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粘質(zhì)沙雷氏菌幾丁質(zhì)酶ChiA基因的表達(dá)及活性分析

2012-11-23 07:06:46田興華羅滿林趙曉瑜
中國獸醫(yī)雜志 2012年10期
關(guān)鍵詞:沙雷氏幾丁質(zhì)凝膠電泳

張 表,田興華,羅滿林,趙曉瑜

(1.華南農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院,廣東 廣州510642;2.河南大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河南 開封475004;3.河北大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,河北 保定071002)

幾丁質(zhì)是由N-乙酰氨基葡萄糖(GlcNAc)單元通過β-1,4糖苷鍵構(gòu)成的線性同型多聚體,主要分布在甲殼動物、昆蟲的外殼以及真菌的細(xì)胞壁中,年產(chǎn)量100~1 000億t,是自然界僅次于纖維素居第二位的可再生資源[1]。粘質(zhì)沙雷氏菌具有高效分解幾丁質(zhì)的性質(zhì),是外科手術(shù)中常見的革蘭陰性致病菌[2]。同時,幾丁質(zhì)難溶于水,也不溶于稀酸和稀堿,而其產(chǎn)物幾丁寡糖和單體是重要的免疫增強(qiáng)劑且具有極強(qiáng)的抗菌和抗腫瘤活性[5]。幾丁質(zhì)的難溶性以及粘質(zhì)沙雷氏菌的致病性,長期制約了幾丁質(zhì)的工業(yè)化利用?,F(xiàn)代生物技術(shù)的發(fā)展,為徹底解決該瓶頸提供了可能[3]。本試驗(yàn)通過粘質(zhì)沙雷氏菌幾丁質(zhì)酶的高效表達(dá)、純化及活性分析[4],為酶法水解幾丁質(zhì)提供了工業(yè)化應(yīng)用前景。

1 材料與方法

1.1 菌株和載體 粘質(zhì)沙雷氏菌ATCC27117、E.coliDH5α、E.coliBL21(DE3)均由本實(shí)驗(yàn)室保存;載體pBV221質(zhì)粒由中國科學(xué)院生物物理所靜國忠教授饋贈。

1.2 主要試劑ExTaqDNA聚合酶、EcoRⅠ、BamHⅠ、T4DNA連接酶,購自TaKaRa公司。

1.3 目的基因的PCR擴(kuò)增與純化 利用軟件Primer primier 5.0設(shè)計(jì)引物。根據(jù) GenBank L01455,幾丁質(zhì)酶基因chiA開放閱讀框?yàn)? 686 bp。本試驗(yàn)設(shè)計(jì)的 引物如下:SN:5′GGAATTCATGCGCAAATTTAATAAACCG3′;ASN:5′CGGGATCCAACCGATTATTGAACGCCG 3′。 PCR反應(yīng)條件:94℃,4min;循環(huán)參數(shù):94℃,12s;42℃,10s,72℃,1min;循環(huán)數(shù)40;最后延伸:72℃,10min。PCR產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳并回收。

1.4 原核表達(dá)載體的構(gòu)建與鑒定 將重組質(zhì)粒pUC-chiA 和載體pBV221同時進(jìn)行EcoRⅠ/BamHⅠ雙酶切,分別回收目的片段,將目的片段和載體片段在T4DNA連接酶的作用下,于12℃連接過夜,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞,轉(zhuǎn)化產(chǎn)物涂布于含100μg/mL氨芐青霉素的LB固體培養(yǎng)基中,37℃過夜培養(yǎng)后挑取陽性克隆。接種于含氨芐青霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37℃振搖過夜,提取重組表達(dá)質(zhì)粒,經(jīng)EcoRⅠ/BamHⅠ雙酶切鑒定,結(jié)果用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行分析,并將陽性克隆測序。鑒定為陽性的重組表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞,進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)。

1.5 目的基因的誘導(dǎo)表達(dá)與條件優(yōu)化 將鑒定的重組菌接種于含Amp的LB液體培養(yǎng)基中,37℃活化過夜后1%轉(zhuǎn)接于含同樣抗生素的LB液體培養(yǎng)基,30℃培養(yǎng)至OD值為0.5左右,42℃誘導(dǎo)表達(dá)。分別于誘導(dǎo)前和誘導(dǎo)后3h、5h取菌液,10%聚丙烯酰胺凝膠電泳進(jìn)行檢查。

1.6 重組蛋白的純化 誘導(dǎo)表達(dá)3h的1L培養(yǎng)液,超聲破碎離心后取上清,超濾濃縮為1/10,80%飽和(NH4)2SO4沉淀該蛋白,沉淀溶解在0.02 mol/L磷酸鹽緩沖液中(pH值6.0)透析過夜。經(jīng)幾丁質(zhì)親和柱層析進(jìn)一步純化該蛋白,將純化產(chǎn)物進(jìn)行10%SDS-PAGE電泳。

1.7 DNS(3,5-二硝基水楊酸)定糖法測定幾丁質(zhì)酶的活性 NAG標(biāo)準(zhǔn)溶液的配置:準(zhǔn)確稱取100 mgNAG(預(yù)先在105℃干燥至恒重),用少量蒸餾水溶解后,定量轉(zhuǎn)移到100mL容量瓶中,定容到刻度,搖勻,濃度為1mg/mL。取9支25×250mm的試管,分別加入 NAG標(biāo)準(zhǔn)液:0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6mL,相對應(yīng)分別加蒸餾水:2.0、1.8、1.6、1.4、1.2、1.0、0.8、0.6、0.4mL,另外每管加入1.5mL DNS試劑。將各管溶液混合均勻,沸水溫浴5min,立即冷卻至室溫,再向每管加21.5 mL蒸餾水,搖勻,于520nm波長下測OD值。表達(dá)產(chǎn)物活性測定如下:取20mL 42℃誘導(dǎo)表達(dá)3h的培養(yǎng)液,80Hz,20s/次超聲破碎20次,10 000r/min離心1min,取上清備用,2mL上清和23mL 1%幾丁質(zhì)混合液,45℃溫育5h,在520nm波長下測OD值。酶活單位定義:在45℃下每毫升酶液每小時釋放出相當(dāng)于1μg NAG的還原糖所需的酶。

1.8 溶圈法測定幾丁質(zhì)酶的活性 在含1%幾丁質(zhì)的LB固體培養(yǎng)基上,取經(jīng)破壁處理的SM、pBV221/BL21、pBV-chiA5/BL21上清150μL于牛津杯中進(jìn)行溶圈檢測。

2 結(jié)果

2.1 原核表達(dá)載體的構(gòu)建與鑒定 經(jīng)EcoRⅠ/BamHⅠ雙酶切的pBV221(3.7kb)插入chiA基因(1.7kb)后,其大小為5.4kb,重組子應(yīng)比對照遷移率低,挑選5個菌落并提取質(zhì)粒,1%瓊脂糖凝膠電泳,初步表明所得5個轉(zhuǎn)化子明顯變大,遷移率變小,分別命名為pBV-chiA1-5(圖1)。初步確定為重組子的質(zhì)粒pBV-chiA5,進(jìn)行單酶切、雙酶切鑒定,1%瓊脂糖凝膠電泳分析,出現(xiàn)了一條約3.7kb的pBV221載體線性片段和約1.7kb的目的片段(圖2)。酶切片段大小與預(yù)期完全相符,PCR產(chǎn)物大小與雙酶切小片段相同。測序結(jié)果表明,437位堿基由C變?yōu)門。

2.2 重組菌的誘導(dǎo)表達(dá)及產(chǎn)物純化 經(jīng)42℃誘導(dǎo)的重組菌進(jìn)行SDS-PAGE分析,結(jié)果表明,在約58 kDa處有一特異條帶,分子量與預(yù)期大小一致,不同誘導(dǎo)時間對表達(dá)量的影響差別不明顯,最佳誘導(dǎo)時間為3h。用軟件Alpha Imager2200對表達(dá)的蛋白進(jìn)行薄層掃描分析,表明蛋白表達(dá)量約占菌體蛋白的16%,實(shí)現(xiàn)了蛋白在大腸桿菌中的高表達(dá)。誘導(dǎo)表達(dá)3h的1L培養(yǎng)液,經(jīng)超聲破碎、80%飽和(NH4)2SO4沉淀、透析、幾丁質(zhì)親和柱層析后10%SDS-PAGE電泳,純化蛋白(圖3)較為理想。

2.3 DNS定糖法結(jié)果 如表1。

根據(jù)表1:重組子△OD值為0.578,SM 的△OD值為0.128,根據(jù)公式Y(jié)=0.459x+0.040計(jì)算得相應(yīng)的坐標(biāo)點(diǎn)b(1.172,0.578)和點(diǎn)a(0.192,0.128),由酶活定義可知:酶活力=NAG含量/(上清體積×?xí)r間),所以重組子的酶活為117.2μ/mL,SM的酶活為19.2μ/mL。

圖3 重組蛋白的SDS-PAGE分析

3.6 溶圈法測幾丁質(zhì)酶活性 SM、pBV221/BL21、pBV-chiA5/BL21經(jīng)破壁處理,取上清150 μL置于含幾丁質(zhì)(1%)的LB固體培養(yǎng)基上的牛津杯中進(jìn)行溶圈試驗(yàn),3d后溶圈現(xiàn)象明顯可見。重組菌pBV-chiA5/BL21的幾丁質(zhì)酶活性明顯優(yōu)于粘質(zhì)沙雷氏菌SM,對照pBV221/BL21基本沒有幾丁質(zhì)水解活性(圖5)。

3 結(jié)語與討論

3.1 測序結(jié)果表明,克隆的chiA基因序列大小為1 686bp,與GenBank中的L01455相比,437位堿基由C變?yōu)門,表明該基因在利用幾丁質(zhì)作為碳源或氮源的沙雷氏菌屬中較為保守。

3.2 本試驗(yàn)成功構(gòu)建了原核表達(dá)重組質(zhì)粒pBV-chiA5,該質(zhì)粒在大腸桿菌BL-21中經(jīng)42℃誘導(dǎo)后高效表達(dá)幾丁質(zhì)酶,表達(dá)產(chǎn)物的分子量為58kDa,且主要以可溶性蛋白的形式存在。

表1 不同菌株水解幾丁質(zhì)時吸光度的變化

3.3 本試驗(yàn)采用了飽和(NH4)2SO4沉淀法,幾丁質(zhì)親和柱層析法純化了目的蛋白,保證了幾丁質(zhì)酶的活性,為固定化酶批量生產(chǎn)幾丁寡糖以及免疫佐劑的開發(fā)奠定了基礎(chǔ)。

3.4 本試驗(yàn)成功構(gòu)建了幾丁質(zhì)酶工程菌,其產(chǎn)物活性明顯優(yōu)于粘質(zhì)沙雷氏菌。蛋白的分離純化及活性表達(dá)對生產(chǎn)蛋白結(jié)晶、解析晶體結(jié)構(gòu)、進(jìn)一步了解幾丁質(zhì)酶作用的分子機(jī)制奠定了基礎(chǔ)。

[1]Neetu D,Rupinder T,Gurinder S H.Biotechnological aspects of chitinolytic enzymyces:a review[J].Appl Microbiol Biotechnol,2006,71:773-782.

[2]Hejazi A,F(xiàn)alkiner F R.Serratia marcescens[J].J Med Microbiol,1997,46:903-912.

[3]Svein J H,Pawel S,Jannicke B C,etal.Costs and benefits of processivity in enzymatic degradation of recalcitrant polysaccharide[J].PNAS,2006,103(48):18089-18094.

[4]Takeshi W,Wataru O,Kazushi S,etal.Chitinase system of Bacillus circulans WL-12and importance of chitinase A1in chitin degradation[J].Journal of Bacteriology,1990,172(7):4017-4022.

[5]Riccardo A.A.Muzzarelli.Chitins and chitosans as immunoadjuvants and non-allergenic drug carriers[J].Mar Drugs,2010,8:292-312.

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