟,并做3個(gè)平行實(shí)驗(yàn)。通常所測樣品的吸光值為0.2~0.8,有較好的線性趨勢,因此糖液如果濃度過高,需要稀釋后再進(jìn)行測定,以減小誤差。
24g蘆丁經(jīng)酶水解后,采用SP207大孔吸附樹脂對水解液中的異槲皮苷和鼠李糖進(jìn)行初步分離。如圖1 可知,經(jīng)SP207 大孔吸附樹脂吸附后,水洗脫溶液中主要含有鼠李糖,幾乎不含有異槲皮苷,說明SP207大孔吸附樹脂法分離鼠李糖和異槲皮苷的效果較好,分離得到的鼠李糖粗糖液中不含有異槲皮苷。水洗脫液經(jīng)濃縮后,經(jīng)DNS法測得粗糖液中鼠李糖的質(zhì)量為4.18g,得率為17.4%。
圖1 大孔吸附樹脂分離酶反應(yīng)產(chǎn)物的TLC檢測Fig.1 TLC pattern of separation of enzymatic products by macroporous resin
將鼠李糖粗糖液分別配制不同濃度的鼠李糖溶液,于添加變色硅膠的密閉容器中靜置結(jié)晶,觀察晶體的生長狀態(tài)、晶體形態(tài),如表1所示。由表1可知,當(dāng)糖質(zhì)量濃度較小時(shí),不利于形成晶核,所以無法結(jié)晶。隨著糖質(zhì)量濃度的增加,溶液的過飽和狀態(tài)越來越高,有利于晶體的析出,出晶時(shí)間也隨之加快,晶體得率也隨之提高;當(dāng)糖質(zhì)量濃度過高、達(dá)到飽和狀態(tài)時(shí),糖溶液的黏度過大反而會(huì)抑制晶體析出,晶體得率反而下降,甚至無法析出晶體。因此糖質(zhì)量濃度應(yīng)在操作條件允許的范圍內(nèi)取最大值。從鼠李糖結(jié)晶溶液中挑取部分晶體放置在Motic AE31熒光倒置顯微鏡下觀察并拍攝晶體形態(tài),結(jié)果見圖2。
表1 鼠李糖晶體表觀形態(tài)及結(jié)晶得率數(shù)據(jù)Tab.1 Surface morphology and crystallization yield of rhamnose
由圖2及干品數(shù)據(jù)可知,當(dāng)鼠李糖水溶液到達(dá)其過飽和度開始析出晶體時(shí),在一定的時(shí)間范圍內(nèi),糖質(zhì)量濃度為0.1~0.5g/mL 的鼠李糖溶液均能析出晶體,只是形成的晶體多為細(xì)碎較小的顆粒狀;當(dāng)糖質(zhì)量濃度為0.4g/mL 時(shí),晶體顆粒較為適中,透光率也較好;當(dāng)糖質(zhì)量濃度大于0.4g/mL時(shí),晶體顆粒越來越大,透光率相對降低,干燥后的晶體表面能觀察到有色素附著。
鼠李糖液質(zhì)量濃度、結(jié)晶速率和質(zhì)量之間有著密切聯(lián)系,隨著糖質(zhì)量濃度的升高,有利于糖液快速達(dá)到過飽和狀態(tài),加快結(jié)晶速率,提高了晶體得率。但是當(dāng)糖質(zhì)量濃度過高時(shí),破壞了溶液的動(dòng)態(tài)平衡,結(jié)晶速率和結(jié)晶率反而降低。同時(shí),糖質(zhì)量濃度過高時(shí),溶液中的雜質(zhì)也容易析出,造成了晶體析出時(shí)伴隨著晶體表面上雜質(zhì)的附著,影響了晶體的質(zhì)量。
配制1.0 mg/mL 的鼠李糖標(biāo)準(zhǔn)品溶液和1.0mg/mL的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)溶液,并以大批量結(jié)晶所得晶體作為待測樣品配制1.0mg/mL 的待測樣品溶液。分別取20 μL 進(jìn)行HPLC 檢測,HPLC檢測圖譜見圖3,所得數(shù)據(jù)如表2 所示。由圖3和表2數(shù)據(jù)可知,結(jié)晶樣品經(jīng)HPLC 檢測均為單一峰,且保留時(shí)間均與鼠李糖標(biāo)準(zhǔn)品出峰保留時(shí)間相近,而在葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)品的出峰保留時(shí)間處無峰出現(xiàn),說明結(jié)晶樣品中已不含葡萄糖,而為純度較高的鼠李糖晶體,純度為99.0%。
表2 鼠李糖結(jié)晶樣品HPLC圖解析Tab.2 HPLC pattern analysis of rhamnose samples
在生物酶法轉(zhuǎn)化蘆丁研究基礎(chǔ)之上,采用SP207大孔吸附樹脂法對酶解產(chǎn)物中鼠李糖進(jìn)行分離,其中24g蘆丁的水解產(chǎn)物經(jīng)分離可得到鼠李糖的質(zhì)量為4.18g,得率為17.4%。分離得到的糖液進(jìn)行濃縮后可直接進(jìn)行結(jié)晶精制,當(dāng)濃縮至0.4g/mL 時(shí)達(dá)到過飽和狀態(tài),結(jié)晶所得晶體顆粒飽滿,無色透明,純度可達(dá)99.0%。該研究方法分離效果好,鼠李糖得率較高,且操作簡單,具有一定的工業(yè)化應(yīng)用前景。
[1]顧瑩,劉永和,李國光,等.沙苑子化學(xué)成分的研究[J].西北藥學(xué)雜志,1997,12(3):107-109.
[2]李祖義,李江云,徐國梁,等.微生物發(fā)酵制備鼠李糖最佳條件的研究[J].生物工程學(xué)報(bào),1999,15(1):116-119.
[3]劉朝宗.食品中的甜味與天然甜味劑[J].烹調(diào)知識,1999(12):36-38.
[4]劉樹楷,鄭建仙.正在研究之中的非營養(yǎng)型甜味劑-L-糖(Lev-sugars)[J].中國甜菜糖業(yè),1992(2):58-61.
[5]黎其萬.呋哺酮合成進(jìn)展[J].精細(xì)石油化工,1994(4):36-40.
[6]LANG S,WULLBRANDT D.Rhamnose lipids-biosynthesis,microbe-al production and application potential[J].Applied Microbiology and Biotechnology,1999,51(1):22-32.
[7]MALAGON I,ONKENHOUT W,KLOK M,et al.Rhamnose and rhamnitol in dual sugar permeability tests[J].Journal of Pediatric Gastroenterology and Nutrition,2006,43(2):265-266.
[8]楊謙,田萍,杜寶中.黃姜中鼠李糖的提?。跩].西安理工大學(xué)學(xué)報(bào),2008,24(8):366-369.
[9]李玉山.蘆丁水解液發(fā)酵法制備L-鼠李糖的工藝[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2009,28(4):532-534.
[10]魏勝華,孟娜,李婉珍,等.兩步生物法轉(zhuǎn)化柚皮苷制備L-鼠李糖[J].精細(xì)化工,2011,28(12):1178-1182.
[11]吳迪,劉廷強(qiáng),王東明,等.蘆丁的酶法轉(zhuǎn)化及其產(chǎn)物異槲皮苷的分離[J].大連工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2012,31(6):399-401.
(WU Di,LIU Ting-qiang,WANG Dong-ming,et al.The enzymatic transformation of rutin and the separation of the hydrolysate isoquercitrin[J].Journal of Dalian Polytechnic University,2012,31(6):399-401.)
大連工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào)2013年3期