余彬輝,王斌卿,胡志航,朱炳林,李肖梁,方維煥
(1.浙江大學(xué)動(dòng)物預(yù)防醫(yī)學(xué)研究所,浙江省動(dòng)物預(yù)防醫(yī)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,浙江杭州310058;2.杭州薦量獸用生物制品有限公司,浙江杭州310018)
當(dāng)今病毒性疫苗多利用轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng),生產(chǎn)工藝不僅費(fèi)時(shí)費(fèi)力,而且占用空間大,更重要的是病毒滴度不穩(wěn)定,批次之間病毒效價(jià)差異大。隨著疫苗市場的迅速發(fā)展,其生產(chǎn)技術(shù)將經(jīng)歷一場深刻的技術(shù)革新,從轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng)向生物反應(yīng)器培養(yǎng)轉(zhuǎn)變。這種轉(zhuǎn)變符合世界生物制藥發(fā)展趨勢,也表明我國疫苗生產(chǎn)技術(shù)將逐步與國際疫苗生產(chǎn)技術(shù)接軌。動(dòng)物細(xì)胞大規(guī)模培養(yǎng)在疫苗生產(chǎn)領(lǐng)域發(fā)揮著越來越重要的作用[1]。動(dòng)物細(xì)胞大規(guī)模培養(yǎng)和表達(dá)對生產(chǎn)疫苗有明顯的優(yōu)勢,一方面活性高、穩(wěn)定性好,是最重要的表達(dá)系統(tǒng),但動(dòng)物細(xì)胞大規(guī)模培養(yǎng)生產(chǎn)疫苗還存在一定問題[2-3],培養(yǎng)密度和產(chǎn)物濃度較低,在技術(shù)和設(shè)備上遠(yuǎn)沒有原核細(xì)胞培養(yǎng)成熟。
目前用于動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)的生物反應(yīng)器有很多種,但各具優(yōu)缺點(diǎn)[4-5]。如常見的攪拌式生物反應(yīng)器,雖然混合傳氣效果較好、細(xì)胞培養(yǎng)密度高,但高的剪切力產(chǎn)生大量的細(xì)胞碎片影響產(chǎn)物質(zhì)量,而且給分離帶來一定困難[6];激流灌注式生物反應(yīng)器是一種新型簡便的生物反應(yīng)器[7],可用于貼壁和懸浮兩種模式的細(xì)胞培養(yǎng)。該反應(yīng)器采用一次性塑料耗材,灌注培養(yǎng)系統(tǒng)采用外循環(huán)式細(xì)胞載體灌注培養(yǎng)工藝,將裝有紙片載體的培養(yǎng)袋(即灌注系統(tǒng))固定于反應(yīng)器外,動(dòng)物細(xì)胞貼壁生長于紙片載體上,通過蠕動(dòng)泵及重力作用打入培養(yǎng)基,實(shí)現(xiàn)激流系統(tǒng)和灌注系統(tǒng)的循環(huán),培養(yǎng)液供給細(xì)胞正常生長代謝所需的養(yǎng)分,帶走代謝產(chǎn)物;利用激流式生物反應(yīng)器拖帶式傳氣技術(shù)在線監(jiān)控溶氧、p H、溫度等培養(yǎng)條件,為細(xì)胞生長創(chuàng)造有利的環(huán)境,同時(shí)此部分也可單獨(dú)進(jìn)行懸浮細(xì)胞的培養(yǎng)。
本試驗(yàn)應(yīng)用激流式生物反應(yīng)器培養(yǎng)MDCK細(xì)胞,通過對培養(yǎng)基、細(xì)胞接種密度、耗糖量、溶氧量、p H和溫度等參數(shù)的優(yōu)化,建立MDCK細(xì)胞生物反應(yīng)器規(guī)?;瘮U(kuò)繁技術(shù),為獲得高密度細(xì)胞及在病毒疫苗生產(chǎn)中應(yīng)用的奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 細(xì)胞和試劑 MDCK細(xì)胞,中國科學(xué)院細(xì)胞庫上海生命科學(xué)院產(chǎn)品;MEM、DMEM、DMEM/F12培養(yǎng)基,Gibco公司產(chǎn)品;胎牛血清,杭州四季青公司產(chǎn)品;胰酶,上海澤衡生物公司產(chǎn)品;葡萄糖測定試劑盒,為上海史瑞克生物公司產(chǎn)品;其他試劑為國產(chǎn)分析純。
1.1.2 儀器設(shè)備 分光光度計(jì)、高效液相色譜儀、倒置顯微鏡、AP10 4L生物反應(yīng)器、溶氧電極、p H計(jì)、細(xì)胞轉(zhuǎn)瓶等。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)
1.2.1.1 細(xì)胞復(fù)蘇 從液氮罐中取出1管MDCK細(xì)胞于37℃快速解凍后,加到含100 mL/L胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,在75 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶中培養(yǎng),4 h換液。待長成單層后PBS清洗1次,胰酶消化后以1∶4~1∶5的比率傳代擴(kuò)繁。
1.2.1.2 轉(zhuǎn)管培養(yǎng) 加適量MDCK細(xì)胞和紙片載體于轉(zhuǎn)管中(40 mL培養(yǎng)體系),采用間歇換液法培養(yǎng),48 h后每12 h半數(shù)換液。
1.2.1.3 激流生物反應(yīng)器培養(yǎng)
1.2.1.3.1 準(zhǔn)備工作 將激流袋和灌注袋充氣后檢漏,氣密性完好的情況下將PBS注入灌注袋浸泡紙片載體。將p H、溫度和溶氧電極分別校準(zhǔn)后裝入盛有PBS緩沖液的不銹鋼桶中121℃高壓滅菌30 min。
1.2.1.3.2 細(xì)胞培養(yǎng) 安裝好反應(yīng)器和電極后,在AP10反應(yīng)器中加4 L DMEM-HG。設(shè)定條件:紙片載體100 g,p H 7.2、溶氧量(DO)50%~60%,37℃、循環(huán)速度400 mL/min、振蕩頻率60 r/min,接入1.5×106個(gè)/mL MDCK細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng)。
1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng)條件處理 按培養(yǎng)基種類、p H、接種密度、DO值等參數(shù)對細(xì)胞生長的影響進(jìn)行以下不同處理。
1.2.2.1 培養(yǎng)基 在紙片載體0.6 g、細(xì)胞接種密度2.5×105個(gè)/mL培養(yǎng)體系為40 mL等固定條件下,分析不同培養(yǎng)基(MEM、DMEM/F12、DMEMHG或DMEM-LG)對細(xì)胞生長的影響。
1.2.2.2 p H 在紙片載體0.6 g、37℃,細(xì)胞接種密度2.5×105個(gè)/mL固定條件下,分析不同p H(6.8、7.0、7.2、7.4、7.6)對細(xì)胞生長的影響。
1.2.2.3 細(xì)胞接種密度 在紙片載體 0.6 g、DMEM-HG培養(yǎng)基、p H 為7.2、37℃,40 mL培養(yǎng)體系的條件下,細(xì)胞接種密度分別為1.25×105、2.50×105、3.75×105、5.0×105、7.5×105個(gè)/mL時(shí)的生長狀況。
1.2.2.4 溶氧量 紙片載體100 g、細(xì)胞接種密度1.5×106個(gè)/mL、搖床速度60 r/min、流量400 mL/min、p H7.2、37℃等固定條件下,DO分別設(shè)為20%~40%、50%~60%、70%~80%對細(xì)胞生長的影響。
1.2.2.5 液體流量和震蕩頻率 載紙片體100 g、細(xì)胞接種密度(1.5×106個(gè)/mL)、DO(50%~60%)、p H7.2和溫度(37℃)等固定條件下,不同液體流量(200、300、400、500 mL/min)和不同振蕩頻率(40、60、80 r/min)培養(yǎng)對細(xì)胞增殖的影響。
1.2.3 細(xì)胞生長分析 將培養(yǎng)的細(xì)胞用PBS清洗2遍后,加入含1 g/L結(jié)晶紫的檸檬酸溶液1 L于37℃溫室放置40 min揉搓搖勻后取樣計(jì)數(shù),用細(xì)胞計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù),計(jì)算細(xì)胞密度。
1.2.4 細(xì)胞代謝分析
1.2.4.1 葡萄糖測定 按照葡萄糖測定試劑盒說明書進(jìn)行。
1.2.4.2 氨基酸測定 按照氨基酸測定試劑盒說明書進(jìn)行。
1.2.4.3 紙片貼壁率計(jì)算
貼壁率(%)=X1/X0×100%
X0代表接種時(shí)的細(xì)胞量,X1代表3h后紙片載體上的細(xì)胞貼壁數(shù)。
DMEM-HG培養(yǎng)MDCK細(xì)胞5 d,細(xì)胞密度達(dá)到最高(3.2×106個(gè)/mL,圖1A);采用DMEM-HG培養(yǎng)基,利用間歇換液法培養(yǎng)第6天細(xì)胞密度達(dá)到最高(3.46×106個(gè)/mL,圖1B)。
圖1 不同培養(yǎng)基對MDCK細(xì)胞生長和比生長速率的影響Fig.1 Effects of different media on cell density and specific growth rates in MDCK cells
在載體量0.6 g、間歇換液法培養(yǎng)5 d的條件培養(yǎng)MDCK細(xì)胞,結(jié)果表明接種密度越大糖耗越高;同時(shí)糖耗高峰期也隨細(xì)胞量的增大而提前,但細(xì)胞產(chǎn)量卻不和接種密度成正比(表1)。
表1 接種密度對MDCK細(xì)胞生長的影響Table1 Effect of cell density on MDCK cell growth
圖2表明,MDCK細(xì)胞在p H7.2時(shí)細(xì)胞密度最高(1.04×107個(gè)/mL),因此7.2為最適p H。
圖2 p H對MDCK細(xì)胞生長的影響Fig.2 Effect of p H on MDCK cell growth
在相同條件(接種密度1.5×106個(gè)/mL、p H 7.2、37℃、培養(yǎng)6 d,分別固定DO值、循環(huán)流量和振蕩頻率進(jìn)行反應(yīng)器培養(yǎng)細(xì)胞優(yōu)化試驗(yàn)。從圖3看出,DO值50%~60%,循環(huán)流量400 mL/min和振蕩頻率60 r/min條件下可收獲最大量細(xì)胞(17.8×106、16.4×106、18.6×106個(gè)/mL)。
圖4表明細(xì)胞在第5天達(dá)到最高耗糖量(3.1 g/L)和最高細(xì)胞密度(1.02×107個(gè)/mL);第2天達(dá)到最大比生長速率。整個(gè)培養(yǎng)過程中利用氣體流通開放式進(jìn)行培養(yǎng),因此氨濃度為零。從圖4B看出,乳酸的最大濃度為28.1 mmo L/L,而氨基酸從第4天以后為零,因此在生產(chǎn)中根據(jù)需要補(bǔ)充氨基酸。
圖3 DO、循環(huán)流量和振蕩頻率對細(xì)胞生長的影響Fig.3 Effects of DO,circulation flow and oscillation rate on cell growth
傳統(tǒng)轉(zhuǎn)瓶生產(chǎn)工藝是目前成熟的疫苗培養(yǎng)方法,但由于操作繁瑣,傳代環(huán)節(jié)多,易污染及產(chǎn)品質(zhì)量難于控制是其大規(guī)模應(yīng)用的主要障礙。激流式生物反應(yīng)器采用紙片載體培養(yǎng)模式,紙片載體呈三維立體結(jié)構(gòu),可增加細(xì)胞黏附生長面積。該模式易于細(xì)胞生長及營養(yǎng)供給,培養(yǎng)過程可采用連續(xù)灌注培養(yǎng),不斷加入新鮮培養(yǎng)液的同時(shí)排出舊液,能有效供給營養(yǎng)除去代謝產(chǎn)物,使細(xì)胞始終處于良好的營養(yǎng)狀態(tài),適用于高密度細(xì)胞培養(yǎng),同時(shí)延長細(xì)胞維持時(shí)間,有利于病毒的持續(xù)繁殖,提高疫苗產(chǎn)量[8-10]。
MDCK細(xì)胞在培養(yǎng)過程中需要消耗大量的糖,在糖耗完后就利用氨基酸作為碳源[11]。D/F12、MEM和DMEM-LG培養(yǎng)基中葡萄糖在第3天便耗完,而 DMEM-HG 在第5天 才 耗 完,因 此DMEM-HG最適于 MDCK細(xì)胞生長。代謝過程中,氨離子濃度很低,但乳酸的產(chǎn)量較高,因此培養(yǎng)到48 h進(jìn)行全換液。每24 h取樣檢測耗糖量,根據(jù)檢測情況及時(shí)補(bǔ)充葡萄糖和氨基酸。
本試驗(yàn)采用48 h后每12 h半數(shù)換液的方式,消除代謝產(chǎn)物給細(xì)胞帶來的不利影響[11-12]。單純從細(xì)胞培養(yǎng)密度出發(fā),換液培養(yǎng)要比不換液高2倍,同時(shí)細(xì)胞生長對數(shù)周期短、倍增時(shí)間快,利于細(xì)胞保持良好狀態(tài),便于提前接種病毒。激流式生物反應(yīng)器培養(yǎng)MDCK細(xì)胞,在細(xì)胞密度、擴(kuò)增倍數(shù)、比生長速率等方面都明顯優(yōu)于轉(zhuǎn)瓶培養(yǎng),此外它能減少污染、節(jié)約空間和人力[13]。激流式生物反應(yīng)器是靠激流供氧,因此是機(jī)械剪切力小、混合性能好的新型供氧培養(yǎng)系統(tǒng)[14]。另外,激流式反應(yīng)器附有呼吸袋,因此細(xì)胞培養(yǎng)過程中產(chǎn)生的氨等不利氣體通過呼吸袋排出培養(yǎng)系統(tǒng)。
圖4 激流生物反應(yīng)器培養(yǎng)MDCK細(xì)胞Fig.4 Cultivating MDCK cells in AP10 4L bioreactor
[1]Jesus M D,Wurm F M.Manufacturing recombinant proteins in kg-ton quantities using animal cells in bioreactors[J].Eur J Pharm Biopharm,2011,78(2):184-188.
[2]Garcia-Ochoa F,Gomez E.Bioreactor scale-up and oxygen transfer rate in microbial processes:An overview [J].Biotechnol Adv,2009,27(2):153-176.
[3]Huang T K,McDonald K A.Bioreaetor engineering for recombinant protein production in plant cell suspension cultures[J].Biochem Eng J,2009,45(3):168-184.
[4]Wang D,Liu W,Han B,et al.The bioreactor:a powerful tool for large-scale culture of animal cells[J].Curr Pharm Biotechnol,2005,6(5):397-403.
[5]Kehoe D E,Jing D,Lock L T,et al.Scalable stirred-suspension bioreactor culture of human pluripotent stem cells[J].Tissue Eng Part A,2010,16(2):405-421.
[6]唐江偉,吳振強(qiáng).新型生物反應(yīng)器結(jié)構(gòu)研究進(jìn)展 [J].中國生物工程雜志,2007,27(5):146-152.
[7]Li L,Shi M,Song Y,et a1.A Single-use,sealable perfusion bioreactor system[J].Bio Process Int,2009,7(6):46-54.
[8]Genzel Y,Dietzsch C,Rapp E,et al.MDCK and Vero cells for influenza virus vaccine production:a one-to-one comparison up to lab-scale bioreactor cultivation[J].Appl Microbiol Biotechnol,2010,88(2):461-475.
[9]Trabelsi K,Majoul S,Rourou S,et al.Development of a measles vaccine production process in MRC-5 cells grown on Cytodex1 microcarriers and in a stirred bioreactor[J].Appl Microbiol Biotechnol,2012,93(3):1031-1040.
[10]Liu C C,Guo M S,Lin F H,et al.Purification and characterization of enterovirus 71 viral particles produced from vero cells grown in a serum-free microcarrier bioreactor system[J].PLoS One,2011,6(5):e20005.
[11]Linz M,Zeng A P,Wagner R,et al.Stoichiometry,kinetics,and regulation of glucose and amino acid metubolism of a recombinant BHK cell line in batch and continous cultures[J].Biotechnol Prog,1997,13(4):453-463.
[12]Zielke H R,Zielke C L,Ozand P T.Glutamine:a major energy source for cultured mammalian cell [J].Fed Proc,1984,43(1):121-125.
[13]韓德勝,李振平.微載體規(guī)模化培養(yǎng)細(xì)胞的研究 [J].微生物學(xué)免疫學(xué)進(jìn)展,2005,33(3):34-36.
[14]劉 軼,朱國強(qiáng).動(dòng)物細(xì)胞培養(yǎng)及微載體技術(shù)研究進(jìn)展 [J].吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2007,29(2):203-206.