田雪亮 孔凡彬 郎劍鋒 劉鳴韜 陳錫嶺
摘要:研究串珠鐮刀菌(Fusarium moniliform)毒素誘導(dǎo)玉米保護(hù)性酶活性變化與品種抗性的關(guān)系,為利用串珠鐮刀菌毒素快速篩選抗病品種奠定基礎(chǔ)。以串珠鐮刀菌毒素處理玉米幼苗,測定玉米根系POD、PAL和PPO活性的變化。結(jié)果表明,抗病、感病品種玉米根系的保護(hù)性酶對串珠鐮刀菌毒素的誘導(dǎo)反應(yīng)不同??共?、感病品種玉米幼苗用串珠鐮刀菌毒素處理后,POD、PAL、PPO活性均有所提高,且隨處理時間延長,其活性變化呈先升高、后降低趨勢。在處理期間,抗病品種的酶活性高峰高于感病品種,表明抗病品種保護(hù)性酶對毒素敏感性高于感病品種;抗病品種的POD和PPO相關(guān)性強(qiáng)于感病品種。
關(guān)鍵詞:串珠鐮刀菌;苯丙氨酸解氨酶;多酚氧化酶;過氧化物酶;玉米
中圖分類號:S432.1文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A文章編號:0439-8114(2012)20-4517-03
玉米苗枯病是世界各玉米產(chǎn)地廣泛發(fā)生、危害嚴(yán)重的玉米苗期病害之一。近幾年,由于大量種植感病品種、種子帶菌、生長前期不良?xì)夂蛞约按址诺脑耘喙芾淼仍颍摬『Τ尸F(xiàn)出發(fā)病范圍、發(fā)病面積、危害程度均增大的趨勢,已經(jīng)成為玉米生產(chǎn)上亟待解決的問題。玉米苗枯病的主要病原菌為串珠鐮刀菌(Fusarium moniliform),它可以聯(lián)合多種病原菌復(fù)合侵染玉米根系,抑制玉米根系生長,造成玉米根系死亡[1]。串珠鐮刀菌為兼性寄生菌,且寄主范圍廣泛[2]。在侵染過程中,串珠鐮刀菌先將寄主細(xì)胞殺死,從死亡組織中獲取營養(yǎng),然后侵染擴(kuò)展至其他組織,能夠引起玉米秧苗枯萎,造成莖、穗、根及種子腐爛。玉米病株根部生長受抑制是串珠鐮刀菌所產(chǎn)生的毒素作用的結(jié)果[3],串珠鐮刀菌毒素在病菌的侵染過程中起著重要作用。
病原物侵染可引起植物一些與酚類代謝相關(guān)的酶的活性變化,其中最常見的是苯丙氨酸解氨酶(PAL)、過氧化物酶(POD)、多酚氧化酶(PPO)活性發(fā)生變化,這些酶活性的變化與植物的抗病機(jī)制有密切關(guān)系[4]。串珠鐮刀菌毒素是導(dǎo)致玉米發(fā)病的重要致病或致毒因子,能夠抑制玉米根系生長,造成玉米根系細(xì)胞膜破壞[5],關(guān)于該毒素造成玉米根系保護(hù)性酶變化情況鮮有研究報道。
為了明確串珠鐮刀菌毒素對玉米根系保護(hù)性酶的影響,試驗以經(jīng)毒素處理后的玉米根系POD、PAL和PPO活性變化為研究對象,以期揭示毒素誘導(dǎo)抗病和感病品種防御酶系活性變化與品種抗性的相互關(guān)系,為利用毒素篩選抗病基因、加速抗病育種奠定基礎(chǔ)。
1材料與方法
1.1供試玉米品種
鄭單958、浚單32,其中浚單32為抗病品種,鄭單958為感病品種。
1.2串珠鐮刀菌毒素制備
供試串珠鐮刀菌接種于液體培養(yǎng)基(50 g馬鈴薯加水1 000 mL煮汁過濾,濾液加20 g蔗糖) 中,25 ℃振蕩培養(yǎng)5 d后,用2層無菌紗布過濾,濾液3 000 r/min離心15 min,取上清液過濾滅菌后稀釋至10%作為毒素。
1.3測定和數(shù)據(jù)分析
將在無菌土中培養(yǎng)至2~3葉期的玉米幼苗連根拔起,沖洗干凈,浸入盛有毒素的燒杯里,每燒杯處理20棵幼苗,以10%液體培養(yǎng)基處理為對照(CK)。3次重復(fù)。處理時間分別為2、4、6、12、24、36 h,分別測定POD、PAL和PPO活性。POD活性測定采用愈創(chuàng)木酚法[6],PAL活性測定采用苯丙氨酸法[7],PPO活性測定采用鄰苯三酚法[8]。用SPSS軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
2結(jié)果與分析
2.1毒素對玉米根系PAL活性的影響
毒素對玉米根系PAL活性的影響見圖1。由圖1可見,毒素處理后,2個品種的PAL活性發(fā)生明顯的變化。隨毒素處理時間的延長,PAL活性呈先升高后降低趨勢;抗病品種浚單32的PAL活性高于感病品種鄭單958;毒素處理2~6 h,2個品種的PAL活性快速增加,處理6 h時均達(dá)到最大值,處理6~24 h,2個品種的PAL活性迅速下降。毒素處理24 h后,鄭單958的PAL活性接近浚單32,處理24 h后2個品種的PAL活性均降到最低點(diǎn)。對照2個品種的PAL酶活性變化不大。
2.2毒素對玉米根系POD活性的影響
毒素對玉米根系POD活性的影響見圖2。由圖2可見,毒素處理后,2個品種根系的POD活性均明顯升高,且隨毒素處理時間的延長呈先升高后降低的趨勢,處理12 h活性達(dá)到高峰,然后逐漸下降。毒素處理2~6 h,抗病、感病品種的POD活性差異不大。毒素處理12~36 h,抗病品種浚單32的POD活性高于感病品種鄭單958。對照2個品種的POD活性變化不大。
2.3毒素對玉米根系PPO活性的影響
毒素對玉米根系PPO活性的影響見圖3。由圖3可見,毒素處理后,2個品種的PPO活性變化趨勢基本一致,均為先升高后降低。毒素處理2~6 h,抗病品種和感病品種的PPO活性無顯著差別。毒素處理12 h,抗病品種和感病品種的PPO活性達(dá)到峰值,抗病品種浚單32的PPO活性高于感病品種鄭單958。毒素處理12~24 h,2個品種的PPO活性下降,抗病品種的PPO活性總體高于感病品種。
2.4毒素處理后玉米根系PAL、PPO、POD的相關(guān)性分析
毒素處理后玉米根系PAL、PPO、POD的相關(guān)性分析結(jié)果見表1。感病品種的POD和PPO的相關(guān)性較強(qiáng)(相關(guān)系數(shù)為0.82),表明在玉米根系中POD和PPO的活性調(diào)節(jié)存在一定的協(xié)同性,而POD、PPO與PAL的活性之間相關(guān)性較弱,這表明PAL的活性調(diào)節(jié)可能與POD和PPO的活性調(diào)節(jié)途徑不同,因此在時間上和空間上存在差異??共∑贩N的POD和PPO活性相關(guān)性最強(qiáng)(相關(guān)系數(shù)為0.97),表明抗病品種的POD和PPO的活性調(diào)節(jié)時空一致,有利于充分發(fā)揮多種保護(hù)性酶的協(xié)同作用??共∑贩N的PAL活性與另外兩種酶的相關(guān)性較弱,同樣說明了PAL活性調(diào)節(jié)機(jī)制與POD和PPO存在差異。
3小結(jié)與討論
被病原物侵染后植物體內(nèi)的防御酶被激活[9]。植物防御性酶如POD、PPO和PAL與植物的抗病反應(yīng)有關(guān)。過氧化物酶(POD)能增加植株幼嫩組織的木質(zhì)化程度,并催化過氧化氫氧化酚類反應(yīng),產(chǎn)生醌類化合物,能夠殺死病原菌。多酚氧化酶(PPO)能將酚類物質(zhì)氧化為醌、多酚及其氧化物,能抑制病菌所需的磷酸化酶和轉(zhuǎn)氨酶,同時對病菌向寄主體內(nèi)蔓延起主要作用的果膠酶和纖維素酶有強(qiáng)烈抑制作用[10]。POD和PPO還能夠催化木質(zhì)素和其他氧化酚類物質(zhì)形成,有利于增強(qiáng)細(xì)胞結(jié)構(gòu)。植物受到病原菌侵染后,這些防御性酶的活性增強(qiáng)。
串珠鐮刀菌毒素處理后,玉米根系的3種酶活性均升高,表明毒素對玉米根系有破壞作用,而玉米為保護(hù)細(xì)胞不受毒素的破壞而促使這些酶活性提高。毒素處理后,抗病品種的3種酶活性均高于感病品種,表明抗病品種抵抗毒素的能力更強(qiáng)。過氧化物酶和多酚氧化酶的活性與植物的抗病性有一定的相關(guān)性[11],酶活性變化可作為植物抗病性鑒定的生化指標(biāo)之一[12]。
PPO和POD都能增強(qiáng)由植物細(xì)胞結(jié)構(gòu)形成的防御屏障[13,14]。這兩種酶的作用機(jī)制相似,活性調(diào)節(jié)機(jī)制上可能也存在相同途徑。試驗研究表明玉米根系的PPO和POD之間相關(guān)性較強(qiáng),且抗病品種的相關(guān)性強(qiáng)于感病品種,說明抗病品種能夠充分發(fā)揮這兩種酶的協(xié)同作用,提高自身的保護(hù),減輕毒素的毒害作用。
苯丙氨酸解氨酶(PAL)是苯丙烷類代謝的關(guān)鍵酶,參與植物合成抗病有關(guān)的生化物質(zhì),如綠原酸、黃酮類、生物堿、植物保衛(wèi)素和細(xì)胞結(jié)構(gòu)屏障物質(zhì)(木質(zhì)素)等,能有效地阻止病原菌的擴(kuò)展[15]。受到病原菌侵染后,抗病品種PAL活性提高比感病品種的幅度大,激活酶峰值出現(xiàn)的毒素濃度低、峰值高。有研究表明,利用馬鈴薯晚疫病菌侵染或病原菌毒素處理,馬鈴薯的PAL活性與品種抗病性成正相關(guān)[16]。試驗中,串珠鐮刀菌毒素能激活PAL,從而有利于木質(zhì)素、植物保衛(wèi)素、酚類和酮類等抑菌物質(zhì)的合成,有利于限制病原菌侵入擴(kuò)展或抵抗毒素的毒害。
串珠鐮刀菌毒素對玉米的抗病、感病品種根系3種酶的作用存在差異,表現(xiàn)出玉米抗病、感病品種對毒素的忍耐能力不同,這為利用毒素篩選玉米抗病基因奠定了基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
[1] 彭宇,張春蘭,沈其榮,等.鹽脅迫下兩種外源酚酸對玉米種子萌發(fā)及幼苗體內(nèi)某些酶活性的效應(yīng)[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2003, 26(1):33-36.
[2] NIREBERG H I , ODONNELL K. New Fusarium species and combination within the Gibberella fujikuroi species complex [J]. Mycologia,1998,90(3):434-458.
[3] 石曉榕,白建法,白麗.串珠鐮刀菌毒素對玉米胚根抑制作用的研究[J].植物保護(hù)學(xué)報,1994,21(3):243-247.
[4] 劉正坪,胡俊.茄子黃萎病菌毒素對茄子體內(nèi)幾種酶活性的影響[J].華北農(nóng)學(xué)報,2003,18(2):70-73.
[5] 田雪亮,陳錫嶺.玉米苗枯病抗性鑒定方法的改進(jìn)[J].湖北農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,45(5):599-601.
[6] 陳捷,藺瑞明,高增貴,等.玉米孢葉病菌毒素對寄主防御酶系活性的影響及誘導(dǎo)抗性效應(yīng)[J].植物病理學(xué)報,2002,32(1):43-48.
[7] KOUKO L J,CONNE E.The metabolism of aromatic compounds in higher plants[J]. Journal of Biological Chemistry,1996, 236:2692-2698.
[8] 陳捷.植物病理生理學(xué)[M].沈陽:遼寧科學(xué)技術(shù)出版社,1994.
[9] CHEN C Q,B?魪LANGER R,BENHAMOU N,et al. Defense enzymes induced in cucumber roots by treatment with plant growth-promoting rhizobacteria(PGPR) and Pythium aphanidermatum[J]. Physiological and Molecular Plant Pathology,2000, 56:13-23.
[10] 李穎章.黃萎病菌毒素誘導(dǎo)棉花愈傷組織中POD、SOD活性和PR蛋白的變化[J].中國農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2000,5(3):73-79.
[11] 蔣益虹.百合褐變與多酚氧化酶和過氧化物酶活性關(guān)系的研究[J].浙江大學(xué)學(xué)報(農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版),2003,29(2):518-522.
[12] VANGHN K C.Polyphenol oxidase:the chloroplast oxidase with no established function[J].Physial Plant,1988,72:659-665.
[13] 張福平,李秋紅.溫度對黃皮果實(shí)PAL、POD和PPO活性的影響[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2008,34(11):69-71.
[14] 張俊華,崔崇士.不同抗性南瓜品種感染Phytophthora capsic病菌后幾種酶活性測定[J].東北農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2003,34(2):124-128.
[15] 翟彩霞,馬春紅,秦君,等.植物誘導(dǎo)抗病性的常規(guī)鑒定——相關(guān)酶活性變化與誘導(dǎo)抗病性的關(guān)系[J].中國農(nóng)學(xué)通報,2004,20(5):222-224.
[16] 李惠霞, 王蒂.馬鈴薯晚疫病抗性反應(yīng)中木質(zhì)素及防御酶活性的變化[J]. 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2006,41(3):52-56.