国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

低氧性肺氣血屏障炎癥與機(jī)制

2013-01-25 07:22夏世金吳俊珍胡明冬
中華肺部疾病雜志(電子版) 2013年6期
關(guān)鍵詞:通透性低氧屏障

孫 濤 夏世金 吳俊珍 胡明冬

2200040 上海,上海市老年醫(yī)學(xué)研究所

3400037重慶,第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院呼吸內(nèi)科

孫 濤,夏世金,吳俊珍,等.低氧性肺氣血屏障炎癥與機(jī)制[J/CD].中華肺部疾病雜志:電子版,2013,6(6):547-550.

2200040 上海,上海市老年醫(yī)學(xué)研究所

3400037重慶,第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院呼吸內(nèi)科

肺氣血屏障(blood-air barrier),也稱肺泡毛細(xì)血管屏障(alveolar-capillary barrier)或肺血?dú)馄琳希煞闻荼砻嬉后w層、I型肺泡細(xì)胞與基膜、薄層結(jié)締組織、毛細(xì)血管基膜與內(nèi)皮等組成[1],是使肺泡與肺毛細(xì)血管緊密相連的組織結(jié)構(gòu),以保證機(jī)體氣體進(jìn)行正常的交換。

然而,低氧及其產(chǎn)生的炎癥可損傷肺氣血屏障的結(jié)構(gòu)與功能。氣血屏障完整性對(duì)于肺氣體交換、防止血液中物質(zhì)返流入間質(zhì)和肺泡腔等至關(guān)重要[2],血?dú)馄琳贤暾云茐目蓪?dǎo)致高通透性肺水腫。肺毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞和肺泡上皮細(xì)胞是組成肺血?dú)馄琳系膬煞N重要細(xì)胞,這兩種細(xì)胞的結(jié)構(gòu)與功能異常是氣血屏障功能異常的主要病理生理機(jī)制。而低氧及其低氧所致的炎癥是導(dǎo)致兩種細(xì)胞的結(jié)構(gòu)與功能異常的重要原因,并可引起肺氣血屏障功能異常,進(jìn)而使肺血管通透性增加,在非心源性肺水腫(如高原性肺水腫、急性肺損傷等)的病理生理中發(fā)揮著重要作用。因此,關(guān)于低氧性肺氣血屏障炎癥與機(jī)制的研究顯得非常重要,并取得一定的進(jìn)展,現(xiàn)就此進(jìn)行綜述。

一、低氧與炎癥

1.低氧性炎癥與缺氧誘導(dǎo)因子:氧是機(jī)體進(jìn)行新陳代謝的必需物質(zhì),缺氧對(duì)機(jī)體和細(xì)胞是一種強(qiáng)烈的應(yīng)激。細(xì)胞通過氧感受器和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路特異地調(diào)節(jié)某些基因或蛋白的表達(dá)來適應(yīng)低氧。

肺泡腔通透性增加可能是由于肺泡毛細(xì)血管靜水壓升高而引起,但是在低氧環(huán)境中,即使維持肺泡毛細(xì)血管靜水壓不變,也會(huì)引起肺泡腔水腫,這表明肺泡腔通透性增加可能是由低氧這一單一因素所引起。低氧使肺泡血管內(nèi)皮細(xì)胞緊密連接松開,從而使含蛋白較高的液體滲入肺泡腔而引起水腫[3]。硝苯地平可以用來治療高原肺水腫(high altitude pulmonay edema,HAPE),就是因其可通過抗炎效應(yīng)而維持肺氣血屏障的完整性[4]。水腫的最初階段,乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)并無明顯升高,但長期處于低氧環(huán)境中,LDH可明顯升高,提示細(xì)胞損傷并不能解釋低氧性水腫。因此,初始階段的血管滲漏可能是由低氧導(dǎo)致的炎癥反應(yīng)引起的,而隨后炎癥導(dǎo)致的細(xì)胞損傷又進(jìn)一步加劇血管滲漏[3],兩者形成惡性循環(huán)。

缺氧誘導(dǎo)因子-1(hypoxia-inducible factor,HIF-1)是哺乳動(dòng)物維持氧平衡最主要的調(diào)節(jié)因子。HIF-1的活性對(duì)于組織缺血后的恢復(fù)是十分必要的。低氧可以增加HIF-1的穩(wěn)定性,促進(jìn)HIF-1與低氧反應(yīng)元件(hypoxia response element,HRE)的結(jié)合,從而誘導(dǎo)低氧靶基因的激活。HIF-1可以上調(diào)與血管系統(tǒng)相關(guān)蛋白的基因表達(dá),如促進(jìn)血管生成的血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)及其受體[5],而VEGF可提高不同器官中內(nèi)皮細(xì)胞通透性。

HIF-1與炎癥反應(yīng)的發(fā)生也有著密切的關(guān)系[6]。在炎癥反應(yīng)中,HIF-1可使局部血管通透性增強(qiáng),導(dǎo)致更多的免疫細(xì)胞到達(dá)炎癥部位,從而引起氣血屏障的炎癥性損傷。因?yàn)檠鳒p慢,炎癥細(xì)胞和抗原耗氧量增加,導(dǎo)致炎癥部位形成局部低氧環(huán)境[5]。HIF-1的激活在組織低氧環(huán)境內(nèi)穩(wěn)態(tài)平衡恢復(fù)中也扮演著重要角色[7]。免疫細(xì)胞對(duì)低氧的應(yīng)答和核因子-κB(nuclear factor kappa B,NF-κB)信號(hào)通路密切相關(guān)。在巨噬細(xì)胞、中性粒細(xì)胞和一些非免疫細(xì)胞中發(fā)現(xiàn),HIF可以激活NF-κB。低氧可以抑制PHD1的活性,促進(jìn)抑制性KB激酶(inhibitory kappa B kinase,IKK)的激活、IκB 磷酸化,解離出的NF-κB導(dǎo)致下游基因(如促炎癥細(xì)胞因子IL-1β、IL-8、TNF-α、IL-6 等)的轉(zhuǎn)錄激活[8]。在巨噬細(xì)胞中 NF-κB 直接調(diào)節(jié)HIF-1α的轉(zhuǎn)錄。缺乏IKK的巨噬細(xì)胞即使在低氧下也不能形成穩(wěn)定的HIF-1α蛋白。但是,只有NF-κB的激活同樣也不能使HIF-1α穩(wěn)定,這些結(jié)果顯示,HIF-1α的激活需要NF-κB和低氧的共同調(diào)節(jié)。而HIF-2α在低氧下的激活則不需要IKK[9]。缺乏HIF-1的巨噬細(xì)胞表現(xiàn)出遷移能力降低,吞噬細(xì)菌能力減弱,炎癥細(xì)胞因子的分泌減少[5]。

2.NOD樣受體家族炎癥小體與低氧性炎癥:NOD樣受體家族熱蛋白結(jié)構(gòu)域相關(guān)蛋白3(The NOD-like receptor family,Pyrin Domain-Containing 3,NLRP3)炎癥小體是一種存在于細(xì)胞胞漿中的多蛋白復(fù)合物,主要是由NLRP3、相關(guān)斑點(diǎn)樣蛋白(apoptosisassociated speck-like protein,ASC)和含半胱氨酸的天冬氨酸蛋白水解酶-1(cysteinyl aspartate specific proteinase-1,caspase-1)相互結(jié)合形成的,是天然免疫系統(tǒng)的重要組成部分[10]。近來發(fā)現(xiàn)其在呼吸系統(tǒng)炎癥的發(fā)生、發(fā)展過程中發(fā)揮著巨大的作用。病原體相關(guān)分子模式(pathogen-associated molecular patterns,PAMP)或者由于組織損傷和細(xì)胞死亡而釋放出來的內(nèi)源性危險(xiǎn)信號(hào)可以激活NLR,并進(jìn)一步形成“炎癥小體”,使Pro-caspase-1分裂形成有活性的caspase-1,進(jìn)一步將IL-1β和IL-18等促炎癥細(xì)胞因子的前體形式進(jìn)行剪接,使其成熟并釋放到胞外引起炎癥反應(yīng)。這個(gè)過程有效地增加了炎癥因子的生物效價(jià),使成熟的炎癥因子可釋放到胞外進(jìn)而發(fā)揮功能,并對(duì)Pro-IL-1β等底物進(jìn)行剪接使其成熟并釋放到胞外發(fā)揮功能,從而在機(jī)體固有免疫中發(fā)揮重要作用[10]。

炎癥小體,尤其是NLRP3炎癥小體,可與低氧損傷導(dǎo)致的危險(xiǎn)相關(guān)分子(如自由的三磷酸腺苷ATP)反應(yīng),導(dǎo)致促炎癥細(xì)胞因子分泌,尤其是IL-1β,引起中性粒細(xì)胞炎癥反應(yīng),激活的炎癥細(xì)胞進(jìn)一步招募更多的炎癥細(xì)胞并釋放大量的炎癥細(xì)胞因子引起炎癥的瀑布反應(yīng)進(jìn)而導(dǎo)致肺泡和毛細(xì)血管的炎癥[11]。

三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)引起的NLRP3炎癥小體激活可導(dǎo)致低氧性炎癥。細(xì)胞內(nèi)ATP含量非常高,當(dāng)?shù)脱醣容^嚴(yán)重或者持續(xù)時(shí)間較長時(shí),跨膜高ATP梯度就不能維持,ATP隨后從死亡或凋亡細(xì)胞中釋放,引起噬菌細(xì)胞激活,或者通過NLRP3炎癥小體觸發(fā)無菌性炎癥反應(yīng)。也有其他研究證明,ATP可從激活的炎癥細(xì)胞中釋放。中性粒細(xì)胞中的ATP可作為趨化信號(hào),通過自分泌反饋回路,控制中性粒細(xì)胞的遷移[12]。這些現(xiàn)象表明,核苷酸的釋放與信號(hào)傳導(dǎo)可引起強(qiáng)烈的炎癥反應(yīng),尤其是低氧導(dǎo)致的炎癥[13]。

3.低氧性呼吸疾病與炎癥:在HAPE發(fā)病機(jī)制中,低氧性肺血管收縮導(dǎo)致的血流動(dòng)力學(xué)改變可引起血漿滲出至肺泡腔,隨后可見炎癥反應(yīng)的改變?;加懈咴苑尾考膊〉牡巧秸咄ǔ6加泻粑到y(tǒng)炎癥,應(yīng)用抗生素對(duì)這種呼吸系統(tǒng)炎癥無效,且只有回到低海拔區(qū),這種炎癥才可被控制。在低氧動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中,可見呼吸系統(tǒng)水腫形成,肺部炎癥細(xì)胞聚集,循環(huán)中促炎細(xì)胞因子升高。缺氧性肺血管收縮和肺毛細(xì)血管壓力失控可能有助于缺氧引起的肺部炎癥[14]。

阻塞性睡眠呼吸暫停(obstructive sleep apnea,OSA)是一種常見的低氧性疾病,主要由周期性缺氧和復(fù)氧,系統(tǒng)性炎癥和血管疾病這三方面共同引起。對(duì)OSA患者的研究表明,斷斷續(xù)續(xù)低氧可導(dǎo)致促炎炎癥介質(zhì)的升高,例如循環(huán)中TNF-α。體外低氧和復(fù)氧模型表明,在促炎通路被激活的情況下,HIF適應(yīng)性應(yīng)答尚未改變[15]。

二、ROS-HIF-VEGF通道與肺氣血屏障低氧性損傷

暴露于低氧中的人肺動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞(human pulmonary artery endothelial cell,HPAEC)表現(xiàn)為過氧化氫(H2O2)、細(xì)胞核HIF-1α、細(xì)胞質(zhì)VEGF含量增加,內(nèi)皮細(xì)胞的通透性也增加??寡趸瘎?、HIF-1 siRNA和VEGF抑制劑對(duì)可溶性VEGF受體-1(solublevascularendothelialgrowth factor receptor-1,sFlt-1)干預(yù)后,可以下調(diào)ROS-HIF-VEGF肺動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞滲出通道(ROS-HIF-VEGF pulmonary endothelial leak pathway)下游介質(zhì)[16]。

大鼠肺微血管內(nèi)皮細(xì)胞(rat pulmonary microvascular endothelial cells,RPMVECs)在低氧環(huán)境中培養(yǎng)24 h,其細(xì)胞內(nèi)ROS含量和單層細(xì)胞通透性均明顯增加[16]?;钚匝?reactive oxygen species,ROS)可以增加血管內(nèi)皮細(xì)胞的通透性[17]。低氧是血管內(nèi)皮細(xì)胞產(chǎn)生ROS的強(qiáng)力誘導(dǎo)因素。處于低氧中的動(dòng)物肺內(nèi) ROS和丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量明顯升高,而谷胱甘肽(glutathione,GSH)和超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)下降。ROS升高使機(jī)體處于氧化應(yīng)激狀態(tài),MDA升高使肺組織產(chǎn)生更多自由基。GSH和SOD可保護(hù)肺泡上皮細(xì)胞免受氧化和炎癥損害。低氧導(dǎo)致的氧化應(yīng)激是抗氧化和促氧化失衡的一種表現(xiàn),并可放大肺部炎癥反應(yīng)[18]。最近的研究證明ROS調(diào)節(jié)血管內(nèi)皮單層通透性是通過激活HIF-1α和上調(diào)VEGF而完成的[16]。低氧可通過不同途徑導(dǎo)致ROS含量增加,例如還原型輔酶 Ⅱ(nicotinamide adenine dinucleotide phosphate,NADP+)氧化酶、線粒體電子傳遞、黃嘌呤氧化酶和內(nèi)皮型一氧化氮合酶(endothelial nitric oxide synthase,eNOS)[19]。采用抗氧化劑治療可以減輕低氧導(dǎo)致的肺血管的滲出,同樣也能減少HIF-1α和VEGF的表達(dá)。

HIF-1是引起缺氧的生理效應(yīng)的關(guān)鍵介質(zhì),它參與許多低氧刺激的基因調(diào)節(jié)。HIF-1是由HIF-1α亞基和HIF-1β亞基構(gòu)成的異源二聚體。在常氧下,HIF-1α被降解,但是低氧可以抑制HIF-1α羥基化,并使其易位到細(xì)胞核與HIF-1β結(jié)合形成HIF-1而啟動(dòng)基因轉(zhuǎn)錄。HIF-1與編碼低氧應(yīng)激應(yīng)答蛋白基因的缺氧反應(yīng)元件結(jié)合,從而啟動(dòng)葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白1、糖酵解酶和VEGF的表達(dá)。低氧中,表達(dá)VEGF mRNA的蛋白含量升高,并且在不同器官中可以增加其血管通透性[16]。

VEGF可提高不同器官中內(nèi)皮細(xì)胞通透性??扇苄訴EGF受體sFlt-1可減輕血管內(nèi)皮的通透性。sFlt-1是一種內(nèi)源性因子,可以和血漿中VEGF結(jié)合,因此可以抑制其生物效應(yīng)[20]。外源性sFlt-1可以提高敗血癥和ARDS模型的生存率,提示sFlt-1不僅可以治療敗血病和急性呼吸窘迫綜合征(acute respiratory distress syndrome,ARDS)[21],也可以治療高原性肺水腫和其他的與低氧相關(guān)的肺部疾病。HIF-1可以和VEGF的RTP801啟動(dòng)子區(qū)域結(jié)合,從而提高VEGF的產(chǎn)量。低氧刺激肺血管內(nèi)皮細(xì)胞可以提高細(xì)胞核HIF-1和細(xì)胞質(zhì)VEGF水平,并可以被抗氧化劑抑制。

拮抗HIF-1α的siRNA可以最大程度的抑制單層內(nèi)皮細(xì)胞的通透性,而且比抗氧化劑和可溶性VEGF受體的抑制效應(yīng)更強(qiáng)??寡趸瘎┲委煵荒芡耆铚﨟IF-1α穩(wěn)定性,因其不能完全阻止低氧導(dǎo)致的血管內(nèi)皮通透性增加,這可能是因?yàn)榭寡趸瘎┎荒芡耆宄齊OS,也有可能是存在另一種非ROS介導(dǎo)的HIF-1α穩(wěn)定性調(diào)節(jié)??扇苄訴EGF受體sFlt-1減輕單層內(nèi)皮細(xì)胞通透性的效力比不上siRNA,這可能是因?yàn)镠IF-1激活劑改變通透性是通過非VEGF依賴性機(jī)制,例如,通過改變內(nèi)皮細(xì)胞緊密連接蛋白ZO(zona occludins)或緊密連接蛋白-1(claudin-1)[22]。

三、血管擴(kuò)張刺激磷蛋白與低氧性肺氣血屏障炎癥損傷

血管擴(kuò)張刺激磷蛋白(vasodilator-stimulated phosphoprotein,VASP)是維持正常氣血屏障功能的核心蛋白。組織特異性VASP對(duì)維持肺泡毛細(xì)血管屏障功能起著至關(guān)重要的作用。處于低氧環(huán)境中的細(xì)胞VASP表達(dá)減少。NF-κB是VASP轉(zhuǎn)錄表達(dá)的關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子。抑制VASP表達(dá)可導(dǎo)致細(xì)胞間通透性增加和中性粒細(xì)胞的遷移。在低氧誘導(dǎo)肺損傷小鼠模型中,VASP表達(dá)減少的小鼠與野生型小鼠相比,其肺損傷更加嚴(yán)重。抑制組織特異性VASP可以導(dǎo)致肺氣血屏障功能減退。表明VASP可以維持正常氣血屏障功能[23]。

炎癥損傷的主要特征有組織代謝障礙、對(duì)氧利用度減低和屏障功能減退。炎癥細(xì)胞因子可增加內(nèi)皮細(xì)胞之間縫隙的應(yīng)力纖維,也能增加肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架之間的應(yīng)力纖維,因此可增加微血管的通透性,影響肺氣血屏障功能,進(jìn)而導(dǎo)致肺水腫形成和微血管管腔中的白細(xì)胞滲出。在炎癥和低氧誘導(dǎo)的肺損傷中,VASP表達(dá)被明顯抑制。通過細(xì)胞骨架重組,肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架與VASP結(jié)合,從而保護(hù)生理性肺氣血屏障功能。VASP對(duì)細(xì)胞F-肌動(dòng)蛋白含量和內(nèi)皮細(xì)胞的結(jié)構(gòu)完整性具有重要作用。抑制VASP可導(dǎo)致肌動(dòng)球蛋白收縮力下降和剪切應(yīng)力的異常反應(yīng)。而這種異常可以導(dǎo)致組織的水腫與出血。肌動(dòng)蛋白的動(dòng)力學(xué)對(duì)急性炎癥期減少應(yīng)力纖維的形成以及肺氣血屏障功能和細(xì)胞間通透性的調(diào)控具有至關(guān)重要作用。因此VASP可以通過介導(dǎo)內(nèi)皮細(xì)胞和上皮細(xì)胞內(nèi)的肌動(dòng)蛋白動(dòng)力學(xué)而維持屏障的正常功能[24-26]。

在急性炎癥生理病理過程中,NF-κB可通過調(diào)控其下游炎癥因子而抑制VASP的表達(dá)。在動(dòng)物模型中,肺氣血屏障功能降低都伴隨著VASP水平下降[23]。低氧相關(guān)的炎癥反應(yīng)可以導(dǎo)致炎癥細(xì)胞的聚集,從而加劇VASP的抑制效應(yīng),以及與其相關(guān)的肺氣血屏障功能的破壞[27]。

四、臂板蛋白7A與低氧性肺氣血屏障炎癥損傷

神經(jīng)導(dǎo)向蛋白(neuronal guidance proteins,NGPs)家族成員之一,臂板蛋白7A(semaphorin 7A,SEMA7A),具有誘導(dǎo)巨噬細(xì)胞和單核細(xì)胞釋放細(xì)胞因子的能力,并且在炎癥免疫應(yīng)答中發(fā)揮著重要作用[28-29]。SEMA7A也能刺激黑素細(xì)胞和單核細(xì)胞骨架重組,引起細(xì)胞形態(tài)變化,進(jìn)而導(dǎo)致這類細(xì)胞的擴(kuò)散與遷移。SEMA7A可通過中性粒細(xì)胞轉(zhuǎn)運(yùn)而加重炎癥損傷。在低氧環(huán)境中,組織出現(xiàn)炎癥反應(yīng)以及功能障礙,而HIF-1α誘導(dǎo)免疫細(xì)胞從有氧代謝轉(zhuǎn)變?yōu)闊o氧糖酵解,也可引起免疫應(yīng)答。HIF-1α也能促進(jìn)血管免疫活性細(xì)胞遷移到缺氧組織。HIF-1α可強(qiáng)力誘導(dǎo)血管內(nèi)皮中SEMA7A表達(dá),低氧中SEMA7A大量累積,導(dǎo)致炎癥細(xì)胞聚集,釋放大量炎癥因子,因此導(dǎo)致低氧性血管滲漏,從而引起肺氣血屏障功能障礙[30]。

五、胞外-5'-核苷酸酶與低氧性肺氣血屏障炎癥損傷

機(jī)體對(duì)低氧的適應(yīng)性反應(yīng)和細(xì)胞外腺苷水平緊密相關(guān),而胞外-5'-核苷酸酶((Ecto-5'-nucleotidase,CD73)可調(diào)節(jié)細(xì)胞外腺苷的生成。CD73產(chǎn)生的腺苷主要表達(dá)于肺氣血屏障細(xì)胞(內(nèi)皮細(xì)胞與上皮細(xì)胞),并可調(diào)節(jié)內(nèi)皮細(xì)胞通透性,中性粒細(xì)胞粘附等。低氧可通過HIF-1調(diào)節(jié)CD73的表達(dá),低氧環(huán)境中CD73活性增加。CD73誘導(dǎo)機(jī)制主要牽涉到HIF介導(dǎo)的啟動(dòng)子活性調(diào)節(jié)和CD73的前饋調(diào)節(jié)。在缺氧和炎癥環(huán)境中,中性粒細(xì)胞大量聚集,并成為細(xì)胞外腺苷的主要來源(主要以5'-AMP和ATP形式),因此缺氧環(huán)境中細(xì)胞外腺苷升高。腺苷受體激活(通過CD73腺苷釋放)可提升細(xì)胞內(nèi)cAMP水平,內(nèi)皮細(xì)胞cAMP的升高又可促進(jìn)屏障功能。抑制CD73可明顯增加低氧導(dǎo)致的血管滲漏[31]。

正常飼養(yǎng)的CD73表達(dá)減少的小鼠表現(xiàn)為多器官的血管滲漏,當(dāng)其處于低氧環(huán)境中,可表現(xiàn)為大量血管滲漏,尤其是肺組織,病理學(xué)檢查可見血管周圍間質(zhì)水腫,并有大量炎癥細(xì)胞浸潤。用腺苷受體拮抗劑 5'-(N-ethylcarboxamido)-adenosine(NECA)治療CD73表達(dá)減少的小鼠,可部分逆轉(zhuǎn)這些損害[31]。

總之,低氧可引起機(jī)體系統(tǒng)性炎癥反應(yīng),也可引起局部炎癥變化,在肺部可表現(xiàn)為肺氣血屏障的低氧性炎癥性損傷。低氧及低氧所致炎癥與肺氣血屏障損傷密切相關(guān)。然而,其機(jī)制非常復(fù)雜,目前尚未完全闡明。上述的HIF-1α、ROS-HIF-VEGF、VASP、SEMA7A、CD73 等分子在低氧性肺氣血屏障炎癥的發(fā)生發(fā)展過程中扮演著重要的角色,但其如何參與低氧性肺氣血屏障炎癥的調(diào)控機(jī)制依然有待進(jìn)一步研究闡明。

1 成令忠,王一飛,鐘翠平.組織胚胎學(xué)—人體發(fā)育和功能組織學(xué)[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)文獻(xiàn)出版社.

2 Groeneveld AB.Vascular pharmacology of acute lung injury and acute respiratory distress syndrome[J].Vascul Pharmacol,2002,39(4-5):247-256.

3 Dehler M,Zessin E,B?rtsch P,et al.Hypoxia causes permeability oedema in the constant-pressure perfused rat lung[J].Eur Respir J,2006,27(3):600-606.

4 Takase H,Toriyama T,Sugiyama M,et al.Effect of nifedipine on C-reactive protein levels in the coronary sinus and on coronary blood flow in response to acetylcholine in patients with stable angina pectoris having percutaneous coronary intervention[J].Am J Cardiol,2005,95(10):1235-1237.

5 Wang PP,Kong FP,Chen XQ,et al.HIF-1 signal pathway in cellular response to hypoxia[J].J Zhejiang Univ(Medical Sci),2011,40(5):559-566.

6 Rosenberger P,Schwab JM,Mirakaj V,et al.Hypoxia-inducible factor-dependent induction of netrin-1 dampens inflammation caused by hypoxia[J].Nat Immunol,2009,10(2):195-202.

7 Wanderer AA.Hypoxia and inflammation[J].N Engl J Med,2011,364(20):1976-1977.

8 Nizet V,Johnson RS.Interdependence of hypoxic and innate immune responses[J].Nat Rev Immunol,2009,9(9):609-617.

9 Rius J,Guma M,Schachtrup C,et al.NF-kappaB links innate immunity to the hypoxic response through transcriptional regulation of HIF-1alpha[J].Nature,2008,453(7196):807-811.

10 Xie LJ,Xie WP,Wang H.Role of the NLRP3 inflammasome in the pathogenesis of airway disease[J].Int J Respir,2013,33(1):75-79.

11 Wanderer AA.Ischemic-reperfusion syndromes:biochemical and immunologic rationale for IL-1 targeted therapy[J].Clin Immunol,2008,128(2):127-132.

12 Chen Y,Corriden R,Inoue Y,et al.ATP release guides neutrophil chemotaxis via P2Y2 and A3 receptors[J].Science,2006,314(5806):1792-1795.

13 Riegel AK,F(xiàn)aigle M,Zug S,et al.Selective induction of endothelial P2Y6 nucleotide receptor promotes vascular inflammation[J].Blood,2011,117(8):2548-2555.

14 Hackett PH,Roach RC.High-altitude illness[J].N Engl J Med,2001,345(2):107-114.

15 Ryan S,Taylor CT,McNicholas WT.Selective activation of inflammatory pathways by intermittent hypoxia in obstructive sleep apnea syndrome[J].Circulation,2005,112(17):2660-2667.

16 Irwin DC,McCord JM,Nozik-Grayck E,et al.A potential role for reactive oxygen species and the HIF-1alpha-VEGF pathway in hypoxia-induced pulmonary vascular leak[J].Free Radic Biol Med,2009,47(1):55-61.

17 Bedard K,Krause KH.The NOX family of ROS-generating NADPH oxidases:physiology and pathophysiology[J].Physiol Rev,2007,87(1):245-313.

18 SKS S,Veeramohan PH,Mathew T,et al.Nifedipine inhibits hypoxia induced transvascular leakage through down regulation of NFkB[J].Respir Physiol Neurobiol,2012,183(1):26-34.

19 K?hl R,Zhou J,Brüne B.Reactive oxygen species attenuate nitricoxide-mediated hypoxia-inducible factor-1alpha stabilization[J].Free Radic Biol Med,2006,40(8):1430-1442.

20 Shibuya M.Vascular endothelial growth factor receptor-1(VEGFR-1/Flt-1):a dual regulator for angiogenesis[J].Angiogenesis,2006,9(4):225-230.

21 Tsao PN,Chan FT,Wei SC,et al.Soluble vascular endothelial growth factor receptor-1 protects mice in sepsis[J].Crit Care Med,2007,35(8):1955-1960.

22 Nico B,Mangieri D,Crivellato E,et al.HIF activation and VEGF overexpression are coupled with ZO-1 up-phosphorylation in the brain of dystrophic mdx mouse[J].Brain Pathol,2007,17(4):399-406.

23 Henes J,Schmit MA,Morote-Garcia JC,et al.Inflammation-associated repression of vasodilator-stimulated phosphoprotein(VASP)reduces alveolar-capillary barrier function during acute lung injury[J].FASEB J,2009,23(12):4244-4255.

24 Comerford KM,Lawrence DW,Synnestvedt K,et al.Role of vasodilatorstimulated phosphoprotein in PKA-induced changes in endothelial junctional permeability[J].FASEB J,2002,16(6):583-585.

25 Furman C,Sieminski AL,Kwiatkowski AV,et al.Ena/VASP is required for endothelial barrier function in vivo[J].J Cell Biol,2007,179(4):761-775.

26 Benz PM,Blume C,Moebius J,et al.Cytoskeleton assembly at endothelial cell-cell contacts is regulated by alphaII-spectrin-VASP complexes[J].J Cell Biol,2008,180(1):205-219.

27 Rosenberger P,Khoury J,Kong T,et al.Identification of vasodilatorstimulated phosphoprotein(VASP)as an HIF-regulated tissue permeability factor during hypoxia[J].FASEB J,2007,21(10):2613-2621.

28 Suzuki K,Kumanogoh A,Kikutani H.Semaphorins and their receptors in immune cell interactions[J].Nat Immunol,2008,9(1):17-23.

29 Suzuki K,Okuno T,Yamamoto M,et al.Semaphorin 7A initiates T-cell-mediated inflammatory responses through alpha1beta1 integrin[J].Nature,2007,446(7136):680-684.

30 Morote-Garcia JC,Napiwotzky D,K?hler D,et al.Endothelial Semaphorin 7A promotes neutrophil migration during hypoxia[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2012,109(35):14146-14151.

31 Thompson LF,Eltzschig HK,Ibla JC,et al.Crucial role for ecto-5'-nucleotidase(CD73)in vascular leakage during hypoxia[J].J Exp Med,2004,200(11):1395-1405.

猜你喜歡
通透性低氧屏障
低氧閾刺激促進(jìn)神經(jīng)干細(xì)胞增殖分化
咬緊百日攻堅(jiān) 筑牢安全屏障
屏障修護(hù)TOP10
間歇性低氧干預(yù)對(duì)腦缺血大鼠神經(jīng)功能恢復(fù)的影響
一道屏障
低氧燃燒工況下鍋爐水冷壁管高溫腐蝕行為分析
維護(hù)網(wǎng)絡(luò)安全 筑牢網(wǎng)絡(luò)強(qiáng)省屏障
PICCO監(jiān)護(hù)儀觀察ARDS肺血管內(nèi)皮通透性的臨床研究
盆栽與大田栽培水稻的生長及產(chǎn)量的比較研究
高糖對(duì)體外培養(yǎng)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞通透性及肌球蛋白輕鏈磷酸化的影響