国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

冬季大葉藻與幼參混養(yǎng)效果的模擬研究

2012-06-06 07:15邢坤李耕楊貴福劉海映潘玉洲鄭文軍
大連海洋大學學報 2012年3期
關(guān)鍵詞:刺參營養(yǎng)鹽水體

邢坤,李耕,楊貴福,劉海映,潘玉洲,鄭文軍

(1.大連海洋大學海洋科技與環(huán)境學院,遼寧大連116023;2.中國水產(chǎn)科學研究院營口增殖實驗站,遼寧營口115004)

大葉藻Zostera marina隸屬于眼子菜科Potamogetonaceae、大葉藻屬Zostera,是潮間帶和潮下帶淺海中的多年生海草。在世界范圍內(nèi),海草床、紅樹林和珊瑚礁構(gòu)成了三大海洋生態(tài)系統(tǒng),其中海草床的生產(chǎn)力和物種多樣性最高[1-2],隨著近年來全球氣候變化導致的海平面上升、海水升溫、氣候異常、紫外線增強,以及海岸帶開發(fā)和陸源輸入的污染導致的水體透明度下降和富營養(yǎng)化,全球范圍內(nèi)的海草退化嚴重[3],在環(huán)渤海區(qū)域海草幾近絕跡[4]。大葉藻通常在沿海潮間帶的灘涂、潮下帶較淺水域、泄湖甚至咸水池塘中形成生物量巨大的群落。大葉藻可以凈化池塘水質(zhì),改善底質(zhì)條件,豐富餌料生物,促進養(yǎng)殖對象的生長。但國內(nèi)對于大葉藻在水產(chǎn)養(yǎng)殖中的應(yīng)用報道較少,僅見在蝦池中移植大葉藻,可改善水質(zhì),增加對蝦產(chǎn)量[5],以及從自然海區(qū)移植大葉藻在刺參養(yǎng)殖中應(yīng)用的報道[6]。

近年來,中國水產(chǎn)科學院黃海水產(chǎn)研究所在山東煙臺、威海等地進行了大葉藻的移植試驗,建立了大葉藻增殖區(qū),并逐步開展了大葉藻的基礎(chǔ)生物學研究[7-8]。本試驗中,作者在冬季非生長季節(jié)移植大葉藻,研究大葉藻與刺參的互利模式,為探索大葉藻與刺參生態(tài)混養(yǎng)模式的可行性,修復(fù)和優(yōu)化養(yǎng)殖水質(zhì),促進刺參養(yǎng)殖業(yè)的健康可持續(xù)發(fā)展提供參考資料。

1 材料與方法

1.1 材料

試驗用大葉藻于2010年11月6日取自遼寧省葫蘆島市菊花島附近潮下帶海區(qū)。試驗用刺參取自中國水產(chǎn)科學研究院遼寧營口增殖實驗站旺海苗種培育基地,為2010年培育的秋苗,選擇活動能力強、對外界刺激反應(yīng)靈敏、管足附著力強、攝食能力強的幼參50尾用于試驗,幼參體長為 (2.90±0.04)cm,體質(zhì)量為 (0.69±0.02)g。

1.2 方法

1.2.1 大葉藻的移植及與刺參的混養(yǎng)試驗 大葉藻采回后于實驗室暫養(yǎng)兩周,選擇長勢良好的植株,將其根莖剪成長10~15 cm的小段,每小段至少有3個完整的莖節(jié),以確保移植成活率。試驗用底質(zhì)為過1 mm篩的泥沙,試驗前將泥砂在-20℃下冷凍,以殺死其中的底棲動物,防止底質(zhì)惡化。

試驗設(shè)置大葉藻與幼參混養(yǎng)組、幼參單養(yǎng)對照組和大葉藻單養(yǎng)空白組,每組設(shè)5個重復(fù),試驗容器為5 L的大燒杯 (15個)。燒杯底部鋪有5 cm厚的泥沙,疏松程度一致?;祓B(yǎng)組和大葉藻單養(yǎng)組試驗燒杯內(nèi)放入3~4顆長勢相近的大葉藻;混養(yǎng)組和幼參單養(yǎng)組燒杯內(nèi)各放入5只幼參;在幼參單養(yǎng)組內(nèi)放置塑料波紋板,以對比大葉藻對刺參的集聚效果。試驗時間為2010年11月24日—12月23日。

1.2.2 飼養(yǎng)管理 將試驗燒杯置于自制的木質(zhì)避光設(shè)施中 (長1.5 m、寬0.3 m、高1.0 m),內(nèi)置15 W日光燈,光照時間為12 h(8:00—20:00),水體表面光照強度為 (271±14)lx(用ZDS-10型照度計測定)。幼參暫養(yǎng)階段每日投喂專用幼參配合餌料 (粗蛋白質(zhì)量分數(shù)≥18%),試驗前24 h終止投喂,使幼參排盡腸道中的內(nèi)含物,以防止幼參糞便對試驗水體的污染。試驗期間,水溫為 (15±1)℃,鹽度為30,幼參不投喂。

1.2.3 水體營養(yǎng)鹽指標的測定及大葉藻對幼參的集聚效果 采用次溴酸鈉氧化法測定水體中的氨氮含量;用磷鉬藍分光光度法測定磷酸鹽含量;用鋅-鎘還原法測定亞硝酸鹽含量;用萘乙二胺分光光度法測定硝酸鹽含量。試驗期間,氨氮和硝酸鹽含量共測定2次,磷酸鹽和亞硝酸鹽含量每周測定一次,共測定4次。早晚各觀察一次幼參對棲息地的選擇習性,持續(xù)1周。

1.3 數(shù)據(jù)處理

采用SPSS 13.0軟件對試驗數(shù)據(jù)進行分析處理,采用t-檢驗法分析組間的差異。

2 結(jié)果

2.1 水體中氨氮含量的變化

從圖1可見:試驗開始階段,各組水體中氨氮含量相近,組間沒有顯著差異 (P>0.05);試驗結(jié)束時,各組水體中的氨氮含量均顯著提高 (P<0.05),其中大葉藻單養(yǎng)組含量最高,幼參單養(yǎng)組含量最低,但各組間均沒有顯著差異 (P>0.05)。

2.2 水體中磷酸鹽含量的變化

從圖1可見:試驗開始階段,各組水體中磷酸鹽含量相近,組間沒有顯著差異 (P>0.05);隨著試驗的進行,各階段磷酸鹽含量的變化趨勢基本相似,均為大葉藻單養(yǎng)組中的含量最高,但各組間差異并不顯著 (P>0.05);試驗結(jié)束時,各組的含量較開始階段均有顯著提高 (P<0.05)。

圖1 水體中氨氮和磷酸鹽含量的變化Fig.1 The changes in ammonia nitrogen concentration,and phosphate concentration in the seawater

2.3 水體中亞硝酸鹽含量的變化

從圖2可見:試驗開始階段,大葉藻單養(yǎng)組中亞硝酸鹽含量顯著高于混養(yǎng)組和幼參單養(yǎng)組 (P<0.05),這是因大葉藻葉片腐爛引起的水質(zhì)惡化導致的差異;隨著試驗的進行,各階段亞硝酸鹽含量的變化趨勢基本相似,均為大葉藻單養(yǎng)組中的含量最高,幼參單養(yǎng)組含量最低,且各組間差異均顯著(P<0.05);試驗結(jié)束時,幼參單養(yǎng)組的含量變化最小,僅在試驗結(jié)束時才有顯著提高 (P<0.05),而混養(yǎng)組和大葉藻單養(yǎng)組的含量變化較大,均隨著試驗時間的延長而顯著提高 (P<0.05)。

2.4 水體中硝酸鹽含量的變化

從圖2可見:試驗開始階段,大葉藻單養(yǎng)組和混養(yǎng)組的硝酸鹽含量均顯著高于幼參單養(yǎng)組 (P<0.05);試驗結(jié)束時,各組水體中硝酸鹽的含量均顯著提高 (P<0.05),其中大葉藻單養(yǎng)組含量最高,幼參單養(yǎng)組含量最低,但各組間差異并不顯著(P>0.05)。

圖2 水體中亞硝酸鹽和硝酸鹽含量的變化Fig.2 The changes in nitrite concentration,and nitrate concentration in the seawater

2.5 大葉藻集聚幼參效果的觀察

如表1所示:混養(yǎng)組中超過80%的幼參棲息在大葉藻葉片上,且各平行試驗組的狀態(tài)基本一致,大葉藻對幼參的集聚效果良好;幼參單養(yǎng)組中大部分幼參附著在燒杯壁上或者是底質(zhì)上。

表1 幼參行為的觀察Tab.1 The observation of the behavior of juvenile sea cucumber

3 討論

3.1 大葉藻生理生態(tài)學特征

大葉藻有著良好的生態(tài)適應(yīng)性,其最適生長鹽度為10~25,最適生長溫度為10~20℃[9],適合在河口區(qū)域生長。在蝦池中移植大葉藻,大葉藻的地下根莖在冬季仍可存活[5];在刺參養(yǎng)殖池塘中移植大葉藻,大葉藻夏季繁殖茂盛,秋季開始枯萎[6]。大葉藻對養(yǎng)殖水體中營養(yǎng)鹽具有一定的控制作用,但大葉藻通常面臨營養(yǎng)鹽的限制[10],底質(zhì)和海草葉片是大葉藻重要的氮源,尤其在自然海區(qū)營養(yǎng)鹽缺乏的冬季,大葉藻通過自身內(nèi)部循環(huán)[11]和利用根系從周圍環(huán)境中獲得氮源[12]。大葉藻葉片在生長發(fā)育過程中,總氮和總磷的含量下降,其中幼片總氮和總磷的含量顯著高于衰老的葉片[13]。

3.2 大葉藻的生態(tài)限制因子及其在模擬條件下的生長

影響大葉藻生長和存活的因素主要有光照、水溫、濁度、水深、海流、附生生物、水體營養(yǎng)鹽、底質(zhì)、水動力條件和漁業(yè)活動等[14-16]。綜合不同生態(tài)因子的影響,大葉藻最適生長季節(jié)應(yīng)為春夏季節(jié)[17]。伴隨水溫的升高和太陽輻射的增加,春季(5月,水溫10℃)大葉藻凈光合速率最高,碳水化合物積累[18];夏初 (6月,水溫15℃)大葉藻開花[17];夏季 (8月,水溫21℃)大葉藻光合作用率最大;秋末大葉藻出現(xiàn)植株死亡現(xiàn)象;冬季水溫下降,太陽輻射最低,大葉藻生物量在冬季減少[18],大葉藻呈負生長狀態(tài),并出現(xiàn)腐爛現(xiàn)象。野外條件下,光照是大葉藻生長的主導限制因子[19],在不同季節(jié)伴隨著水體營養(yǎng)鹽的耗盡和太陽輻射率的降低,光照對大葉藻生長的影響呈階段性作用,同時水體營養(yǎng)鹽的釋放導致微藻及大型附生植物生長,增加了水體的濁度,減少了光合有效輻射 (photosynthetically active radiation,PAR),也影響著大葉藻的生長[20-21]。此外,大葉藻生長更偏好潮下帶泥沙底質(zhì),而不是細砂底質(zhì)[22-23]。

本試驗中大葉藻馴化階段,采用自然光照條件,保持適宜溫度 (15±1℃),大葉藻生長良好,同期自然海區(qū)水溫僅為6~12℃,說明大葉藻可在室內(nèi)環(huán)境下很好的存活。但在實驗室模擬條件下進行試驗時,大葉藻葉片出現(xiàn)腐爛現(xiàn)象,有三個方面的原因:一是光照不足,葉片光合速率低;二是底質(zhì)不適,根系無法吸收足量營養(yǎng)鹽;三是水體偏小,無法循環(huán)更換水體。試驗過程中養(yǎng)殖水體水質(zhì)惡化,雖然對刺參的生長未產(chǎn)生影響,但沒有達到預(yù)期利用大葉藻改善養(yǎng)殖水體水質(zhì)的目的,模擬試驗環(huán)境還須改進。

3.3 刺參與大葉藻的關(guān)系

大葉藻的地下根莖對海底沉積物有很強的固定作用,有利于保持海水的透明度;大葉藻通過光合作用吸收二氧化碳,釋放氧氣,調(diào)控水體中的溶解氧含量,改善養(yǎng)殖環(huán)境;大葉藻葉片茂盛,葉片長30~50 cm,寬3~5 mm,大葉藻葉片上附生的大量硅藻和一些微生物是幼參良好的餌料;夏季高溫季節(jié),大葉藻可以承受夏季27℃以上的高溫[24],葉片的遮擋可為刺參提供良好的棲居場所,這對刺參的安全度夏有著重要的意義。

大葉藻通常在沿海潮間帶和潮下帶較淺的水域形成巨大的群落,大葉藻種植區(qū)一般呈現(xiàn)出浮游和底棲生物的高生產(chǎn)量和生物多樣性,為一些重要的經(jīng)濟魚類和貝類提供食物來源、棲息地和育幼場所[25]。研究發(fā)現(xiàn),生長于香港的矮大葉藻Zostera japonica葉片上附著大量硅藻和腹足類[26]。冬季大葉藻根莖葉衰敗嚴重,沉積物累積,形成有機碎屑,增加海洋沉積物通量,并改善底質(zhì)粒度[27],可為刺參提供良好的食物來源。據(jù)潛水觀察,受冬季低溫和海潮的影響,近岸泥沙底質(zhì)生長的大葉藻葉片明顯發(fā)黑腐爛,尤其在大葉藻床區(qū),形成了明顯的碎屑堆積區(qū),并有刺參棲息,形成了大葉藻和刺參的互利關(guān)系。

本試驗結(jié)果表明:混養(yǎng)組刺參大多棲息于大葉藻上,大葉藻是幼參的天然附著基;大葉藻脫落的葉片可形成有機碎屑,為幼參提供良好的餌料;混養(yǎng)組水體中的各種營養(yǎng)鹽含量低于大葉藻單養(yǎng)組,說明幼參以腐爛脫落的葉片碎屑為食,可減少水體中營養(yǎng)鹽的含量。由此推斷,在復(fù)合養(yǎng)殖系統(tǒng)中刺參在一定程度上可起到對環(huán)境修復(fù)的作用。

根據(jù)本試驗結(jié)果,筆者認為:大葉藻可與當年培育的幼參混養(yǎng),為防止因越冬時大葉藻腐爛引起的水質(zhì)惡化,可在秋季對大葉藻根莖進行分蘗,減少池塘大葉藻的養(yǎng)殖密度,在越冬前加大進水量,使刺參安全越冬。

[1]許戰(zhàn)洲,黃良民,黃小平,等.海草生物量和初級生產(chǎn)力研究進展[J].生態(tài)學報,2007,27(6):2594-2602.

[2]Hemming M A,Duarte C M.Seagrass Ecology[M].Cambridge:Cambridge University Press,2000:20-23.

[3]Short F,Carruthers T,Dennison W,et al.Global seagrass distribution and diversity:A bioregional model[J].Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,2007,350(1-2):3-20.

[4]于函,馬有會,張巖,等.大葉藻的生態(tài)學特征及其與環(huán)境的關(guān)系[J].海洋湖沼通報,2007(增刊):112-120.

[5]任國忠,張起信.移植大葉藻提高池養(yǎng)對蝦產(chǎn)量的研究[J].海洋科學,1991,15(1):52-57.

[6]劉元剛,王光輝.大葉藻移植在海參養(yǎng)殖中的應(yīng)用[J].齊魯漁業(yè),2006,23(4):12.

[7]高亞平,方建光,張繼紅,等.桑溝灣大葉藻有性繁殖特性的觀察研究[J].漁業(yè)科學進展,2010,31(4):53-58.

[8]于函,馬有會,張巖,等.大葉藻花序的解剖結(jié)構(gòu)及超顯微結(jié)構(gòu)[J].漁業(yè)科學進展,2009,30(3):131-134.

[9]Nejrup L,Pedersen M.Effects of salinity and water temperature on the ecological performance of Zostera marina[J].Aquatic Botany,2008,88(3):239-246.

[10]Duarte C M.Seagrass nutrient content[J].Marine Ecology Progress Series,1990,6(2):201-207.

[11]Hasegawa N,Iizumi H,Murkai H.Nitrogen dynamics of the surfgrass Phyllospadix iwatensis[J].Marine Ecology Progress Series,2005,293:59-68.

[12]Reusch T B H,Chapman A R O,Gr?ger J P.Blue mussels Mytilus edulis do not interfere with eelgrass Zostera marina but fertilize shoot growth through biodeposition[J].Marine Ecology Progress Series,1994,108:265-282.

[13]石雅君.兩種海草植物與土壤的關(guān)系及其葉片不同發(fā)育階段元素含量和熱值的研究[D].南寧:廣西大學,2008.

[14]Short F T,Wyllie-Echeverria S.Natural and human-induced disturbance of seagrasses[J].Environmental Conservation,1996,23(1):17-27.

[15]de Jonge V N,de Jong D J,van Katwijk M M.Policy plans and management measures to restore eelgrass(Zostera marina L.)in the Dutch Wadden Sea[J].Helgoland Marine Research,2000,54(2):151-158.

[16]Van Katwijk M,Hermus D.Effects of water dynamics on Zostera marina:transplantation experiments in the intertidal Dutch Wadden Sea[J].Marine Ecology Progress Series,2000,208:107-118.

[17]Harrison P G.Variations in demography of Zostera marina and Z.noltii on an intertidal gradient[J].Aquatic Botany,1993,45(1):63-77.

[18]Olesen B,Sand-Jensen K.Seasonal acclimatization of eelgrass Zostera marina growth to light[J].Marine Ecology Progress Series,1993,94:91-99.

[19]Jennifer H,Cebrián J,Valiela I.Eelgrass Zostera marina loss in temperate estuaries:relationship to land-derived nitrogen loads and effect of light limitation imposed by algae[J].Marine Ecology Progress Series,2003,247(1):59-73.

[20]Dennison W C.Effects of light on seagrass photosynthesis,growth and depth distribution[J].Aquatic Botany,1987,27(1):15-26.

[21]Moore K A,Wetzel R L.Seasonal variations in eelgrass(Zostera marina L.)responses to nutrient enrichment and reduced light availability in experimental ecosystems[J].Journal of Experimental Marine Biology and Ecology,2000,244(1):1-28.

[22]Van Katwijk M,Wijgergangs L.Effects of locally varying exposure,sediment type and low-tide water cover on Zostera marina recruitment from seed[J].Aquatic Botany,2004,80(1):1-12.

[23]江鑫,潘金華,韓厚偉,等.底質(zhì)與水深對大葉藻和叢生大葉藻分布的影響[J].大連海洋大學學報,2012,27(2):101-104.

[24]Morita T,Okumura H,Abe M,et al.Density and distribution of seeds in bottom sediments in Zostera marina beds in Ago Bay,central Japan[J].Aquatic Botany,2007,87(1):38-42.

[25]高亞平,方建光,張繼紅,等.桑溝灣大葉藻附著生物的季節(jié)變化[J].漁業(yè)科學進展,2010,31(4):59-64.

[26]Fong C W,Lee S Y,Wu R S S.The effects of epiphytic algae and their grazers on the intertidal seagrass Zostera japonica[J].Aquatic Botany,2000,67(4):251-261.

[27]Bos A R,Bouma T J,de Kort G L J,et al.Ecosystem engineering by annual intertidal seagrass beds:sediment accretion and modification[J].Estuarine,Coastal and Shelf Science,2007,74:344-348.

猜你喜歡
刺參營養(yǎng)鹽水體
農(nóng)村黑臭水體治理和污水處理淺探
夏眠的刺參
夏眠的刺參
多源污染水體水環(huán)境質(zhì)量提升技術(shù)應(yīng)用
生態(tài)修復(fù)理念在河道水體治理中的應(yīng)用
光照對白刺參、青刺參和紫刺參生長、消化及免疫的影響
廣元:治理黑臭水體 再還水清岸美
瓊東海域冬季、夏季營養(yǎng)鹽結(jié)構(gòu)特征及其對浮游植物生長的影響
滸苔添加比例與微生物發(fā)酵對幼刺參生長、消化和非特異性免疫的影響
2012年冬季南海西北部營養(yǎng)鹽分布及結(jié)構(gòu)特征
安新县| 蒙自县| 阳春市| 阳曲县| 凤台县| 清流县| 长春市| 渭源县| 沁阳市| 东乡县| 墨江| 会昌县| 武鸣县| 绥江县| 海门市| 筠连县| 横山县| 裕民县| 新河县| 鄂托克旗| 三门峡市| 广南县| 巴马| 弥勒县| 辉县市| 宁国市| 乌海市| 五寨县| 阳山县| 上虞市| 类乌齐县| 耒阳市| 从江县| 澜沧| 温州市| 潜江市| 南澳县| 上高县| 龙岩市| 庆安县| 丽水市|