李學(xué)禮 潘云
組織芯片(tissue chip),也稱組織微陣列(tissue microarrays),是生物芯片技術(shù)的一個重要分支,是將許多不同個體組織標(biāo)本以規(guī)則陣列方式排布于同一載玻片上,進行同一指標(biāo)的原位組織學(xué)研究。該技術(shù)自1998年[1]問世以來,因其具有高信息量、高效、節(jié)省檢測試劑、減少實驗誤差、增加可比性、易于標(biāo)準(zhǔn)化等優(yōu)點,且其制備技術(shù)簡單[2],容易掌控,得到大范圍的推廣應(yīng)用。
為此本文參照部分文獻自行手工方法制作組織芯片,取得了比較滿意的效果,現(xiàn)制作過程和經(jīng)驗體會簡短介紹如下。
1.1 材料 套管打孔針,采用北京博康實驗儀器有限公司生產(chǎn)的組織芯片制備儀所佩帶直徑2 mm套針。
1.1.1 石蠟采用國產(chǎn)的熔點為58~60℃醫(yī)用石蠟
1.1.2 主要的實驗儀器及設(shè)備 自制石蠟包埋用鉛模;恒溫恒濕箱(上海博訊是也有限公司醫(yī)療設(shè)備廠);萊卡全自動石蠟切片機(德國);萊卡DM3000多頭顯微鏡(德國萊卡公司)。
1.1.3 實驗用病理標(biāo)本為大理學(xué)院附屬醫(yī)院病理科2012 年
1 -5 月乳腺癌手術(shù)切除的病理乳腺癌標(biāo)本
1.2 方法
1.2.1 制作前石蠟 石蠟在65~67 ℃條件下熔化并放65恒溫恒濕箱中保持熔化狀態(tài)下備用。
1.2.2 供體標(biāo)本的準(zhǔn)備及篩片 實驗用供體蠟塊為病理科常規(guī)蠟塊標(biāo)本,調(diào)取其對應(yīng)HE 染色玻片,經(jīng)有經(jīng)驗的病理科醫(yī)師顯微鏡閱片后選取病變典型部位并在供體蠟塊上作好相應(yīng)標(biāo)記備用
1.2.3 組織芯片制作方法 用自制鉛模為蠟塊模具制作厚約8 mm,大小2 cm×2.5 cm的受體蠟塊,并將其置于40 ℃恒溫臺上用打孔套針打孔,在受體蠟塊上構(gòu)建3×4個點陣,孔間距為3 mm。用打孔套針在供體蠟塊所做標(biāo)記處抽取組織芯條,放入受體蠟?zāi)?變?nèi)。并用套針(帶套芯)壓實組織芯條。將受體蠟?zāi)#ㄒ讶胄緱l)連同鉛模放入60℃恒溫恒濕烤箱中40 min,使組織芯條與芯孔周邊蠟體緊密融合,將受體蠟塊(帶鉛模)進行二次包埋,包埋后立刻放入60 ℃恒溫恒濕烤箱中20 min,進行再次充分融合,取出受體蠟塊冷卻,即可制成組織芯片蠟塊備用。
1.2.4 切片 冰組織芯片蠟塊好后以4 μm厚連續(xù)切片,裱貼于準(zhǔn)備好的載玻片上。微陣列蠟塊的切片由經(jīng)驗豐富的病理科醫(yī)師在德國徠卡切片機上進行切片;其過程與常規(guī)組織切片相同,但因為蠟塊內(nèi)的組織芯條較多,裱片時操作要輕、穩(wěn),速度適宜,避免組織切片的離斷或芯片內(nèi)芯點陣列的偏移。共制作蠟塊4個,各切片2 張共8張切片。放在70 ℃烤片機上烘烤20 min,完成組織芯片的制作。
制作3×4組織芯片共8張,HE染色后芯片無脫片、倒浮現(xiàn)象,各芯點完整,僅伴有輕度點陣移位現(xiàn)象。
組織芯片技術(shù)是生物芯片技術(shù)的一個重要分支,首先是Battifora[3]在1986 年提出來的,直到1998年,由Kononen 等[1]提出了組織芯片的明確概念,于是一種新的大樣本,高通量的快速分析工具在醫(yī)學(xué)分子生物學(xué)領(lǐng)域得到迅速的發(fā)展,該技術(shù)有諸多優(yōu)點,如高信息量、高效、節(jié)省檢測試劑、減少實驗誤差、增加可比性、易于標(biāo)準(zhǔn)化,且其制備技術(shù)簡單,易掌控。組織芯片結(jié)合傳統(tǒng)病理學(xué)技術(shù)、免疫組織化學(xué)(IHC),原位雜交(ISH)及熒光原位雜交(FISH)等分子生物學(xué)技術(shù)[4-5],可以廣泛地運用于生命科學(xué)研究等諸多領(lǐng)域。
3.1 供體蠟塊的篩選 選取病理科供體蠟塊及相對的切片,首先由經(jīng)驗豐富的病理科醫(yī)生進行切片的篩片,準(zhǔn)確的找出病變明顯的區(qū)域并相應(yīng)的作出標(biāo)記,注意標(biāo)記的直徑小于3 mm,從而盡量避免因標(biāo)記區(qū)域過大而出現(xiàn)無效組織。因部分蠟塊經(jīng)反復(fù)使用,內(nèi)部組織厚薄不已,所取組織芯條易出現(xiàn)長短不一或不含所需組織,所以盡量選取組織塊較厚的蠟塊,以提高制備的組織芯片的利用率。
3.2 受體蠟塊的制備 打孔時,若空白受體蠟塊溫度過高,不易成形,溫度過低,易將蠟?zāi)4蛄?,產(chǎn)生廢模[6-7],經(jīng)多次實驗,將制好的空白蠟塊置于50℃的恒溫箱中20 min,取出置于40~50 ℃操作臺上迅速打孔,打孔時,避免用力擠壓蠟?zāi)V滦究资軌嚎s小。
3.3 組織芯條的鉆取 鉆取組織芯條的過程中,首先將供體蠟塊置于45 ℃的恒溫箱中10 min,取出置于40~50 ℃操作臺上迅速鉆取組織芯條,鉆取中應(yīng)垂直進針,均勻用力,防止損傷供體蠟塊。
3.4 組織芯片蠟塊的二次包埋 將組織芯條按順序置入受體蠟塊后,并用套針(帶套芯)壓實組織芯條,使芯條在同一平面上,然后進行受體蠟塊的二次包埋,包埋采用熔化石蠟普通灌注的方法[8],具體過程是,首先將供體蠟塊(已塞入芯條)連同鉛摸一起置于60 ℃烤箱內(nèi)1 h,然后取出注入熔化石蠟,再將蠟?zāi)M瀴K置于60 ℃烤箱內(nèi)30 min,再次進行重新熔合,石蠟組織芯與空心蠟?zāi)?妆陂g存在微小間隙,熔化的石蠟接觸蠟?zāi)r,未充分填充微小間隙便開始凝固,從而使二次包埋失敗。先將其置入60 ℃烤箱內(nèi)1 h,主要目的是使兩者重新熔為一體,從而達到目的[8-10]。二次包埋成功的組織芯片蠟塊,應(yīng)具備以下特點:(1)組織芯片蠟塊中的組織芯條排列整齊,無倒浮、移位現(xiàn)象;(2)蠟塊中組織芯條所含的目標(biāo)組織處于同一平面上,便于統(tǒng)一切片;(3)石蠟組織芯條與空心蠟?zāi)ig空隙填充良好,并充分熔合,所制備組織芯片中的微組織塊無脫片、皺褶現(xiàn)象。
3.5 組織芯片的切片 為保證蠟塊微組織的完整性,每塊組織芯片蠟塊需多切片;漂片時水溫要適宜,若溫度過高組織片所含的微組織易發(fā)生離散,溫度過低則難以保證其充分展開。
3.6 組織芯片技術(shù)的應(yīng)用 組織芯片的應(yīng)用領(lǐng)域正在不斷的拓展,可用于免疫組織化學(xué)(IHC),原位雜交(ISH)及熒光原位雜交(FISH)等原位組織檢測技術(shù)。
3.7 組織芯片的敏感性和準(zhǔn)確性 Garcia 等[11]研究證實組織芯片技術(shù)與傳統(tǒng)制片方法具有相同的敏感性和準(zhǔn)確性, 組織芯片技術(shù)可以替代傳統(tǒng)制片技術(shù)。但是,有些學(xué)者發(fā)現(xiàn)組織芯片技術(shù)仍存在一定的偏倚[12]。為反映原組織結(jié)構(gòu)的信息,本實驗所采取的組織樣本是直徑2 mm。
3.8 組織芯片的缺點 織芯片也存在其不足的以下幾個方面,如組織取材相對較少,所取位點的微組織并不一定能完全反應(yīng)腫瘤的全貌,切片微組織易移位、脫落,從而給結(jié)果的判定帶來誤差。
組織芯片技術(shù)具有高信息量、高效、低消耗、自身內(nèi)對照和易于標(biāo)準(zhǔn)化等諸多優(yōu)點,且其制備技術(shù)簡便、易行、經(jīng)濟實用。 組織芯片技術(shù)還可以與免疫組織化學(xué)、核酸原位雜交、熒光原位雜交、原位PCR等諸多常規(guī)技術(shù)相結(jié)合應(yīng)用,它的應(yīng)用領(lǐng)域正在不斷地拓展。
[1]Kononen J,Bubendorf L,Kallioniemi A,et al. Tissue microarrays for high -throughput molecular profiling of tumor specimens[J].Nature Med,1998,4(7):844-847.
[2]朱明華.組織微陣列及其在腫瘤病理研究中的應(yīng)用[J].中華病理學(xué)雜志,2002,31(1):72-73.
[3]Battifora H. The multitumor (sausage)tissue block: Novel method for immunohistochemical antibody testing[J]. Lab Invest,1986,55(2):244-248.
[4]Andersen CL,Monni O,Wagner U,et al. Highthrough-put copy number analysis of 17q23 in 3520 tissue specimens by fluorescence in situ hybridization to tissue microarrays[J].Am J Pathol,2002,16173-16179.
[5]Fedor HL,De Marzo AM. Practical methods for tissue microarray construction[J]. Methods Mol Med,2005,103(56): 89-101.
[6]倪燦榮,李芳梅,朱明華,等. 提高組織芯片切片成功率的方法和體會[J]. 中華病理學(xué)雜志,2002,31(6):559-560.
[7]孟奎,石群立,馬恒輝,等. 組織芯片制備新方法[J]. 醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報,2005,18(3):287-289.
[8]王文勇,李玉松,黃高昇,等. 石蠟組織芯片制備技術(shù)方法的改良[J]. 第四軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報,2005,26(1):93-94.
[9]倪燦榮,李芳梅,朱明華,等. 提高組織芯片切片成功率的方法和體會[J]. 中華病理學(xué)雜志,2002,31(6):559-560.
[10]樊祥山,孟凡青,章宜芬,等. 骨肉瘤組織芯片的制作及其免疫組織化學(xué)應(yīng)用[J]. 東南大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2006,25 (2):104-107.
[11]William S S,Alosoo T R,Mayhew E,et al . Arrest of human lung tumor xenograft growth in severe combind immunodeficiency mice using Doxorubiom encapsulated insterically stabilized liposomes[J]. Cancer Res,1993,53(10): 3964-3967.
[12]Renkvist N,Castelli C,Robbins P F,et al. A listing of human tumor antigens recognized by T cells [J]. Cancer Immunol Immunother,2001,50(21):3-15.