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白額縱溝紐蟲(Lineus alborostratus Takakura)的線粒體基因組*

2012-01-10 09:40徐冬麗陳海霞孫世春
關(guān)鍵詞:密碼子線粒體基因組

徐冬麗,陳海霞,時(shí) 偉,孫世春

(中國海洋大學(xué)海洋生物多樣性與進(jìn)化研究所,山東青島266003)

動(dòng)物線粒體基因組通常為閉合的雙鏈環(huán)形DNA分子,結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單、母系遺傳,基因成分相對(duì)穩(wěn)定,被廣泛應(yīng)用于系統(tǒng)發(fā)育與進(jìn)化研究[1-2]。迄今,GenBank中公布了2 200多種后生動(dòng)物線粒體全基因組序列。在已記錄的約1 275種[3]紐蟲中,僅有Cephalothrix hongkongiensis[4]、Lineus viridis[5]和Paranemertes cf.peregrina[6]3種完成了線粒體基因組全序列測(cè)序。另外,Turbeville和Smith[7]報(bào)道了Cephalothrix rufifrons長(zhǎng)度為10.1 kb的線粒體DNA連續(xù)片段,Chen et al.[6]測(cè)得了Cephalothrix sp.的線粒體DNA大部分序列(有一段預(yù)測(cè)長(zhǎng)度約500 bp的非編碼區(qū)未測(cè)出)。紐形動(dòng)物線粒體基因組研究在確定紐形動(dòng)物門在后生動(dòng)物中的系統(tǒng)地位方面已經(jīng)取得了有益結(jié)果(相關(guān)研究普遍支持紐形動(dòng)物屬于真體腔冠輪動(dòng)物L(fēng)ophotrochozoa)[4-5,7],但現(xiàn)有的數(shù)據(jù)遠(yuǎn)不能滿足紐形動(dòng)物門子類群的系統(tǒng)發(fā)育分析。白額縱溝紐蟲(Lineus alborostratus Takakura,1898)(無針綱Anopla:異紐目Heteronemertea)是西北太平洋沿岸的一種常見紐蟲,本文將報(bào)道其線粒體基因組全序列,并分析其堿基組成、基因排列、t RNA二級(jí)結(jié)構(gòu)、蛋白質(zhì)編碼基因的密碼子使用特征等。目的在于為基于線粒體基因組數(shù)據(jù)的紐形動(dòng)物系統(tǒng)發(fā)育研究和紐形動(dòng)物線粒體基因組進(jìn)化研究積累數(shù)據(jù)。

1 材料與方法

1.1 基因組總DNA的提取

白額縱溝紐蟲標(biāo)本采自青島薛家島,使用D6032-01(OMEGA)試劑盒提取全基因組DNA,于-20℃保存。實(shí)驗(yàn)中所用DNA來自同一個(gè)體。

1.2 DNA擴(kuò)增和測(cè)序

首先用文獻(xiàn)報(bào)道的引物擴(kuò)增cox1、cox3、rrnS-rrn L 3個(gè)DNA片段,然后依據(jù)得到的序列設(shè)計(jì)特異性引物繼續(xù)擴(kuò)增,引物序列見表1。PCR反應(yīng)擴(kuò)增體系為:模板總DNA 0.5μL,上下游引物(10μmol/L)各1μL,HSTMReaction Mix 12.5μL,Taq DNA酶(2.5 U/μL)0.25μL,加純水補(bǔ)至25μL。PCR反應(yīng)的循環(huán)參數(shù)為:95℃預(yù)變性5 min,然后95℃變性30 s,48~54℃退火50 s,72℃延伸2 min,循環(huán)35次,最后72℃延伸10 min。擴(kuò)增的DNA片段用凝膠回收試劑盒(OMEGA)純化,與PMD18-T載體(Takara)連接后克隆,產(chǎn)物以ABI 3730測(cè)序儀測(cè)序(北京華大基因)。

1.3 序列拼接、分析

將測(cè)序得到的片段序列用Codon Code Aligner軟件進(jìn)行拼接并人工檢查,得到線粒體DNA全序列。利用t RNAScan-SE 1.21[10]網(wǎng)站服務(wù)器(http://lowelab.ucsc.edu/tRNAscan-SE/)搜索t RNA基因(得到21個(gè))并預(yù)測(cè)其二級(jí)結(jié)構(gòu),用RNAStructure 4.5[11]推測(cè)剩余的tRNA基因結(jié)構(gòu),結(jié)合RNAfold[12]查找及預(yù)測(cè)其他特殊二級(jí)結(jié)構(gòu)。利用NCBI的BLAST(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST)比對(duì)及相鄰基因的邊界確定rrn L和rrnS基因。利用DNASIS[13]識(shí)別蛋白質(zhì)編碼基因的起始密碼子和終止密碼子,并通過和相近物種的線粒體基因同源序列的比對(duì)來確定蛋白編碼基因。用DAMBE[14]和MEGA 4.0[15]軟件計(jì)算序列的堿基組成、蛋白質(zhì)編碼基因的密碼子組成及其使用頻率。

白額縱溝紐蟲線粒體基因組序列已提交到Gen-Bank,序列號(hào)為:JN234382。

表1 白額縱溝紐蟲線粒體基因組PCR擴(kuò)增引物Table 1 PCR primers used to amplify the complete mitochondrial genome of Lineus alborostratus

圖1 白額縱溝紐蟲線粒體DNA基因分布圖Fig.1 Circular representation of the mtDNA of Lineus alborostratus.

2 結(jié)果與討論

2.1 基因組構(gòu)成及結(jié)構(gòu)

白額縱溝紐蟲線粒體基因組為閉合環(huán)狀雙鏈DNA,全長(zhǎng)15 476 bp,與同屬的L.viridis(15 388 bp)相近。具有后生動(dòng)物線粒體基因組典型的基因組成,包括13個(gè)蛋白質(zhì)編碼基因(nad1-6,nad4L,cox1-3,atp6,atp8,cytb),22個(gè)t RNA基因,2個(gè)r RNA基因和1個(gè)主要的非編碼區(qū)(見圖1)。除tRNA-Thr和tRNA-Pro外,其他基因均編碼在重鏈上。本種的基因排列順序與L.viridis[5]一致,大部分基因長(zhǎng)度差異較小,差異較大的是rrn L和非編碼區(qū),分別為1241bp/1305bp和747bp/415bp。基因緊密,除前述主要非編碼區(qū)外只有總長(zhǎng)72 bp的21處基因間隔。在cox2和trn D、nad4L和nad 4基因之間分別存在2和7 bp的重疊(見表2),類似堿基重疊也見于其他紐蟲的線粒體基因組[4-6]。Boyce等[16]認(rèn)為基因間的堿基重疊促進(jìn)線粒體基因組小型化,而小型基因組復(fù)制所需時(shí)間短,具有一定的選擇優(yōu)勢(shì)。

表2 白額縱溝紐蟲線粒體基因組的基因分布Table 2 Location of genes in the mitochondrial genome of Lineus alborostratus

2.2 蛋白質(zhì)編碼基因

白額縱溝紐蟲的蛋白質(zhì)編碼基因中,nad4L與nad 4基因間存在7個(gè)堿基的重疊。這2個(gè)基因的重疊亦見于C.hongkongiensis,C.sp和L.viridis[4-6],也常見于其他動(dòng)物的線粒體基因組[17],可能nad4L/nad4間基因重疊具有一定的選擇優(yōu)勢(shì)[16]。13個(gè)蛋白質(zhì)編碼基因均以ATG為起始密碼子編碼在重鏈上(見表2,圖1)。除nad2、nad1和cytb基因使用不完全終止密碼子“T”外,其余的10個(gè)蛋白質(zhì)編碼基因均以TAG或TAA終止。不完全終止密碼子(T或TA)在動(dòng)物線粒體DNA中常見[18],通常在轉(zhuǎn)錄后的加工過程中加接多聚腺苷酸尾,形成完整TAA終止密碼子后終止翻譯[1,19]。

圖2 白額縱溝紐蟲nad4基因上的發(fā)卡結(jié)構(gòu)Fig.2 Hairpin structure in nad4 gene of Lineus alborostratus

所有蛋白質(zhì)編碼基因之間除nad4L/nad4,nad6/cytb,atp6/atp8和nad2/cox1基因外均以tRNA基因相連。這也是動(dòng)物線粒體基因組的典型特征,可能有助于t RNA三葉草結(jié)構(gòu)準(zhǔn)確地將游離的氨基酸帶到核糖體上的特定位點(diǎn)并添加到新生肽鏈的末端[19]。值得注意的是,白額縱溝紐蟲的nad4基因(9 813~11 162 bp)上有一段37 bp的序列(10 052~10 088 bp)可以形成發(fā)卡結(jié)構(gòu)(見圖2),其AT含量高達(dá)81.1%。蛋白質(zhì)編碼基因上的莖環(huán)結(jié)構(gòu)雖然也出現(xiàn)在其他紐蟲線粒體中,一般都出現(xiàn)在2個(gè)基因連接的地方,并被認(rèn)為是與多順反子的啟動(dòng)或轉(zhuǎn)錄有關(guān)[6],這種出現(xiàn)在蛋白質(zhì)編碼基因內(nèi)部的二級(jí)結(jié)構(gòu)是否具有重要生物功能有待研究。

2.3 堿基組成和密碼子使用

堿基組成的偏好性常通過偏倚度(Skewness)來描述,該指標(biāo)能夠衡量A對(duì)T和G對(duì)C的相對(duì)數(shù)量,分別以(A%-T%)/(A%+T%)和(G%-C%)/(G%+C%)來計(jì)算[20]。白額縱溝紐蟲線粒體基因組各堿基百分含量為:T(41.2%)>A(23.5%)>G(22.8%)>C(12.5%)(見表3),重鏈(H鏈)呈現(xiàn)出較強(qiáng)的T偏好(SkewAT=-0.27)和較弱的C偏好(SkewGC=0.29)。13個(gè)蛋白質(zhì)編碼基因的A+T含量為62.9%,略低于全序列的A+T含量(64.7%),這種AT偏向性與其他紐蟲相似[4-7]。密碼子第三位點(diǎn)的A+T含量高于第一位點(diǎn)和第二位點(diǎn)(見表3),反映了該位點(diǎn)在進(jìn)化過程中的選擇壓力較低,具有較高突變率[21]。所有基因中rrn L的A+T堿基含量最高(73.2%)。

表3 白額縱溝紐蟲線粒體基因組堿基組成Table 3 Base compositions of the mitochondrial genome of Lineus alborostratus

白額縱溝紐蟲線粒體基因組的密碼子使用情況見表4,13個(gè)蛋白質(zhì)編碼基因共包含3 698個(gè)密碼子(終止子除外)。氨基酸出現(xiàn)頻率最高的是Leu(14.85%),其次為Phe(10.86%),兩者都屬于疏水氨基酸,這與線粒體基因組編碼的大部分蛋白質(zhì)是跨膜蛋白相適應(yīng)。蛋白質(zhì)編碼基因偏好使用富含T、G和A的密碼子,富含T的密碼子(三聯(lián)體密碼子中至少含有2個(gè)T)出現(xiàn)1 570次,占42.35%,富含G、A、C的密碼子(三聯(lián)體密碼子中至少含有2個(gè)G、A、C)出現(xiàn)頻率分別為12.99%、10.94%和4.94%。對(duì)于多數(shù)氨基酸,以T結(jié)尾的密碼子的出現(xiàn)頻率明顯高于其他同義密碼子,如Phe(TTT,9.92%;TTC,0.94%)、Ile(ATT,4.96%;ATC,0.49%)(見表4)。同義密碼子的偏好性被認(rèn)為與沉默位點(diǎn)的選擇有關(guān),并且能夠增強(qiáng)轉(zhuǎn)錄效率[22-23]。由于同義密碼子并不改變最終的蛋白產(chǎn)物,所以對(duì)于那些頻繁被使用的密碼子的選擇性被認(rèn)為是很弱的[24]。

表4 白額縱溝紐蟲線粒體基因組中蛋白質(zhì)編碼基因的密碼子使用Table 4 Codon usage of protein-coding genes in the mitochondrial genome of Lineus alborostratus

*終止密碼子Stop codons

2.4 轉(zhuǎn)運(yùn)RNA和核糖體RNA

白額縱溝紐蟲線粒體基因組含有22個(gè)tRNA,長(zhǎng)度范圍為62~71 bp,通過t RNAScan-SE 1.21只找到21個(gè)t RNAs,另外的tRNA-Arg基因根據(jù)反密碼子,利用RNA structure 4.5軟件輔助人工預(yù)測(cè)得到(見圖3)。線粒體t RNA二級(jí)結(jié)構(gòu)中除正常的堿基配對(duì)外,還存在4處堿基錯(cuò)配,分別發(fā)生在2個(gè)tRNA-Leu的氨基酸接受臂和tRNA-Gln、tRNA-Trp的TΨC臂上。這種t RNA上的錯(cuò)配堿基在其他紐蟲線粒體基因組中均有發(fā)現(xiàn)[4-7],這些錯(cuò)配可以通過轉(zhuǎn)錄后RNA編輯來修正,并不會(huì)影響t RNA對(duì)相應(yīng)氨基酸的轉(zhuǎn)運(yùn)功能[25-27]。另外還有大量的G-T配對(duì),這在tRNA中是一種常見情況。

圖3 白額縱溝紐蟲線粒體基因組中預(yù)測(cè)的22個(gè)tRNA的二級(jí)結(jié)構(gòu)。Fig.3 Secondary structures predicted for 22 tRNAs in the mitochondrial genome of Lineus alborostratus

在其他紐蟲中有報(bào)道過缺失DHU臂的情況[5-6],在白額縱溝紐蟲的tRNA中沒有出現(xiàn)。值得注意的是,tRNA-Cys的TΨC環(huán)只有2個(gè)T堿基,這2個(gè)T堿基可能就是欠完整的TΨC環(huán)。

白額縱溝紐蟲22個(gè)t RNA基因的反密碼子與L.viridis線粒體t RNA的反密碼子完全相同。與細(xì)首屬(Cephalothrix)的3種紐蟲及P.cf.peregrina相比,只有tRNA-Ser(AGN)的反密碼子有異。tRNA-Ser(AGN)的反密碼子在白額縱溝紐蟲和L.viridis中為TCT,在其它紐蟲中為GCT。

白額縱溝紐蟲線粒體基因組中含有2個(gè)r RNA基因(rrnS和rrn L),其長(zhǎng)度分別為835和1241 bp,以同一方向編碼在重鏈上,并由tRNA-Val分隔開(見圖1)。其中rrnS長(zhǎng)度大于P.cf.peregrina(776 bp),與C.hongkongiensis、C.sp.和L.viridis(分別為838、836、833 bp)接近,rrn L的長(zhǎng)度大于P.cf.pere-grina(1 093 bp),小于C.hongkongiensis、C.sp和L.viridis(分別為1 291,1 290和1 305 bp)[4-7]。

2.5 非編碼區(qū)

基因nad3和t RNA-Ser(AGN)之間的有一段長(zhǎng)度為747 bp的非編碼區(qū)(non-coding region,NC),占基因組全長(zhǎng)的4.83%,其AT含量為65.2%。在已測(cè)序紐蟲的線粒體DNA中均發(fā)現(xiàn)了類似的非編碼區(qū),其中L.viridis非編碼區(qū)的位置與本種一致[5],C.hongkongiensis和C.sp的主要非編碼區(qū)位于tRNA-Tyr和tRNA-Cys之間(除主要非編碼區(qū)外,這2種紐蟲還具另外2個(gè)大于100 bp的非編碼區(qū))[4,6],P.perigrina則在nad 4L/nad4和tRNA-Trp/tRNASer(AGN)之間分別具有長(zhǎng)度為101和114 bp的2段非編碼區(qū)[6]。主要非編碼區(qū)的長(zhǎng)度在幾種紐蟲間變化很大,從114 bp(P.perigrina)到885 bp(C.hongkongiensis)[4-6]。與同屬的L.viridis相比,白額縱溝紐蟲長(zhǎng)出332 bp(747 bp對(duì)415 bp)[5]。由于該區(qū)域所受的選擇壓力較小,與編碼區(qū)相比具有更高水平的長(zhǎng)度和位點(diǎn)多態(tài)性,不同動(dòng)物線粒體基因組DNA大小的差異主要是由這個(gè)區(qū)域長(zhǎng)度變化造成的[28]。

非編碼區(qū)在已報(bào)道的紐蟲都存在莖環(huán)結(jié)構(gòu)[4-6],這類特殊二級(jí)結(jié)構(gòu)在大多數(shù)后生動(dòng)物中被認(rèn)為是線粒體輕鏈復(fù)制起始位點(diǎn)[29-31]。但白額縱溝紐蟲非編碼區(qū)沒有檢測(cè)到類似結(jié)構(gòu)。紐蟲線粒體DNA非編碼區(qū)AT含量普遍高于基因組AT含量,如在C.hongkongiensis為83.8%[4],在C.sp.一段389 bp的序列(非編碼區(qū)未完全測(cè)出)中更高達(dá)92.5%[6]。因此,此非編碼區(qū)也稱為AT富含區(qū)[32]。白額縱溝紐蟲非編碼區(qū)65.2%的AT含量在已測(cè)紐蟲中是最低的。此外,在白額縱溝紐蟲的非編碼區(qū)還發(fā)現(xiàn)了一些短的重復(fù)單元,如ATTTTTTA、AAAAAAT各有3個(gè)重復(fù),GGGGG有4個(gè)重復(fù)。一般來說線粒體重復(fù)單元長(zhǎng)度一般由1~數(shù)百bp不等,重復(fù)數(shù)也可以從2個(gè)到幾百不等,其產(chǎn)生機(jī)制一般認(rèn)為是由于鏈的滑動(dòng)錯(cuò)配所導(dǎo)致[33-34]。

除了這個(gè)主要的非編碼區(qū)外,白額縱溝紐蟲線粒體基因組中還存在21處長(zhǎng)度為1~12 bp的核苷酸插入?yún)^(qū),總長(zhǎng)72 bp,2處12 bp間隔分別位于cox1和tRNA-Trp、nad4和tRNA-His之間。相比L.viridis總長(zhǎng)248 bp的24處核苷酸插入[5],白額縱溝紐蟲的插入核苷酸明顯較少。

[1] Anderson S,Bankier A T,Barrell B G,et al.Sequence and organization of the human mitochondrial genome[J].Nature,1981,290(5806):457-465.

[2] Nishibori M,Shimogiri T,Hayashi T,et al.Molecular evidence for hybridization of species in the genus Gallus except for Gallus varius[J].Anim Genet,2005,36(5):367-375.

[3] Kajihara H,Chernyshev A V,Sun S C,et al.Checklist of nemertean genera and species published between 1995 and 2007[J].Spec Diver,2008,13(4):245-274.

[4] Chen H X,Sundberg P,Norenburg J L,et al.The complete mitochondrial genome of Cephalothrix simula(Iwata)(Nemertea:Palaeonemertea)[J].Gene,2009,442(1-2):8-17.

[5] Podsiadlowski L,Braband A,Struck T H,et al.Phylogeny and mitochondrial gene order variation in Lophotrochozoa in the light of new mitogenomic data from Nemertea[J].BMC Genomics,2009,10:364.doi:10.1186/1471-2164-10-364.

[6] Chen H X,Sundberg P,Wu H Y,et al.The mitochondrial genomes of two nemerteans,Cephalothrix sp.(Nemertea:Palaeonemertea)and Paranemertes cf.peregrina(Nemertea:Hoplonemertea)[J].Mol Biol Rep,2011,38:4509-4525.

[7] Turbeville J M,Smith D M.The partial mitochondrial genome of the Cephalothrix rufifrons(Nemertea,Palaeonemertea):charac-terization and implications for the phylogenetic position of Nemertea[J].Mol Phylogenet Evol,2007,43(3):1056-1065.

[8] Folmer O,Black M,Hoeh W,et al.DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates[J].Mol Mar Biol Biotechnol,1994,3(5):294-299.

[9] Boore J L,Brown W M.Mitochondrial genomes of Galathealinum,Helobdella,and Platynereis:sequence and gene arrangement comparisons indicate that Pogonophora is not a phylum and Annelida and Arthropoda are not sister taxa[J].Mol Biol Evol,2000,17(1):87-106.

[10] Lowe T M,Eddy S R.tRNAscan-SE:a program for improved detection of transfer RNA genes in genomic sequence[J].Nucleic Acids Res,1997,25(5):955-964.

[11] Reuter J S,Mathews D H.RNAstructure:software for RNA secondary structure prediction and analysis[J].BMC Bioinformatics,2010,11:129.doi:10.1186/1471-2105-11-129.

[12] Denman R B.Using RNAFOLD to predict the activity of small catalytic RNAs[J].Biotechniques,1993,15(6):1090-1095.

[13] Mandler J,Ludwig S.SUBSIS:DNASIS/PROSIS subdirectory management[J].Comput Appl Biosci,1990,6(3):291-292.

[14] Xia X,Xie Z.DAMBE:software package for data analysis in molecular biology and evolution[J].J Hered,2001,92(4):371-373.

[15] Tamura K,Dudley J,Nei M,et al.MEGA4:Molecular Evolutionary Genetics Analysis(MEGA)software version 4.0[J].Mol Biol Evol,2007,24(8):1596-1599.

[16] Boyce T M,Zwick M E,Aquadro C F.Mitochondrial DNA in the bark weevils:size,structure and heteroplasmy[J].Genetics,1989,123(4):825-836.

[17] Boore J L.Animal mitochondrial genomes[J].Nucleic Acids Res,1999,27(8):1767-1780.

[18] Clary D O,Wolstenholme D R.The mitochondrial DNA molecular of Drosophila yakuba:nucleotide sequence,gene organization,and genetic code[J].J Mol Evol,1985,22(3):252-271.

[19] Ojala D,Montoya J,Attardi G.tRNA punctuation model of RNA processing in human mitochondria[J].Nature,1981,290(5806):470-474.

[20] Perna N T,Kocher T D.Patterns of nucleotide composition at fourfold degenerate sites of animal mitochondrial genomes[J].J Mol Evol,1995,41(3):353-358.

[21] Plaisance L,Huyse T,Littlewood D T,et al.The complete mitochondrial DNA sequence of the monogenean Gyrodactylus thymalli(Platyhelminthes:Monogenea),a parasite of grayling(Thymallus thymallus)[J].Mol Biochem Parasitol,2007,154(2):190-194.

[22] Sharp P M,Matassi G.Codon usage and genome evolution[J].Curr Opin Genet Dev,1994,4(6):851-860.

[23] Duret L,Mouchiroud D.Expression pattern and,surprisingly,gene length shape codon usage in Caenorhabditis,Drosophila,and Arabidopsis[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1999,96(8):4482-4487.

[24] Dey S.Benefits of being biased![J].J Genet,2004,83(2):113-115.

[25] Lavrov D V,Brown W M,Boore J L.A novel type of RNA editing occurs in the mitochondrial tRNAs of the centipede Lithobius forficatus[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2000,97(25):13738-13742.

[26] Yokobori S,Paabo S.Transfer RNA editing in land snail mitochondria[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1995,92(22):10432-10435.

[27] Yokobori S,Paabo S.Polyadenylation creates the discriminator nucleotide of chicken mitochondrial tRNA(Tyr)[J].J Mol Biol,1997,265(2):95-99.

[28] Wolstenholme D R.Animal mitochondrial DNA:structure and evolution[J].Int Rev Cytol,1992,141:173-216.

[29] Pegoraro L,Yang Z,Samake S,et al.Sequence comparison of mitochondrial tRNA genes and origin of light strand replication in Bos taurus and Nellore(Bos indicus)breeds[J].Anim Genet,1996,27(2):91-94.

[30] Shadel G S,Clayton D A.Mitochondrial DNA maintenance in vertebrates[J].Annu Rev Biochem,1997,66:409-435.

[31] Macey J R,Larson A,Ananjeva N B,et al.Evolutionary shifts in three major structural features of the mitochondrial genome among iguanian lizards[J].J Mol Evol,1997,44(6):660-674.

[32] Zhang D X,Hewitt D M.Insect mitochondrial control region:a review of its structure,evolution and usefulness in evolutionary studies[J].Biochem Syst Evol,1997,25:99-120.

[33] Buroker N E,Brown J R,Gilbert T A,et al.Length heteroplasmy of sturgeon mitochondrial DNA:an illegitimate elongation model[J].Genetics,1990,124(1):157-163.

[34] Faber J E,Stepien C A.Tandemly repeated sequences in the mitochondrial DNA control region and phylogeography of the pikeperches Stizostedion[J].Mol Phylogenet Evol,1998,10(3):310-322.

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