陳華民, 何晨陽
(中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院植物保護(hù)研究所,植物病蟲害生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100193)
RNAi基因沉默 (RNA interference-mediated gene silencing)是由雙鏈RNA(ds RNA)產(chǎn)生的小RNA(s RNAs)(si RNA、ta-si RNA、ra-si RNAs、natsi RNA和mi RNA)引起的[1],其共同過程是作為RNAi激發(fā)子的ds RNA被Dicer酶識別后、切割成21~25個核苷酸的小干擾RNA(si RNA)片段;si RNA與靶基因mRNA的相應(yīng)序列在RNA誘導(dǎo)基因沉默復(fù)合體(RISC)上進(jìn)行結(jié)合,然后這些短的ds RNAs中的反義鏈特異性地識別互補(bǔ)mRNA的靶序列,從而在其中間部位進(jìn)行切割或翻譯抑制,從而實(shí)現(xiàn)對靶基因轉(zhuǎn)錄后或翻譯后調(diào)控。植物細(xì)胞質(zhì)、核中均可發(fā)生RNAi基因沉默[2]。
RNAi基因沉默機(jī)制主要包括:(1)s RNAs通過與靶標(biāo)序列結(jié)合,在識別的特異位點(diǎn)對序列進(jìn)行剪切,形成轉(zhuǎn)錄后的基因沉默[3];(2)s RNAs通過與靶標(biāo)序列結(jié)合,造成蛋白翻譯起始障礙,形成蛋白質(zhì)翻譯的沉默[4];(3)通過將與s RNA 同源的 DNA 區(qū)域中的胞嘧啶甲基化,形成了s RNA介導(dǎo)的DNA甲基化(Rd DM),即表觀遺傳效應(yīng)[5-7]。植物 RNAi基因沉默通常是通過剪切靶標(biāo)mRNA,使其不能作為蛋白質(zhì)翻譯的模板,從而抑制基因的表達(dá)。
由于靶基因表達(dá)需要受到精確的調(diào)控,RNAi基因沉默也需要進(jìn)行時空調(diào)控。植物體內(nèi)RNAi基因沉默/抑制通常是系統(tǒng)發(fā)生的[8-10],但在實(shí)際需要中僅沉默部分組織中特定基因,這會引起其他組織中靶基因表達(dá)的抑制。所以有必要研發(fā)和利用組織特異性啟動子、來調(diào)控基因的沉默效果。此外,基因沉默需要在時間和強(qiáng)度上的進(jìn)行調(diào)控。通過篩選不同強(qiáng)度的啟動子來控制ds RNA的表達(dá),或利用不同的同源序列來抑制靶基因,可以達(dá)到調(diào)控抑制程度的目的。
RNAi基因沉默需要ds RNA與靶基因序列結(jié)合。如何使ds RNA有效地到達(dá)靶序列所在的部位是RNAi技術(shù)的關(guān)鍵問題。通過沉默與癌癥、病毒侵染和自身免疫紊亂等疾病相關(guān)基因的表達(dá),RNAi技術(shù)已成為一種有效的疾病治療新策略。在醫(yī)學(xué)和動物疾?。ㄓ绕洳《静。┑难芯恐邪l(fā)現(xiàn),dsRNAs可以到達(dá)癌變特異部位[11-13],而目前在植物中尚未見任何類似的報(bào)道。
病毒抑制子可以與sRNA結(jié)合抑制后者的基因沉默功能[14]。對抑制子特異結(jié)合位點(diǎn)進(jìn)行修飾,使其不能與s RNA進(jìn)行正常結(jié)合,可以提高后者的沉默效率,如RHBV病毒抑制子NS3[15]。因此,研究和利用病毒抑制子結(jié)合位點(diǎn),可以有效地提高基因沉默效率。
miRNAs通過與反向互補(bǔ)的mRNAs序列結(jié)合,在RISC中進(jìn)行剪切或翻譯后抑制。研究證明mi RNAs可能比ds RNAs更為重要??梢赃m當(dāng)修飾mi RNA序列、特異性地沉默靶基因,而沉默效果不受影響。
人工設(shè)計(jì)和合成amiRNAs和ana-siRNAs可以解決RNAi脫靶效應(yīng)(非靶標(biāo)基因沉默)。與傳統(tǒng)RNAi技術(shù)相比,ami RNAs特異性更高,可以更精確地預(yù)測對潛在的非特異靶標(biāo)的影響。傳統(tǒng)RNAi技術(shù)的siRNAs前體可以形成多個5′-和3′-序列不同的小RNA,而mi RNAs前體只能形成一個特定序列的高效s RNA。因此,ami RNAs技術(shù)在更大程度上規(guī)避了對相似序列的非靶標(biāo)基因的影響。此外,ami RNAs基因沉默效果不僅依賴于自身特性,而且依賴于靶標(biāo)基因mRNAs的局部結(jié)構(gòu)[16]。因此,人工設(shè)計(jì)和合成amiRNAs時,需要特別考慮靶基因序列的結(jié)構(gòu)。
ta-siRNAs是一類內(nèi)源的sRNAs,產(chǎn)生于非編碼TAS基因介導(dǎo)轉(zhuǎn)錄的4個家族,負(fù)責(zé)轉(zhuǎn)錄后的基因調(diào)控[17]。ta-siRNAs的形成涉及21nt的siRNAs和miRNAs指導(dǎo)的切割,以miRNAs和siRNAs的序列為模板,聚合形成的次級RNA小片段。盡管ami RNAs載體的可預(yù)測性高、不易脫靶,但ata-siRNAs方法更為實(shí)用,因?yàn)樗子诙鄠€功能小RNAs序列融合進(jìn)一個載體中,從而可以創(chuàng)建具有多抗功能的轉(zhuǎn)基因植物[18]。
amiRNAs對病毒抑制子的沉默。與hp-RNA產(chǎn)生的沉默效果相比,靶向CMV抑制子2 b的amiRNA方法在瞬時表達(dá)、穩(wěn)定轉(zhuǎn)化方面效果更好[19]。靶向株系特異序列或不同株系間保守序列的轉(zhuǎn)基因植株表現(xiàn)對CMV廣譜抗性[19]。擬南芥mi R159通過修飾擬南芥mi R159的前體來靶向兩個病 毒 抑 制 子 序 列 (P69、HC-Pr o)。ami RNAP69159和amiRNA-HC-Pro159轉(zhuǎn)基因植株分別具有對TYMV和Tu MV的抗性,而表達(dá)兩者的植株表達(dá)對兩個病毒都具有很強(qiáng)的抗性[20]。
ata-siRNAs對報(bào)告基因FAD2的沉默。FAD2是擬南芥基因沉默分析的報(bào)告基因,單拷貝,表型易檢測定量分析[21]。用ata-siRNAs序列沉默F(xiàn)AD2基因,發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因植株FAD2活性水平與f ad2突變體一樣,達(dá)到了基因沉默效果[22]。
RNAi技術(shù)已經(jīng)在病原物(真菌、細(xì)菌、病毒和線蟲)基因沉默方面得到了廣泛應(yīng)用,產(chǎn)生了一批抗病性增強(qiáng)的轉(zhuǎn)基因植物。
通過表達(dá)白粉病菌致病因子Avra10的RNA同源序列,轉(zhuǎn)基因植物表現(xiàn)出對白粉病的抗性[23]。其機(jī)制是植物dsRNA分子可能進(jìn)入了病原真菌體內(nèi),從而導(dǎo)致了真菌基因的沉默(HIGS)。這一結(jié)果提供了一個基于RNAi的植物抗真菌病害遺傳改良新策略。
根癌農(nóng)桿菌iaa M和ipt基因沉默后,轉(zhuǎn)基因植物對冠癭瘤形成具有較高的抗性[24]。iaa M編碼色氨酸單加氧酶,將色氨酸轉(zhuǎn)變成生長素前體吲哚乙酰胺[25];ipt編碼產(chǎn)物促成A MP和異戊烯基焦磷酸鹽的濃縮,并形成細(xì)胞分裂素(玉米素)[26]。這兩個基因的表達(dá)是冠癭瘤形成所必需的。用靶向iaa M和ipt的RNAi載體轉(zhuǎn)化擬南芥和番茄植株,轉(zhuǎn)基因植物腫瘤形成得到明顯的抑制。
水稻條紋葉枯?。≧SV)CP、SP和CP/SP蛋白、水稻矮縮病毒(RDV)Pns12蛋白、玉米矮花葉病毒(MDMV)CP蛋白、菜豆金黃花葉病毒(BGMV)復(fù)制起始因子AC1基因沉默/抑制后,轉(zhuǎn)基因植株對病毒病抗性明顯提高[27-29]。
不同編碼基因沉默導(dǎo)致的病毒抗性是有明顯差異的,靶基因的選擇至關(guān)重要。例如RSV編碼蛋白p C3和運(yùn)動蛋白p C4沉默轉(zhuǎn)基因植株表現(xiàn)高抗,而編碼糖蛋白p C2和無結(jié)構(gòu)蛋白p4的沉默對抗性沒有影響[30]。
病毒誘導(dǎo)的基因沉默(VIGS)常受限于病毒的寄主范圍。因此,直接噴灑原核表達(dá)的si RNAs也可誘導(dǎo)植物基因沉默,如在接種病毒前5 d,噴灑辣椒輕斑駁病毒(PMMo V)和李痘皰病毒(PPV)的ds RNA,可成功誘導(dǎo)相關(guān)基因的沉默,產(chǎn)生對病毒侵染的抗性[31]。
表達(dá)根結(jié)線蟲基因ds RNA序列的煙草對根結(jié)線蟲的抗性高達(dá)95%以上[32]。表達(dá)線蟲16D10基因ds RNA序列的擬南芥抑制了線蟲蟲癭的形成、減少了蟲卵產(chǎn)生;轉(zhuǎn)基因植株對其他種線蟲也具有一定的抗性[33]。
RNAi基因沉默技術(shù)因其特異性、高效性和遺傳可操作性,已經(jīng)成為當(dāng)今植物基因功能研究和作物遺傳改良的一個重要手段,正在迅速得到廣泛的應(yīng)用。近年來,隨著研發(fā)工作的不斷深入,該技術(shù)得到了極大的提高和完善。例如利用組織特異性和誘導(dǎo)型啟動子,將使基因沉默的時空調(diào)控能力得以提高,從而使RNAi脫靶效應(yīng)降至最?。?4]。本實(shí)驗(yàn)室正在利用從水稻葉片中克隆到的、受病原細(xì)菌和信號分子誘導(dǎo)的、維管束組織特異性表達(dá)的啟動子Os BTF3-p[35],驅(qū)動 RNAi基因沉默載體(待發(fā)表)。
挖掘更多組織特異性和誘導(dǎo)型啟動子,將是加快RNAi技術(shù)在作物遺傳改良中應(yīng)用的重要任務(wù)之一。ami RNAs和ata-si RNAs的研發(fā)也加快了RNAi基因沉默技術(shù)的應(yīng)用[18]。
在與植物互作過程中,病原真菌可能通過吸器、線蟲通過口針刺吸、病毒通過RNA或DNA分子進(jìn)入、根癌農(nóng)桿菌通過T-DNA整合,與寄主植物細(xì)胞進(jìn)行核酸類物質(zhì)的分子交流。這些為進(jìn)行RNAi基因沉默提供了科學(xué)基礎(chǔ)和依據(jù)。然而,至今尚不清楚其他病原細(xì)菌與植物間是否存在核酸分子的交流。對此需要進(jìn)行深入的研究,為植物抗細(xì)菌病害改良提出新的思路。
RNAi技術(shù)需要不斷地改進(jìn)和完善才能得以充分的利用。需要不斷地鑒定和發(fā)掘病原物致病因子基因、植物感病因子基因用作RNAi靶標(biāo);構(gòu)建和設(shè)計(jì)將多個基因定位在一個RNAi載體中,有效地降低病原物變異造成的抗病性喪失的幾率,解決作物持久抗病性的改良問題。
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