倪 琳, 楊 錫
(甘肅省食品藥品檢驗所,甘肅省中藥品質(zhì)與安全評價工程技術(shù)研究中心,甘肅蘭州730000)
生脈飲收載于《中國藥典》2010年版一部,由紅參、麥冬、五味子組成,具有益氣復脈,養(yǎng)陰生津。用于氣陰兩虧,心悸氣短,脈微自汗[1]。原標準有紅參、麥冬的薄層色譜鑒別,無定量測定項。方中五味子的主要有效成分為五味子醇甲、五味子甲素和五味子乙素。本實驗采用高效液相色譜法同時測定五味子醇甲、五味子甲素和五味子乙素,方法簡便,結(jié)果準確可靠,可有效控制產(chǎn)品質(zhì)量。
1.1 儀器 Waters Alliance e2695四元泵,Waters 2998二級管陣列檢測器;Mettler AE240電子天平。
1.2 試藥 五味子醇甲對照品(批號:110857-200709)、五味子甲素對照品(批號:0764-200107)、五味子乙素對照品(批號:110765-200205),均購自中國藥品生物制品檢定所;生脈飲樣品由甘肅普安制藥有限公司提供;甲醇為色譜純,水為重蒸水,其它試劑均為分析純。
2.1 對照品溶液的制備 分別精密稱取五味子醇甲、五味子甲素和五味子乙素對照品適量,加甲醇制成每1 mL含五味子醇甲0.021 72 mg、五味子甲素0.018 54 mg、五味子乙素0.021 72 mg的混合溶液,即得。
2.2 供試品溶液的制備 精密吸取本品10 mL,置50 mL量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得。
2.3 陰性對照溶液的制備 按供試品的處方和制法,制成不含五味子的陰性樣品,按上述供試品溶液的制備方法制得陰性對照溶液。
2.4 色譜條件及系統(tǒng)適應性試驗 色譜柱選用CAPCELL PAK C18柱(5 μm,4.6 mm ×250 mm);流動相為梯度洗脫:Ⅰ.甲醇-水(65∶35)(0~12 min):Ⅱ.甲醇-水(75 ∶25)(12 ~45 min);Ⅲ.甲醇-水(65∶35)(45~50 min);檢測波長為220 nm;體積流量為1.0 mL/min;進樣體積20 μL;柱溫為30℃。理論板數(shù)按五味子醇甲計算應不低于5 000。對照品,供試品以及陰性對照色譜圖見圖1。陰性對照無干擾。
圖1 混合對照品(A)、生脈飲樣品(B)和陰性對照樣品(C)HPLC色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of mixed reference substances(A),Shengmai Oral Liquid sample(B)and negative sample(C)
2.5 工作曲線與線性關(guān)系 分別精密吸取混合對照品溶液 8、10、15、20、25、30 μL,注入液相色譜儀,測定峰面積積分值,以峰面積積分值為橫坐標(X),對照品溶液的進樣量(μg)為縱坐標(Y),分別得到回歸方程:
五味子醇甲Y=1.768 4×10-7X-2.451 9×10-3,r=0.999 8。
五味子甲素Y=1.641 8×10-7X-5.722 0×10-3,r=0.999 9。
五味子乙素Y=1.625 6×10-7X-7.874 5×10-4,r=0.999 8。
結(jié)果表明,五味子醇甲在0.173 8 μg~0.651 6 μg、五味子甲素 0.148 3 μg ~0.556 2 μg、五味子乙素0.173 8 μg~0.651 6 μg范圍內(nèi)均呈良好的線性關(guān)系。
2.6 精密度試驗 精密吸取混合對照品溶液20 μL,注入液相色譜儀,連續(xù)進樣6次,測定峰面積,五味子醇甲RSD為0.67%、五味子甲素RSD為1.16%、五味子乙素RSD為1.27%,表明儀器精密度良好。
2.7 穩(wěn)定性試驗 取同一供試品溶液,每隔2 h進樣1次,結(jié)果在10 h內(nèi)供試品溶液中五味子醇甲、五味子甲素、五味子乙素峰面積穩(wěn)定,RSD分別為1.21% 、1.23% 、1.05% 。
2.8 重復性試驗 取生脈飲樣品6份,每份精密吸取10 mL,按供試品溶液制備方法制備,在確定的色譜條件下進行分析,五味子醇甲、五味子甲素、五味子乙素RSD分別為0.87%、1.11%、1.35%。
2.9 加樣回收率試驗 取已測定五味子醇甲、五味子甲素、五味子乙素的供試品(批號:20100502)6份,每份精密吸取5 mL,置50 mL量瓶中,分別精密加入一定量的五味子醇甲對照品(0.140 2 mg/L)、五味子甲素對照品(0.055 mg/L)、五味子乙素對照品(0.057 mg/L)對照品溶液,按供試品溶液制備方法制備,依法測定,即得。見表1。
表1 加樣回收率試驗結(jié)果(n=6)Tab.1 Results of recovery tests(n=6)
2.10 樣品的測定 取3批生脈飲按供試品溶液的制備方法制成供試液,分別進樣,測得峰面積值,計算生脈飲中五味子醇甲、五味子甲素、五味子乙素的質(zhì)量濃度。見表2。
表2 樣品測定結(jié)果(n=3)Tab.2 Results of sample determination(n=3)
3.1 樣品提取方法的選擇 曾試驗:①加甲醇提取樣品,測得總量為0.201 mg/mL;②加甲醇超聲提取樣品,測得總量為0.202 mg/mL;③加三氯甲烷萃取樣品,測得總量為0.086 mg/mL;④加乙酸乙酯超聲提取樣品[2],測得總量為0.196 mg/mL。結(jié)果表明,4種提取方法其中方法①和方法②質(zhì)量濃度較方法③、④高,且方法①提取方法較簡便,所以選擇方法①作為樣品提取方法。
3.2 流動相的選擇 曾試驗:乙腈-甲醇-水(15∶15∶10)[2-3];甲醇-水[4-8];甲醇-水-冰醋酸(75 ∶25 ∶0.1)[9];以甲醇-乙腈-水為流動相,采用梯度洗脫[10];以甲醇(A)-水(B)為流動相,采用梯度洗脫:0~5 min,A-B(30∶70);5~40 min,A-B(25∶75);40 ~45 min,A-B(32 ∶68)[11];用以上5 種流動相測定,生脈飲中五味子醇甲、五味子甲素、五味子乙素均達不到基線分離,再試驗摸索確定以甲醇(A)-水(B)為流動相,采用梯度洗脫:0~12 min,A-B(65∶35);12 ~45 min,A-B(75 ∶25);45 ~50 min,A-B(65∶35)生脈飲中3種成分達到基線分離。
3.3 檢測波長的選擇 曾參考文獻[2-9]檢測波長選在250 nm、254 nm,結(jié)果生脈飲中五味子甲素、五味子乙素積分值較低,采用DAD在190 nm~400 nm全波長掃描,五味子醇甲、五味子甲素、五味子乙素在220 nm均有最大吸收,故選擇220 nm作為檢測波長。
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