周顯玉 綜述 楊軍 審校
Yannas于1980年首次提出真皮替代物的概念[1]。此后,諸多學(xué)者對真皮替代物的作用機(jī)制、設(shè)計(jì)原則及形式、應(yīng)用范圍等進(jìn)行了廣泛的研究[2-4]。同自體組織移植相比,真皮替代物在燒傷重建外科領(lǐng)域顯示了獨(dú)特的性能與廣闊的前景,但是存在創(chuàng)基血管延遲或難以長入真皮的缺陷。
商業(yè)化皮膚替代品可按其成分、應(yīng)用范圍、性質(zhì)等屬性進(jìn)行分類,其中真皮替代物主要包括Integra、Alloderm、Dermagraft、TransCyte 及 Permacol等[5-6]。
真皮替代物具備良好的細(xì)胞貼附性和生物相容性,可以利用其支架作用構(gòu)建皮膚、脂肪、軟骨、骨和角膜等[7-8]。真皮替代物修復(fù)皮膚缺損,技術(shù)簡單,對機(jī)體的創(chuàng)傷小,無毒性、抗原性小、易黏附、可降解、炎癥反應(yīng)小、可抵抗創(chuàng)面膠原酶的消化、創(chuàng)面覆蓋時(shí)便于應(yīng)用和控制,是良好的支架材料[9-10]。
上世紀(jì)末,隨著細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)和組織工程技術(shù)的發(fā)展,各種真皮替代物已廣泛應(yīng)用于燒傷、慢性潰瘍、鼻部重建和唇擴(kuò)大術(shù)中[11]。
真皮替代物修復(fù)組織缺損常分兩步進(jìn)行,初期以真皮替代物移植創(chuàng)面,待肉芽組織長入并完全取代需2~3周時(shí)間[12];二期在真皮表面移植自體斷層皮片,如果初期創(chuàng)面閉合較理想,可提前進(jìn)行二期的自體皮片移植[12]。對于ADM(Acellular dermal matrix),近年來發(fā)現(xiàn)運(yùn)用一步法(移植脫細(xì)胞真皮基質(zhì)的同時(shí)移植自體斷層皮片)臨床效果與兩步法無明顯差異,多數(shù)學(xué)者現(xiàn)傾向于一步法的治療[13]。
組織創(chuàng)傷及缺損的修復(fù)在未來仍將是一個(gè)重大的醫(yī)療問題,特別是慢性創(chuàng)傷,常常導(dǎo)致組織功能缺失[14-15]。各種皮膚替代品、細(xì)胞因子和合成的脫細(xì)胞基質(zhì)的應(yīng)用越來越受到關(guān)注,而真皮替代物移植后血管化的研究也開展地愈加頻繁。
單純真皮替代物修復(fù)各種原因引起的皮膚缺損時(shí),創(chuàng)基血管長入真皮替代物并建立血供的時(shí)間因真皮材質(zhì)、缺損部位及大小、缺損程度、受區(qū)血管大小等因素而異。一般移植后第3天即有血管化跡象,4周以后真皮替代物多能完全被肉芽組織取代,新生血管基本穩(wěn)定[16-20]。
真皮替代物真正建立局部血液循環(huán)至少需要10~15 d[16],由于上皮組織需從上皮-真皮交界處的毛細(xì)血管持續(xù)獲取營養(yǎng),這個(gè)時(shí)間明顯超過了上皮的缺血耐受時(shí)間(超過1周即可出現(xiàn)上皮的壞死、脫落)。因此,促進(jìn)毛細(xì)血管的生長及血供的建立是非常重要的。
Yao于1981年首次提出預(yù)構(gòu)皮瓣的概念[21],Walton等于1987年首次將動(dòng)物體內(nèi)穩(wěn)定血管與生物活性材料在體內(nèi)構(gòu)建人工合成的帶蒂血管組織,再延遲與自體斷層皮片共同修復(fù)創(chuàng)面缺損[22-24]。此后,單純真皮替代物移植的研究日趨減少,以真皮替代物、細(xì)胞培養(yǎng)及細(xì)胞因子為基礎(chǔ)的復(fù)合實(shí)驗(yàn)研究逐漸興起。
真皮成纖維細(xì)胞在皮膚組織的再生中起關(guān)鍵作用,其在損傷部位早期出現(xiàn)并迅速增生,部分分化為肌成纖維細(xì)胞,通過調(diào)控Ⅰ型膠原、Ⅳ型膠原、彈力蛋白和層黏連蛋白等基質(zhì)的定位、表皮分化和真皮再生,來加速創(chuàng)傷愈合[25-28]。Kazutaka等在真皮替代物中加入體外培養(yǎng)的成纖維細(xì)胞,修復(fù)大鼠全厚皮片缺損,10 d后活檢顯示創(chuàng)面的毛細(xì)血管密度增加;成纖維細(xì)胞、內(nèi)皮細(xì)胞和血小板源性創(chuàng)傷愈合因子三者同時(shí)配合真皮替代物治療,第2天真皮替代物周圍即開始生長毛細(xì)血管,第5天即發(fā)現(xiàn)真皮層下毛細(xì)血管增多,約7~10 d血管開始長入真皮膠原[29]。
隨著以細(xì)胞為基礎(chǔ)的轉(zhuǎn)基因技術(shù)的發(fā)展,成纖維細(xì)胞可使真皮替代物移植后過度表達(dá)血管內(nèi)皮生長因子,促進(jìn)新血管的生成,進(jìn)而更好地與受區(qū)部位的血管網(wǎng)吻合[30-32],縮短真皮替代物的血管化時(shí)間。
3.3.1 血管內(nèi)皮生長因子
血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)是強(qiáng)有力的促血管生成因子,能夠刺激血管內(nèi)皮細(xì)胞的有絲分裂和血管的發(fā)生,提高單層內(nèi)皮的通透性。根據(jù)mRNA不同的剪切方式,VEGF至少產(chǎn)生 5種不同的蛋白形式,其中 VEGF121、VEGF145、VEGF165是分泌型可溶性蛋白,直接作用于血管內(nèi)皮細(xì)胞,促進(jìn)其增殖。
生理狀態(tài)下VEGF的半衰期為30~45min,缺血條件下其生物活性可延長至6~8 h[30]。VEGF能夠促進(jìn)血管的再生、增強(qiáng)血流灌注,慢性缺氧模型實(shí)驗(yàn)中可顯著提高組織、皮瓣的活力[31-32]。大鼠管狀帶蒂皮瓣模型研究顯示,VEGF對斷蒂后皮瓣遠(yuǎn)端皮膚成活面積具有積極的影響,VEGF能夠促進(jìn)受區(qū)營養(yǎng)性血管的生長,加強(qiáng)受區(qū)與供區(qū)血管的新生與建立,縮短皮瓣轉(zhuǎn)移的時(shí)間[33]。大鼠腹直肌肌皮瓣(TRAM)缺血-VEGF局部應(yīng)用模型研究發(fā)現(xiàn),VEGF能夠促進(jìn)皮瓣血管的再生,提高皮瓣的活力[34-35]。
VEGF表達(dá)于正在形成中的血管,其受體只表達(dá)于內(nèi)皮細(xì)胞,在缺血缺氧及血管破壞的情況下VEGF表達(dá)增加;實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型研究發(fā)現(xiàn),VEGF還可以誘導(dǎo)生理性血管的生成,增加血管的滲透功能。目前,人源性重組VEGF已應(yīng)用于臨床和相關(guān)動(dòng)物實(shí)驗(yàn),其作用機(jī)理、應(yīng)用領(lǐng)域及范疇需進(jìn)一步地研究論證。
3.3.2 堿性成纖維細(xì)胞生長因子
堿性成纖維細(xì)胞生長因子(bFGF)是目前已知的促血管生成作用最強(qiáng)的細(xì)胞因子之一,也是間充質(zhì)細(xì)胞和神經(jīng)外胚層強(qiáng)有力的分裂原。它能夠影響細(xì)胞的分化和黏附,促進(jìn)細(xì)胞遷移,誘導(dǎo)胚胎發(fā)育過程中的中胚層形成[36-37],刺激成纖維細(xì)胞和毛細(xì)血管內(nèi)皮管腔的形成,增加膠原酶和結(jié)締組織的合成,促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞遷移到膠原基質(zhì)中[38],從而改變真皮替代物的塑形。
由于bFGF在組織內(nèi)半衰期短(自然半衰期為9 h,8 h后總量僅為原來的20%),利用緩釋物質(zhì),如明膠微球包裹bFGF與真皮替代物配合治療,比單純局部使用bFGF效果更好[39]。
外膠原支架的培養(yǎng)研究中發(fā)現(xiàn),bFGF能夠加速毛細(xì)血管的形成,促進(jìn)創(chuàng)面的愈合。小鼠耳微循環(huán)模型證實(shí)了bFGF在缺氧狀態(tài)下更能促進(jìn)毛細(xì)血管的生長和新血管的生成,并增加原血管的總長[40]。該結(jié)果對于真皮替代物移植有啟發(fā)性作用,絕大多數(shù)創(chuàng)面在植皮前面臨著不同程度的血供受損與缺氧,bFGF輔助治療將有助于真皮替代物快速建立血供,促進(jìn)創(chuàng)面的短期恢復(fù)。
利用bFGF在皮下預(yù)構(gòu)皮瓣,3 d內(nèi)血管蒂及皮膚周圍小血管即有新血管形成,第5天血管蒂與真皮下血管建立聯(lián)系,移植后1周掀起皮瓣,以bFGF處理,可明顯延長成活時(shí)間[41-42]。
bFGF聯(lián)合真皮替代物治療膠原病、糖尿病等引起的慢性創(chuàng)面,效果顯著。在臨床上,Masaki等聯(lián)合應(yīng)用真皮替代物和bFGF修復(fù)長期類固醇治療后結(jié)締組織頑固性潰瘍,創(chuàng)面均完全愈合,隨訪2年復(fù)發(fā)率為0[43]。
實(shí)驗(yàn)研究顯示,bFGF聯(lián)合其他生長因子如上皮生長因子(EGF)或血小板源生長因子(PDGF)等,治療效果有疊加作用。由于其半衰期短,如何延長其作用時(shí)間,例如進(jìn)行系統(tǒng)性管理或緩釋物質(zhì)包裹等,是一項(xiàng)技術(shù)難點(diǎn)。
3.3.3 轉(zhuǎn)化生長因子
轉(zhuǎn)化生長因子(β-TGF)是目前已知與瘢痕形成關(guān)系最密切、最具代表性的細(xì)胞因子,其通過與細(xì)胞表面相應(yīng)的受體結(jié)合,調(diào)節(jié)細(xì)胞的增殖分化、胚胎發(fā)育、傷口愈合和血管的生成。通過實(shí)驗(yàn)皮下預(yù)置三維模型替代物如聚酯海綿、聚四氟乙烯(PTFE)[44]、聚乙烯醇泡沫板[45]和 Matrigel[46](一種富含基膜組織的細(xì)胞外基質(zhì))等,局部輔助應(yīng)用β-TGF因子,證實(shí)β-TGF是一種血管生成的強(qiáng)力誘導(dǎo)因子。Michael[47]在前人的研究基礎(chǔ)上,闡述了β-TGF的分類、作用機(jī)制、分子生物學(xué)效應(yīng)及對血管生成作用的影響,揭示血管生成是一個(gè)復(fù)雜的多分子通路調(diào)控、多細(xì)胞因子參與的過程,其中β-TGF對血管的生成發(fā)揮著極其重要的作用。而通過定量檢測β-TGF受體來間接反應(yīng)新生毛細(xì)血管的增生狀態(tài),已是廣為認(rèn)可的一種有效手段。
3.3.4 基質(zhì)細(xì)胞衍生因子
基質(zhì)細(xì)胞衍生因子-1(SDF-1)持續(xù)表達(dá)于包括皮膚、骨髓基質(zhì)細(xì)胞、骨髓內(nèi)皮細(xì)胞在內(nèi)的多種組織當(dāng)中,通過配體-受體方式與CXCR4作用,在白細(xì)胞、造血干細(xì)胞的遷移、歸巢及內(nèi)皮細(xì)胞的調(diào)節(jié)活動(dòng)中發(fā)揮重要功能[48]。最近研究表明,在肉芽組織早期階段,SDF-1在轉(zhuǎn)錄和翻譯水平同時(shí)下調(diào),創(chuàng)面分泌的腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白介素-1(IL-1)、干擾素-γ(INF-γ)等細(xì)胞因子均可降低成纖維細(xì)胞中SDF-1的表達(dá)。
大鼠實(shí)驗(yàn)研究SDF-1對真皮替代物Tegaderm覆蓋全厚皮片缺損的作用效果。術(shù)后18 d檢測結(jié)果顯示,SDF-1能夠促進(jìn)角質(zhì)形成細(xì)胞的增殖和瘢痕的愈合,減少傷面收縮[49]。裸鼠實(shí)驗(yàn)研究內(nèi)皮祖細(xì)胞介導(dǎo)SDF-1對血管形成的作用時(shí)發(fā)現(xiàn),SDF-1能夠增加缺氧組織的血流灌注和毛細(xì)血管密度[50]。利用生物性可降解材料殼聚糖或PGA作為緩釋物質(zhì)包裹SDF-1作用于動(dòng)物模型創(chuàng)面,SDF-1作為趨化因子能夠觸發(fā)間質(zhì)干細(xì)胞的歸巢和遷移,后者既可分化為包括成纖維細(xì)胞在內(nèi)的多種皮膚細(xì)胞,還可以通過影響CD34+分子的增殖和遷移,來誘導(dǎo)體內(nèi)血管的形成,創(chuàng)面缺損修復(fù)效果明顯[51]。
內(nèi)皮祖細(xì)胞(EPCs)持續(xù)表達(dá)SDF-1的受體CXCR4,SDF-1主要通過介導(dǎo)EPCs的遷移、聚集,促進(jìn)損傷部位血管的再生。目前,大部分的實(shí)驗(yàn)研究主要集中在SDF-1促進(jìn)祖細(xì)胞、干細(xì)胞的遷移、歸巢方面,SDF-1因子與真皮替代物聯(lián)合治療對各種原因引起的皮膚慢性創(chuàng)傷、皮膚缺損、骨外露等的治療具有重要意義。
減活腺病毒或質(zhì)粒介導(dǎo)VEGF、β-TGF或PDGF等細(xì)胞因子的研究顯示了生物載體介導(dǎo)細(xì)胞因子的基因治療具有廣闊的前景。
表達(dá)VEGF或β-TGF的E1/E3減活腺病毒協(xié)同真皮替代物修復(fù)創(chuàng)面缺損,4周后組織學(xué)、微血管造影等觀察發(fā)現(xiàn),皮瓣組織局部血流灌注顯著提高,血管分布面積明顯增大,皮瓣遠(yuǎn)端皮膚的壞死面積明顯降低[52-53];表達(dá)PDGF或VEGF的質(zhì)粒修復(fù)動(dòng)物模型全厚缺損創(chuàng)面,皮片表面光滑有彈性,抗磨擦性強(qiáng),毛細(xì)血管分布多且均勻,新形成血管的數(shù)量增加,真皮層形成速度加快;RT-PCR及蛋白印跡發(fā)現(xiàn)無論是在mRNA還是蛋白質(zhì)水平上,與血管生成相關(guān)的因子VEGF、CD31+及平滑肌肌動(dòng)蛋白(a-SMA)的表達(dá)均顯著升高[54]。
細(xì)胞因子局部應(yīng)用時(shí),存在組織原位持續(xù)作用時(shí)間短的缺點(diǎn),生物載體介導(dǎo)細(xì)胞因子的基因治療方法不僅可以克服細(xì)胞因子初始治療的高劑量用藥問題,同時(shí)也避免了因半衰期短致使每日重復(fù)給藥的刺激,是基因工程技術(shù)的一大進(jìn)展,通過局部持續(xù)、過量表達(dá)相應(yīng)的細(xì)胞因子,加強(qiáng)了局部的血流灌注和血管生成,加速了皮瓣的成活及成熟,是一項(xiàng)值得期待、推廣的基因工程技術(shù)。
脂肪干細(xì)胞(ASCs)和骨髓間質(zhì)干細(xì)胞(MSCs)具有多項(xiàng)分化潛能,不同微環(huán)境下能夠分化為脂肪、骨、軟骨、肌腱等多種細(xì)胞,在體外穩(wěn)定增殖且衰亡率低,具有來源廣泛、取材容易、體內(nèi)儲(chǔ)備量大、少量組織即可獲得大量干細(xì)胞等優(yōu)點(diǎn),逐漸成為近年來新的研究熱點(diǎn)之一。許多學(xué)者已經(jīng)開始利用干細(xì)胞治療糖尿病、周圍動(dòng)脈炎、結(jié)締組織疾病及腫瘤術(shù)后放療等原因引起的皮膚難治性潰瘍,取得了良好的療效。
絲裂霉素C建立的大鼠難治療潰瘍模型中,用ASCs協(xié)同真皮替代物修復(fù)創(chuàng)面,1~2周后發(fā)現(xiàn)ASCs能夠促進(jìn)肉芽組織、毛細(xì)血管和上皮化的形成,加速創(chuàng)傷的愈合[55-57];鏈脲霉素構(gòu)建的小鼠糖尿病模型中,MSCs與真皮替代物共同修復(fù)全厚缺損,7 d后創(chuàng)傷面積顯著減小,血管內(nèi)皮細(xì)胞標(biāo)志物CD31+表達(dá)明顯增加[58-59];而膠原基質(zhì)與MSCs聯(lián)合修復(fù)小鼠皮膚缺損微循環(huán)模型中,術(shù)后第3、5、7天觀察發(fā)現(xiàn),應(yīng)用MSCs治療的皮膚毛細(xì)血管密度顯著高于對照組,臨床上運(yùn)用這種方法已成功治愈1例傳統(tǒng)方法治療1年仍未愈合的創(chuàng)面[60],充分展示了干細(xì)胞治療的廣闊前景。
Anne等總結(jié)關(guān)于MSCs治療創(chuàng)傷愈合的研究成果,列舉每篇成果的動(dòng)物模型、MSCs應(yīng)用方法、機(jī)制和結(jié)局,提示MSCs能夠通過促進(jìn)上皮化、肉芽組織的形成和血管生成,加速創(chuàng)面的愈合[61]。骨髓間質(zhì)干細(xì)胞體外培養(yǎng)的真皮層成纖維細(xì)胞不僅與正常的成纖維細(xì)胞相近,而且微環(huán)境產(chǎn)生的細(xì)胞因子還能調(diào)控膠原的沉著,真皮層在形態(tài)上更接近正常[62]。
干細(xì)胞的多向分化潛能及調(diào)控機(jī)制是再生醫(yī)學(xué)的一個(gè)重要課題,而將其合理地應(yīng)用到整復(fù)外科的實(shí)踐當(dāng)中去,將具有傳統(tǒng)治療方法無可比擬的優(yōu)勢。
上世紀(jì)80年代,Yannas等就對真皮替代物基質(zhì)孔徑大小影響其血管化的問題進(jìn)行了相關(guān)研究;Andrej在2005年利用PEGT/PBT材料作為真皮基質(zhì)替代物移植到大鼠身上,研究其不同孔徑在不同時(shí)間段對新血管生成的影響,結(jié)果顯示,孔徑較大的真皮移植后第7天,在移植部位即有新生血管生成,并且在3個(gè)不同的時(shí)間段血管化程度均大于孔徑較小的[63]。
真皮替代物孔徑直徑過小會(huì)阻礙細(xì)胞、血管、細(xì)胞因子等的滲透,過大則達(dá)不到覆蓋的目的,失去了細(xì)胞、血管支架的作用。一定范圍孔徑大小的真皮替代物有利于創(chuàng)面基部血管的長入,進(jìn)而加速血管化的進(jìn)程。
除以上因素,細(xì)胞因子中血小板源生長因子(PDGF)能夠刺激停滯于G0/G1期的成纖維細(xì)胞、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞、平滑肌細(xì)胞等多種細(xì)胞進(jìn)入分裂增殖周期,在組織和細(xì)胞的生長分化、免疫反應(yīng)及創(chuàng)傷愈合等方面發(fā)揮重要作用。對移植后的真皮替代物進(jìn)行高壓氧刺激和脈沖光間斷照射[53],也能促進(jìn)血管的形成。另創(chuàng)面既存知名血管的營養(yǎng)血管在缺氧缺血情況下更易生發(fā)出新的血管,加速真皮替代物的血管化進(jìn)程。真皮替代物在血運(yùn)豐富的部位如頭皮、顏面部等,亦較其他血運(yùn)相對差的部位更易建立血供。
真皮替代物在燒傷重建外科領(lǐng)域發(fā)揮了巨大的作用,但其發(fā)展運(yùn)用到現(xiàn)在,尚不能夠完全取代正常的皮膚組織。與自體皮片移植相比,真皮替代物的血管化進(jìn)程仍明顯偏慢;而在臨床上,由于病人體質(zhì)、病情狀況、醫(yī)院制度等因素的影響,血管化時(shí)間往往還要長于實(shí)驗(yàn)研究的結(jié)果。組織修復(fù)是一種多細(xì)胞、多因子、多水平調(diào)控的過程,組織器官如果缺乏正常的血供,會(huì)產(chǎn)生一系列病理性改變,包括水腫、循環(huán)障礙、感染,甚至局部壞死。真皮替代物作為異體物質(zhì)修復(fù)組織缺損更是不得不面對這一難題,弄清組織修復(fù)的機(jī)理,調(diào)控組織修復(fù)的過程,同時(shí)形成成熟的監(jiān)控監(jiān)測技術(shù),是促進(jìn)真皮替代物在整復(fù)外科領(lǐng)域中更好發(fā)展的成功保障。
基因微矩陣、蛋白質(zhì)組學(xué)與非病毒性基因嵌合、干細(xì)胞移植等技術(shù)的有機(jī)結(jié)合,是未來更好地研發(fā)血管化真皮替代物的方向;而如何有效地將組織再生過程中參與炎癥反應(yīng)、組織生成的細(xì)胞及細(xì)胞因子加以調(diào)控管理,促進(jìn)血管的再生及血運(yùn)的重建,是當(dāng)今再生醫(yī)學(xué)和整復(fù)外科領(lǐng)域?qū)W者們必須要面對的一大挑戰(zhàn)。
[1]Burke JF,Yannas IV,Quinby WG,et al.Successful use of a physiologically acceptable artificial skin in the treatment of extensive burn injury[J].Ann Surg,1981,194(4):413-428.
[2]Soejima K,Chen X,Nozaki M,et al.Novel application method of artificial dermis:one-step grafting procedure of artificial dermis and skin,rat experimental study[J].Burns,2006,32(3):312-318.
[3]Dantzer E,Braye FM.Reconstructive surgery using an artificial dermis(Integra):results with 39 grafts[J].Br J Plast Surg,2001,54(8):659-664.
[4]Komorowska-Timek E,Gabriel A,Bennett DC,et al.Artificial dermis as an alternative for coverage of complex scalp defects following excision of malignant tumors[J].Plast Reconstr Surg,2005,115(4):1010-1017.
[5]Metcalfe AD,Ferguson MW.Tissue engineering of replacement skin:the crossroads of biomaterials,wound healing,embryonic development,stem cells and regeneration[J].J R Soc Interface,2007,4(11):413-437.
[6]Rizzi SC,Upton Z,Bott K,et al.Recent advances in dermal wound healing:biomedical device approaches[J].Expert Rev Med Devices,2010,7(1):143-154.
[7]Tanaka Y,Sung KC,Tsutsumi A,et al.Tissue engineering skin flaps:which vascular carrier,arteriovenous shunt loop or arteriovenous bundle,has more potential for angiogenesis and tissue generation[J].Plast Reconstr Surg,2003,112(6):1636-1644.
[8]Inoue H,Murakami T,Ajiki T,et al.Bioimaging assessment and effect of skin wound healing using bone-marrow-derived mesenchymal stromal cells with the artificial dermis in diabetic rats[J].J Biomed Opt,2008,13(6):1-10.
[9]楊軍,章一新,王丹茹,等.脫細(xì)胞異體真皮與自體刃厚表皮復(fù)合移植的應(yīng)用[J].上海交通大學(xué)學(xué)報(bào),2008,28(1):84-87.
[10]杜鳴,劉偉,曹誼林,等.脫細(xì)胞真皮基質(zhì)重建表皮的臨床應(yīng)用研究[J].中國臨床康復(fù)雜志,2003,7(11):1686-1687.
[11]Soejima K,Chen X,Nozaki M,et al.Novel application method of artificial dermis:one-step grafting procedure of artificial dermis and skin,rat experimental study[J].Burns,2006,32(3):312-318.
[12]Hatanaka K,Sato S,Saitoh D,et al.Photoacoustic monitoring of granulation tissue grown in a grafted artificial dermis on rat skin[J].Wound Repair Regen,2010,18(3):284-290.
[13]Rennekampff HO,Pfau M,Schaller HE.Acellular allograftdermal matrix:immediate or delayed epidermal coverage[J]?Burns,2002,28(1):100-101.
[14]Moiemen N,Yarrow J,Hodgson E,et al.Long-term clinical and histological analysis of Integra dermal regeneration template[J].Plast Reconstr Surg,2011,127(3):1149-1154.
[15]Bastidas N,Ashjian PJ,Sharma S.Acellular dermal matrix for temporary coverage of exposed critical neurovascular structures in extremity wounds[J].Ann Plast Surg,2009,62(4):410-413.
[16]Matsumoto Y,Ikeda K,Yamaya Y,et al.The usefulness of the collagen and elastin sponge derived from salmon as an artificial dermis and scaffold for tissue engineering[J].Biomed Res,2011,32(1):29-36.
[17]Wehrhan F,E Nkenke,Melnychenko I,et al.Skin repair using a porcine collagen I/III membrane vascularization and epithelization properties[J].Dermatol Surg,2010,36(6):919-930.
[18]Baynosa RC,Browder LK,Jones SR,et al.Evaluation of artificial dermis neovascularization in an avascular wound[J].J Reconstr Microsurg,2009,25(7):405-410.
[19]Burke JF,Yannas IV,Quinby WC,et al.Successful use of a physiologically acceptable artificial skin in the treatment of extensive burn injury[J].Ann Surg,1981,194(4):413-428.
[20]Auger FA,Berthod F,Moulin V,et al.Tissue-engineered skin substitutes:from in vitro constructs to in vivo applications[J].Biotechnol Appl Biochem,2004,39(Pt 3):263-275.
[21]Yao ST.Vascular implantation into skin flaps:Experimental study and clinical application:A preliminary report[J].Plast Reconstr Surg,1981,68(3):404-410.
[22]Huemer GM,Shafighi M,Meirer R,et al.Adenovirus-mediated transforming growth factor-βameliorates ischemic necrosis of epigastric skin flaps in a rat model[J].J Surg Res,2004,121(1):101-107.
[23]陳曦,譚謙,梁志為,等.血小板源性生長因子基因修飾的人工復(fù)合皮移植大鼠創(chuàng)面效果觀察[J].中華燒傷雜志,2005,21(1):33-36.
[24]Andrade SP,Fan TP,Lewis GP.Quantitative in vivo studies on angiogenesis in a rat sponge model[J].Br J Exp Pathol,1987,68(6):755-766.
[25]Erdag G,Sheridan RL.Fibroblasts improve performance of cultured composite skin substitutes on athymic mice[J].Burns,2004,30(4):322-328.
[26]Demarchez M,Hartmann DJ,Regnier M,et al.The role of fibroblasts in dermal vascularization and remodeling of reconstructed human skin after transplantation onto the nude mouse[J].Transplantation,1992,54(2):317-326.
[27]El-Ghalbzouri A,Gibbs S,Lamme E,et al.Effect of fibroblasts on epidermal regeneration[J].Br J Dermatol,2002,147(2):230-243.
[28]Murphy GF,Orgill DP,Yannas IV.Partial dermal regeneration is induced by biodegradable collagen glycosaminoglycan grafts[J].Lab Invest,1990,62(3):305-313.
[29]Soejima K,Chen X,Nozaki M,et al.Novel application method of artificial dermis:one-step grafting procedure of artificial dermis and skin,rat experimental study[J].Burns,2006,32(3):312-318.
[30]Shima DT,Deutsch U,D'Amore PA.Hypoxic induction of vascular endothelial growth factor(VEGF)in human epithelial cells is mediated by increases in mRNA stability[J].FEBS Lett,1995,370(3):203-208.
[31]Takeshita S,Rossow ST,Kearney M,et al.Time course of inceased cellular proliferation in collateral arteries after adminisration of vascular endothelium growth factor in a rabbit model of lower limb vascular insufficiency[J].Am J Pathol,1995,147(6):1649-1660.
[32]Keyger Z,Dogan T,Zhang F,et al.Effects of VEGF adminisration following ischemia on survival of the gracilis muscle flap in the rat[J].Ann Plast Surg,1999,43(2):172-178.
[33]Zhang F,Richards L,Angel MF,et al.Accelerating flap maturation by vascular endothelium growth factor in a rat tube flap model[J].Br J Plast Surg,2002,55(1):59-63.
[34]Zhang F,Fischer K,Komorowska-Timek E,et al.Improvement of skin paddle survival by application of vascular endothelial growth factor in a rat TRAM flap model[J].Ann Plast Surg,2001,46(3):314-319.
[35]Seify H,Bilkay U,Jones G.Improvement of TRAM flap viability using human VEGF-induced angiogenesis:A comparative study of delay techniques[J].Plast Reconstr Surg,2003,112(4):1032-1039.
[36]Yanon A,Klagsbrun M.Autocrine regulation of cell growth and transformation by basic fibroblast growth factor[J].Cancer Metastatis Rev,1990,9(3):191-202.
[37]Schweigerer L.Basic fibroblast growth factor as a wound healing hormone[J].Trends Pharmacol Sci,1988,9(12):427-428.
[38]王煒.整形外科學(xué)[M].杭州:浙江科技出版社,1999,439-440.
[39]Kawai K,Suzuki S,Tabata Y,et al.Accelerated wound healing through the incorporation of basic fibroblast growth factorimpregnated gelatin microspheres into artificial dermis using a pressureinduced decubitus ulcer model in genetically diabetic mice[J].Br J Plast Surg,2005,58(8):1115-1123.
[40]Frank J,Carroll CM,Aaranson K,et al.Ischemia increases the angiogenic potency of basic fibroblast growth factor(Fgf-2)[J].Microsurgery,1996,17(8):452-456.
[41]Tanaka Y,Sung KC,Fumimoto M,et al.Prefabricated engineered skin flap using an arteriovenous vascular bundle as a vascular carrier in rabbits[J].Plast Reconstr Surg,2006,117(6):1860-1875.
[42]Hickey MJ,Wilson Y,Hurley JV,et al.Mode of vascularization of control and basic fibroblast growth factor-stimulated prefabrecated skin flaps[J].Plast Reconstr Surg,1998,101(5):1296-1304.
[43]Fujioka M.Combination treatment with basic fibroblast growth factor and artificial dermis improves complex wounds in patients with a history of long-term systemic corticosteroid use[J].Dermatol Surg,2009,35(9):1422-1425.
[44]Sprugel KH,Mcpherson JM,Clowes AW,et al.Effects of growth factor in vivo.I.Cell ingrowth into porous subcutnaeous chambers[J].Am J Pathol,1987,129(3):601-613.
[45]Fajardo LF,Kowalski J,Kwan HH,et al.The disc angiogenesis system[J].Lab Invest,1988,58(6):718-724.
[46]Passaniti A,Taylor RM,Pili R,et al.A simple,quantitative method for assessing angiogenesis and anti-angiogenic agents using reconstituted basement membrane,heparin and fibroblast growth factor[J].Lab Invest,1992,67(4):519-528.
[47]Pepper MS.Transforming growth factor-beta:vasculogenesis,angiogenesis and vessel wall integrity[J].Cytokine Growth Factor Rev,1997,8(1):21-43.
[48]王承艷,苗振川,豐美福.基質(zhì)細(xì)胞衍生因子SDF及其受體CXCR4在造血干/祖細(xì)胞動(dòng)員及歸巢過程中的作用[J].中國實(shí)驗(yàn)血液學(xué)雜志,2004,12(1):115-119.
[49]Sarkar A,Tatlidede S,Scherer SS,et al.Combination of stromal cell-derived factor-1 and collagen-glycosaminoglycan scaffold delays contraction and accelerates reepithelialization of dermal wounds in wild-type mice[J].Wound Repair Regen,2011,19(1):71-79.
[50]Yamaguchi J,Kusano KF,Masuo O,et al.Stromal cell-derived factor-1 effects on ex vivo expanded endothelial progenitor cell recruitment for ischemic neovascularization[J].Circulation,2003,107(9):1322-1328.
[51]Goncalves RM,Antunes JC,Barbosa MA.Mesenchymal stem cell recruitment by stromal derived factor-1-delivery systems based on chitosan/poly(γ-glutamic acid)polyelectrolyte complexes[J].Eur Cell Mater,2012,23:249-261.
[52]Gurunluoglu R,Meirer R,Shafighi M,et al.Gene therapy with adenovirus-mediated VEGF enhances Skin flap prefabrication[J].Microsurgery,2005,25(5):433-441.
[53]Meirer R,Huemer GM,Oehlbauer M,et al.Comparison of the effectiveness of gene therapy with vascular endothelial growth factor or shock wave therapy to reduce ischaemic necrosis in an epigastric skin flap model in rats[J].J Plast Reconstr Aes Surg,2007,60(3):266-271.
[54]Guo R,Xu S,Ma L,et al.The healing of full-thickness burns treated by using plasmid DNA encoding VEGF-165 activated collagene-chitosan dermal equivalents[J].Biomaterials,2011,32(4):1019-1031.
[55]Varkey M,Ding J,TredgetEE.Differentialcollageneglycosaminoglycan matrix remodeling by superficial and deep dermal fibroblasts:Potential therapeutic targets for hypertrophic scar[J].Biomaterials,2011,32(30):7581-7591.
[56]Nambu M,Kishimoto S,Nakamura S,et al.Accelerated wound healing in healing-impaired db/db mice by autologous adipose tissue-derived stromal cells combined with atelocollagen matrix[J].Ann Plast Surg,2009,62(3):317-321.
[57]Nambu M,Ishihara M,Nakamura S,et al.Enhanced healing of mitomycin C-treated wounds in rats using inbred adipose tissuederived stromal cells within an atelocollagen matrix[J].Wound Repair Regen,2007,15(4):505-510.
[58]Hocking AM,Gibran NS.Mesenchymal stem cells:Paracrine signaling and differentiation during cutaneous wound repair[J].Exp Cell Res,2010,316(14):2213-2219.
[59]Nakagawa H,Akita S,Fukui M,et al.Human mesenchymal stem cells successfully improve skin-substitute wound healing[J].Br J Dermatol,2005,153(1):29-36.
[60]Ichioka S,Kouraba S,Sekiya N,et al.Bone marrow-impremented collgen matrix for wound?healing:experimental evaluation in amicrocirculatory model of angiogenesis,and clinical experience[J].Br J Plast Surg,2005,58(8):1124-1230.
[61]Ring A,Langer S,Homann HH,et al.Analysis of neovascularization of PEGT/PBT-copolymer dermis substitutes in balb/c-mice[J].Burns,2006,32(1):35-41.
[62]Inoue H,Murakami T,Ajiki T,et al.Bioimaging assessment and effect of skin wound healing using bone-marrow-derived mesenchymal stromal cells with the artificial dermis in diabetic rats[J].J Biomed Opt,2008,13(6):1-10.
[63]Fioretti F,Lebreton-DeCoster C,Gueniche F,et al.Human bone marrow-derived cells:An attractive source to populate dermal substitutes[J].Wound Repair Regen,2008,16(1):87-94.