肖陽,王永華,楊博*
(1.華南理工大學(xué)生物科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州 510006)(2.華南理工大學(xué)食品科學(xué)與工程學(xué)院,廣東廣州510640)(3.廣東優(yōu)酶生物制造研究院有限公司,廣東佛山 528226)
脂肪酶(EC 3.1.1.3)具有催化水解、酯化、酯交換等多種功能[1-3]和特異的底物選擇性、高效的催化效率等特性[4],在造紙、油脂加工、制藥、皮革加工等工業(yè)領(lǐng)域廣泛利用[5]。目前,大多數(shù)已報道的脂肪酶均表現(xiàn)出對sn-1和sn-3位的偏好性,只有極少數(shù)來源于南極假絲酵母(Candida antarctica)、洋蔥假單胞菌(Pseudomonas cepacia)、熒光假單胞菌(Pseudomonas fluorescens)和海洋放線菌(Streptomycessp.)W007[6]的脂肪酶表現(xiàn)出具有非區(qū)域選擇性[7]。來源于海洋放線菌(Streptomycessp.)W007的脂肪酶MAS1具有耐受甲醇及高溫等特點,可高效催化合成富含n-3 PUFA 甘油三酯[8-10]和生物柴油等[11-13]。徐婉莉等[11]利用固定化脂肪酶MAS1在叔丁醇體系中催化黑兵蠅幼蟲油甘油解形成月桂酸單甘酯,其底物轉(zhuǎn)化率最高為97.88%,月桂酸單甘酯的含量最高為70.8%。汪秀妹等[12]在真空環(huán)境下,利用固定化脂肪酶催化多不飽和脂肪酸與 sn-甘油-3-磷脂酰膽堿酯化成對人體具有多種益處的溶血卵磷脂,其sn-甘油-3-磷脂酰膽堿轉(zhuǎn)化率為 93.12%,溶血卵磷脂含量為 90.77 mol%。呂雯等[13]利用固定化脂肪酶MAS1酯化大豆油脫臭餾出物與甲醇形成生物柴油,生物柴油產(chǎn)率為97.08%。
目前,重組脂肪酶MAS1主要在畢赤酵母中進(jìn)行異源表達(dá),藍(lán)東明等[14]通過共表達(dá)PDI、HAC1和免疫球蛋白結(jié)合蛋白的策略成功使 MAS1活力提高了1.7倍,隨后通過發(fā)酵條件優(yōu)化,最終在發(fā)酵144 h時,發(fā)酵液上清中酶活力達(dá)到440 U/mL。瞿曼等[15]通過單因素實驗優(yōu)化了畢赤酵母表達(dá)MAS1的誘導(dǎo)溫度和誘導(dǎo)pH,并進(jìn)行了雙碳源流加策略的優(yōu)化,酶活力較原來提高了4.83倍。大腸桿菌表達(dá)系統(tǒng)相比畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)具有發(fā)酵周期短發(fā)酵成本低等優(yōu)點,以大腸桿菌作為脂肪酶MAS1異源表達(dá)系統(tǒng)有望滿足產(chǎn)業(yè)化應(yīng)用的不同需求,然而通過統(tǒng)計學(xué)方法進(jìn)行發(fā)酵條件優(yōu)化的研究還鮮有報道。
統(tǒng)計學(xué)方法如響應(yīng)面、正交設(shè)計[16]、神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)、支持向量機(jī)(Support Vector Machines,SVM)應(yīng)用于微生物發(fā)酵條件已證明具有十分重要的價值。名曉東等[17]用響應(yīng)面方法在搖瓶水平優(yōu)化了重組大腸桿菌產(chǎn)鹵代烷脫鹵酶培養(yǎng)基成分,優(yōu)化后的鹵代烷脫鹵酶酶活力比優(yōu)化前提高了 93.78%。Rani等[18]采用正交實驗優(yōu)化了擬根孢霉MTCC 1467產(chǎn)木聚糖酶的發(fā)酵參數(shù),優(yōu)化后木聚糖產(chǎn)率提高了 65.1%。然而微生物發(fā)酵過程是非線性的[19],響應(yīng)面、正交試驗設(shè)計等得到的線性模型擬合效果較差,而神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)、SVM等算法因具有較強(qiáng)的非線性擬合能力而在發(fā)酵條件優(yōu)化中更有價值。Sathish等[20]用神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)算法和遺傳算法(Genetic Algorithm,GA)優(yōu)化了枯草芽孢桿菌RSP-GLU產(chǎn)谷氨酰胺酶發(fā)酵條件,將谷氨酰胺酶的產(chǎn)量提高了47%。
雖然神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)算法在發(fā)酵建模領(lǐng)域被廣泛應(yīng)用,但是神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)算法仍然無法解決收斂速度慢、易陷入局部最小值等問題[21];關(guān)于神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)算法的神經(jīng)元個數(shù)的選取也沒有特定的標(biāo)準(zhǔn),因缺乏對神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)的了解,使得所建立的神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)模型出現(xiàn)缺乏泛化能力和過擬合的問題[22];神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)算法對于數(shù)據(jù)樣本的大小也有一定的要求,當(dāng)數(shù)據(jù)樣本比較小時,神經(jīng)網(wǎng)絡(luò)算法擬合效果較差[19]?;诮Y(jié)構(gòu)風(fēng)險最小化的SVM利用簡單的統(tǒng)計學(xué)理論解決了上述問題,它的非線性擬合性更強(qiáng),且更加適合小樣本數(shù)據(jù)模型的構(gòu)建[23],可通過引入最小二乘法提高了模型的訓(xùn)練速度[24],因而被廣泛應(yīng)用于數(shù)學(xué)模型的構(gòu)建和自動控制等領(lǐng)域。Zhu等[25]通過粒子群優(yōu)化(Particle Swarm Optimization,PSO)算法優(yōu)化了基于最小二乘支持向量機(jī)(Least Squares Support Vector Machines,LSSVM)構(gòu)建的海洋溶菌酶發(fā)酵模型,將優(yōu)化后的模型進(jìn)行了廣義預(yù)測控制,將酶活性提高了20%,酶產(chǎn)率提高了30%。GA基于自然選擇和遺傳學(xué)的機(jī)制,通過計算機(jī)模擬選擇、交叉和變異的過程以求解優(yōu)化問題的最優(yōu)解,是一種集概率、隨機(jī)和引導(dǎo)搜索機(jī)制的優(yōu)化算法[26]。SVM和GA的結(jié)合,可通過SVM來描述各種因素間復(fù)雜的關(guān)系,在此基礎(chǔ)上用GA找出最優(yōu)解。Gao等[27]將SVM與實數(shù)編碼遺傳算法(Real-code Genetic Algorithm,RGA)相結(jié)合,成功使發(fā)酵過程中的青霉素滴度提高了22.88%。
目前,脂肪酶MAS1已被證明可以合成多種對人體有益的成分,例如具有殺菌功效的月桂酸單甘脂[11]和對人體有多種益處的溶血卵磷脂[12]等;在清潔能源領(lǐng)域,脂肪酶MAS1也可以催化油脂產(chǎn)業(yè)的廢料高效轉(zhuǎn)化成生物柴油[13]。因此脂肪酶MAS1在未來具有十分廣泛的應(yīng)用前景,但已報道的由畢赤酵母發(fā)酵的脂肪酶MAS1產(chǎn)量較低,難以滿足下游應(yīng)用行業(yè)的需求。為了降低生產(chǎn)成本和促進(jìn)脂肪酶MAS1的產(chǎn)業(yè)化,本研究利用大腸桿菌異源表達(dá)脂肪酶 MAS1,基于Box-Behnken實驗設(shè)計得到發(fā)酵數(shù)據(jù),建立了重組大腸桿菌表達(dá)脂肪酶MAS1發(fā)酵模型。利用GA對誘導(dǎo)溫度、誘導(dǎo)pH和IPTG濃度等發(fā)酵條件進(jìn)行優(yōu)化,以獲得重組大腸桿菌高效表達(dá)MAS1的發(fā)酵條件,為重組脂肪酶工業(yè)化應(yīng)用提供研究基礎(chǔ),其建模和優(yōu)化流程如圖1所示。
圖1 MAS1發(fā)酵建模與優(yōu)化流程Fig.1 The flow chart of the MAS1 fermentation modeling and optimization
1.1.1 菌株與質(zhì)粒
重組大腸桿菌表達(dá)菌株BL21(DE3)/pET22b-MAS1由華南理工大學(xué)生物化工實驗室構(gòu)建和保藏。
1.1.2 生化試劑
酵母粉、蛋白胨購自廣東環(huán)凱生物科技有限公司;葡萄糖、磷酸二氫鉀、磷酸氫二鉀等購自國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;氨芐青霉素鈉購自生工生物工程(上海)股份有限公司;橄欖油購自上海麥克林試劑有限公司。
1.1.3 主要儀器設(shè)備
7 L發(fā)酵罐,上海保興生物設(shè)備工程有限公司;H1850R臺式高速冷凍離心機(jī),湘儀離心機(jī)儀器有限公司;SCIENTZ-ⅡD超聲波細(xì)胞粉碎機(jī),寧波新芝生物科技股份有限公司;ZHSY-50WE水浴恒溫振蕩培養(yǎng)箱,上海知楚儀器有限公司;IS-A疊加式恒溫振蕩器,蘇州捷美電子有限公司;SPX-150生化培養(yǎng)箱,中儀國科(北京)科技有限公司;UV-8000型雙光束紫外可見分光光度計,上海元析儀器有限公司。
1.1.4 培養(yǎng)基
固體培養(yǎng)基(1 L):5 g酵母粉、10 g胰蛋白胨、10 g NaCl、18 g瓊脂粉,補加終濃度為100 μg/mL氨芐青霉素鈉。
搖瓶種子液培養(yǎng)基(1 L):5 g酵母粉、10 g胰蛋白胨、10 g NaCl,補加終濃度為100 μg/mL氨芐青霉素鈉。
發(fā)酵培養(yǎng)基(1 L):10 g無水葡萄糖(單獨滅菌),11.5 g酵母粉,19.5 g蛋白胨,4 g (NH4)2SO4、0.94 g一水檸檬酸,18 g K2HPO4·3H2O,3 g KH2PO4,1.2 g MgSO4(單獨滅菌),微量元素1 mL。
微量元素溶液(1 L):2.8 g FeSO4·7H2O、1.71 g MnSO4·H2O、2.8 g CoSO4·7H2O、1.13 g CaCl2、0.2 g CuCl2·2H2O、0.14 g ZnCl2。
1.2.1 OD600檢測
將取得的發(fā)酵液用純水稀釋適當(dāng)倍數(shù),于UV-8000紫外分光光度計下測定其吸光度。
1.2.2 種子液制備方法
將保藏于-80 ℃冰箱的BL21(DE3)/pET22b-MAS1活化于含100 μg/mL氨芐抗性的LB固體培養(yǎng)基上,37 ℃過夜培養(yǎng)。接種單菌落到5 mL LB培養(yǎng)液中,37 ℃、200 r/min培養(yǎng)12 h。將上述的培養(yǎng)液按1%(V/V)的接種量接種至含有150 mL LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)至對數(shù)生長中后期,OD600=3~6。
1.2.3 發(fā)酵罐培養(yǎng)條件
7 L發(fā)酵罐裝液量為3 L,接種量為5%(V/V),分批培養(yǎng)溫度為37 ℃,通氣量為3 L/min,發(fā)酵過程中溶氧不低于20%,流加氨水調(diào)節(jié)pH值為7.0。分批培養(yǎng) 4 h后開始流加葡萄糖,葡萄糖流速控制在12.5 g/h。在對數(shù)生長期添加異丙基-β-D-硫代半乳糖苷(IPTG),發(fā)酵22 h時停止補料。誘導(dǎo)階段每3 h取樣,測定細(xì)胞濕重和酶活。誘導(dǎo)時間分別設(shè)置為對數(shù)生長前期(2 h)、對數(shù)生長中期(4 h)、對數(shù)生長后期(7 h);誘導(dǎo)溫度分別設(shè)置為 15、20、25、30和37 ℃;誘導(dǎo)pH值分別設(shè)置為6.0、6.5、7.0、7.5和8.0;IPTG終濃度分別設(shè)置為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mmol/L。
1.2.4 細(xì)胞破碎
取15 mL發(fā)酵液,于4 ℃、8 000 r/min下離心5 min,倒掉上清液。菌體用等體積 pH值 7.5的10 mmol/L磷酸鹽緩沖溶液重懸,隨后再次離心,重復(fù)兩次后,用15 mL pH值7.5的10 mmol/L磷酸鹽緩沖溶液重懸菌體,于200 W下超聲破壁15 min。將破碎液于4 ℃、8 000 r/min離心5 min,所得上清液即為MAS1粗酶液。
1.2.5 MAS1水解酶活檢測
稱取4 g橄欖油乳化液于50 mL具塞三角瓶當(dāng)中,隨后加入5 mL 20 mmol/L pH值7.0的磷酸鹽緩沖溶液,設(shè)置一個空白組和三個平行組。向空白組中加入15 mL無水乙醇,與平行組放置于65 ℃、150 r/min的水浴鍋中預(yù)熱 5 min。隨后向反應(yīng)體系中加入稀釋適當(dāng)倍數(shù)的1 mL酶液,反應(yīng)10 min,平行組分別加入15 mL無水乙醇將酶液滅活。待冷卻到室溫之后,用0.05 mol/L的NaOH溶液滴定,并記錄滴定體積。水解酶活計算方法如下:
式中:
X:樣品的酶活力,U/mL;
V1:滴定樣品所用NaOH的體積,mL;
V2:滴定空白時所消耗的NaOH的體積,mL;
c:滴定所用NaOH的體積,mL;
50:0.05 mol/L的NaOH溶液1.00 mL相當(dāng)于脂肪酶50微摩爾;
10:反應(yīng)時間,min;
n1:稀釋倍數(shù)。
1.2.6 發(fā)酵液中菌體濕重的測定
取2 mL發(fā)酵過程中的發(fā)酵液于4 ℃、12 000 r/min下離心3 min,去上清,所得菌體于分析天平上稱重,重復(fù)測三次。
1.2.7 實驗設(shè)計與預(yù)測模型的建立
本文采用R語言rsm包設(shè)計Box-Behnken實驗,采用MATLAB 2020a軟件的LIBSVM 和LIBSVMFaruto Ultimate工具箱構(gòu)建SVM模型。在構(gòu)建模型的過程中,以誘導(dǎo)pH、誘導(dǎo)溫度、誘導(dǎo)物IPTG終濃度作為自變量,以發(fā)酵液中MAS1酶活力作為因變量構(gòu)建SVM模型,使用從實驗中收集的發(fā)酵數(shù)據(jù)訓(xùn)練出該模型,以獲得BL21(DE3)/pET22b-MAS1的發(fā)酵預(yù)測模型。
1.2.7.1 BL21(DE3)/pET22b-MAS1生長曲線的繪制
將BL21(DE3)/pET22b-MAS1按方法1.2.3于37 ℃下進(jìn)行培養(yǎng),培養(yǎng)過程中不誘導(dǎo),每隔1 h取發(fā)酵液樣品,按方法1.2.1測OD600。
1.2.7.2 單因素試驗設(shè)計
以BL21(DE3)/pET22b-MAS1為出發(fā)菌株,以誘導(dǎo)溫度(15、20、25、30、37 ℃)、誘導(dǎo)pH值(6、6.5、7、7.5、8)和 IPTG 濃度(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mmol/L)為單因素進(jìn)行試驗。
1.2.7.3 響應(yīng)面實驗設(shè)計
采用R語言rsm包設(shè)計Box-Behnken響應(yīng)面實驗,以1.2.7.2三因素得到最優(yōu)水平為基礎(chǔ),設(shè)計三因素三水平試驗設(shè)計表。
表1 Box-Behnken試驗設(shè)計因素與水平Table 1 Factors and levels of Box-Behnken experiments design
1.2.7.4 SVM最優(yōu)c值和g值的確定
在SVM模型構(gòu)建過程中,有兩個參數(shù)的選擇會影響到SVM模型的精度,一個是懲罰系數(shù)c值,另一個參數(shù)為SVM徑向基核函數(shù)g值。c值過大或過小會造成模型泛化能力的減弱,g值的大小會影響到支持向量的數(shù)目,進(jìn)而影響到支持向量機(jī)的訓(xùn)練與預(yù)測的速度[28]。本研究采用了 MATLAB 2020a的LIBSVM-FarutoUltimate工具箱的SVMcgForClass函數(shù)對SVM模型的c值和g值求最優(yōu)解。為了約束尋優(yōu)范圍,將c值和g值的范圍約束在-2~2之間。
1.2.7.5 SVM模型的構(gòu)建
使用MATLAB 2020a的LIBSVM工具箱進(jìn)行模型的構(gòu)建。將Box-Behnken實驗得到的數(shù)據(jù)隨機(jī)劃分為2組,分為訓(xùn)練集和測試集。訓(xùn)練集包含12組數(shù)據(jù)用以訓(xùn)練SVM模型,測試集包含3組數(shù)據(jù)用以驗證SVM模型。其關(guān)鍵參數(shù)c和g值采用1.2.7.4得到的最優(yōu)結(jié)果。由于本研究構(gòu)建的模型為支持向量回歸模型,因此”-S”參數(shù)選擇3,p設(shè)為0.1,考慮到變量較多,故核函數(shù)選擇了徑向基核函數(shù)。
采用MATLAB 2020a的GA工具箱對上述構(gòu)建好的SVM 模型求其最優(yōu)解。遺傳算法的初始種群設(shè)置為50,交叉概率為0.8,終止代數(shù)為100,以1.2.7.5得到的SVM模型作為適應(yīng)度函數(shù),以1.2.7.2得到的單因素實驗數(shù)據(jù)所確定的誘導(dǎo)溫度、誘導(dǎo) pH值及IPTG濃度的水平作為變量范圍,其余為默認(rèn)參數(shù),通過選擇、變異、交叉操作進(jìn)行參數(shù)尋優(yōu)。
以上實驗均設(shè)置3組平行,采用Microsoft Excel 2019軟件計算所有數(shù)據(jù)的平均值和標(biāo)準(zhǔn)差。采用Origin 2018軟件作圖,R語言進(jìn)行分析,顯著性水平p<0.05。
由圖2可知,BL21(DE3)/pET22b-MAS1的對數(shù)生長前期、中期、后期分別為發(fā)酵2 h、4 h、7 h左右。
圖2 BL21(DE3)/pET22b-MAS1的生長曲線Fig.2 Growth curve of BL21(DE3)/pET22b-MAS1
Seyfi等[29]在以葡萄糖為碳源的培養(yǎng)基中用大腸桿菌Rosetta-gami B(DE3)生產(chǎn)重組蝎蛋白時,分別在對數(shù)生長前期、對數(shù)生長中期和對數(shù)生長后期進(jìn)行誘導(dǎo),結(jié)果發(fā)現(xiàn)在對數(shù)生長前期和中期蛋白含量表達(dá)不高,但在對數(shù)生長后期進(jìn)行誘導(dǎo)時,重組蝎蛋白的表達(dá)量達(dá)到最大,為 3.5 g/L。因此分別選擇了在BL21(DE3)/pET22b-MAS1的對數(shù)生長前期(2 h)、對數(shù)生長中期(4 h)和對數(shù)生長后期(7 h)添加IPTG進(jìn)行誘導(dǎo),以探究不同對數(shù)生長時期誘導(dǎo)對BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵表達(dá)MAS1的影響。
由圖3a和圖3c可知,在對數(shù)生長前期和中期進(jìn)行誘導(dǎo),最大細(xì)胞濕重分別只能達(dá)到76.31和95.33 g/L,均低于在對數(shù)生長后期誘導(dǎo)達(dá)到的最大細(xì)胞濕重141.27 g/L。同時葡萄糖的積累量隨著發(fā)酵時間的延長也在快速增長,在發(fā)酵至22 h時,在對數(shù)生長前期誘導(dǎo)和對數(shù)生長中期誘導(dǎo)時葡萄糖分別積累至38.61 g/L和28.93 g/L,可能是在對數(shù)生長前期和中期進(jìn)行誘導(dǎo)時,細(xì)胞生物量未達(dá)到足夠高的密度,部分細(xì)胞未形成完整的碳鏈骨架,此時添加IPTG會影響細(xì)胞正常的生理功能,造成細(xì)胞代謝活力下降,對葡萄糖的利用率降低,造成未代謝的葡萄糖在發(fā)酵液中大量積累。如圖3b,在對數(shù)生長后期進(jìn)行誘導(dǎo),有利于BL21(DE3)/pET22b-MAS1細(xì)胞的生長和目的蛋白的表達(dá),當(dāng)發(fā)酵至13 h,此時酶活力達(dá)到了1 733.33 U/mL,比對數(shù)生長前期和對數(shù)生長中期誘導(dǎo)分別提高了153.66%和77.47%。結(jié)果表明,在BL21(DE3)/pET22b-MAS1對數(shù)生長后期進(jìn)行誘導(dǎo)可以提高M(jìn)AS1的表達(dá)水平。
圖3 誘導(dǎo)時間對BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵過程的影響Fig.3 The effect of induction time on the fermentation process of BL21(DE3)/pET22b-MAS1
IPTG作為乳糖的類似物,在重組大腸桿菌表達(dá)外源蛋白過程當(dāng)中具有十分重要的作用。其濃度的高低可以影響到重組大腸桿菌表達(dá)外源蛋白的效率。舒暢等[30]利用大腸桿菌 BL21(DE3)發(fā)酵生產(chǎn)谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶時,分別添加終濃度為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mmol/L的IPTG進(jìn)行誘導(dǎo),結(jié)果發(fā)現(xiàn)當(dāng)IPTG濃度為0.6 mmol/L時,谷氨酰胺轉(zhuǎn)氨酶比酶活達(dá)到最大,為1.32 U/mg。本實驗在25 ℃、pH值7.0、對數(shù)生長后期誘導(dǎo)的條件下,分別添加終濃度為0.2、0.4、0.6、0.8和1.0 mmol/L的 IPTG,探究了不同誘導(dǎo)濃度對 BL21(DE3)/pET22b-MAS1表達(dá)MAS1的影響。由圖4a、4b和4c可知,隨著IPTG濃度的增大,對細(xì)胞生長的抑制作用增強(qiáng),當(dāng)IPTG濃度為1.0 mmol/L時,最大細(xì)胞濕重只達(dá)到99.81 g/L,葡萄糖積累量也隨時間的增加而迅速增長至31.41 g/L。而在0.2 mmol/L條件下,最大細(xì)胞濕重可達(dá)122.51 g/L,酶活力最高為936.67 U/mL,葡萄糖積累量呈現(xiàn)平穩(wěn)增長趨勢,發(fā)酵至22 h時,殘?zhí)橇繛?0.36 g/L。當(dāng)IPTG濃度為0.6 mmol/L時,發(fā)酵13 h酶活力達(dá)到了最大,為2 063.47 U/mL。這一結(jié)果表明IPTG誘導(dǎo)物為0.6 mmol/L有利于MAS1的表達(dá)。
圖4 IPTG濃度對于BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵過程的影響Fig.4 The influence of IPTG concentration on the fermentation process of BL21(DE3)/pET22b-MAS1
pH值作為發(fā)酵過程當(dāng)中重要的參數(shù),它可以影響到重組大腸桿菌細(xì)胞的生長和蛋白的表達(dá)。當(dāng)外部環(huán)境的pH值發(fā)生變化時會造成細(xì)胞內(nèi)部的pH值也發(fā)生改變,從而影響到細(xì)胞內(nèi)部分代謝酶的活性進(jìn)而造成細(xì)胞內(nèi)部生理狀態(tài)的改變,因此維持發(fā)酵過程當(dāng)中的pH值恒定對于發(fā)酵具有十分重要的意義[31]。Shahzadi等[32]在優(yōu)化大腸桿菌產(chǎn)纖維素酶的發(fā)酵條件時,發(fā)現(xiàn)當(dāng)誘導(dǎo)pH值大于或小于7時,重組纖維素酶表達(dá)量都會降低,可見誘導(dǎo)pH值對重組菌表達(dá)蛋白具有重要的影響。分別控制誘導(dǎo)pH值為6.0、6.5、7.0、7.5、8.0,探究了不同pH值下BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵表達(dá)MAS1的影響。由圖5a、5b和5c可知,當(dāng)誘導(dǎo)pH值為6.5時,細(xì)胞濕重和酶活力均達(dá)到最大,分別為 146.83和2 103.69 U/mL,葡萄糖的積累速率顯著慢于其他誘導(dǎo)pH值下葡萄糖的積累速率,發(fā)酵至22 h時,葡萄糖殘余含量僅為11.63 g/L。當(dāng)pH值為6.0和7.0時,最大細(xì)胞濕重分別為93.5 g/L和113.5 g/L,最大酶活力分別為688.42 U/mL和1 909.58 U/mL,均顯著低于pH值6.5條件下的最大細(xì)胞濕重和最大酶活力。于此同時pH值6.0條件下,葡萄糖快速積累,發(fā)酵至22 h時葡萄糖殘余含量為31.34 g/L。這一結(jié)果說明誘導(dǎo)pH值為6.5時更有利于BL21(DE3)/ pET22b-MAS1表達(dá)MAS1。
圖5 誘導(dǎo)pH對BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵過程的影響Fig.5 The effect of induced pH on the fermentation process of BL21(DE3)/pET22b-MAS1
溫度對于大腸桿菌的生長和外源蛋白的表達(dá)具有重要的影響,較高的溫度有利于大腸桿菌的生長,較低的溫度有利于大腸桿菌表達(dá)外源蛋白[33]。因此,常見的大腸桿菌發(fā)酵控溫工藝,多采用在生長階段維持較高的溫度,而在誘導(dǎo)階段維持較低的溫度。另外,低溫條件下誘導(dǎo)可以提高質(zhì)粒在大腸桿菌中的穩(wěn)定性[31]。Liang等[34]在探究重組大腸桿菌產(chǎn)丙酮酸氧化酶變溫發(fā)酵策略時,發(fā)現(xiàn)當(dāng)誘導(dǎo)溫度為 37 ℃時,大腸桿菌生長速度最快,但丙酮酸氧化酶活性僅為890 U/L,而誘導(dǎo)溫度分別為28 ℃和32 ℃時,丙酮酸氧化酶活性達(dá)到1 099 U/L和1 189 U/L。本研究在對數(shù)生長后期添加0.6 mmol/L IPTG、誘導(dǎo)pH維持6.5條件下,分別維持誘導(dǎo)溫度為15、20、25、30、37 ℃。由圖6b可知,最佳誘導(dǎo)溫度為20 ℃,酶活達(dá)到最高為2 011.56 U/mL。如圖6a和6c,當(dāng)溫度逐漸升高時,BL21(DE3)/pET22b-MAS1最大濕重是逐漸增長的,在25 ℃下培養(yǎng)時細(xì)胞濕重最大為126.67 g/L,但是超過 25 ℃時,最大濕重呈現(xiàn)下降的趨勢;當(dāng)誘導(dǎo)溫度為37 ℃時,最大細(xì)胞濕重僅為88.36 g/L,且葡萄糖積累的速率開始加快,發(fā)酵至22 h時,發(fā)酵液中的葡萄糖含量積累至 44.5 g/L,同時最大酶活力也僅為110.6 U/mL,可能是因為在高于 25 ℃誘導(dǎo)時BL21(DE3)/pET22b-MAS1表達(dá)蛋白質(zhì)和生長速度快,這增加了細(xì)胞的代謝負(fù)擔(dān)。Paul等[35]發(fā)現(xiàn)較高溫度下誘導(dǎo)重組大腸桿菌表達(dá)麥芽糊精葡萄糖苷酶會產(chǎn)生較多包涵體,從而導(dǎo)致大腸肝菌生長速率的下降。當(dāng)誘導(dǎo)溫度為15 ℃時,最大濕重僅為85.61 g/L,僅為20 ℃誘導(dǎo)下最大濕重的72.55%,說明誘導(dǎo)溫度過低時不利于BL21(DE3)/pET22b-MAS1的生長,發(fā)酵至22 h時,發(fā)酵液中的葡萄糖殘余含量為44.2 g/L,且最大酶活為 873.74 U/mL。這一結(jié)果說明,低溫有利于BL21(DE3)/pET22b-MAS1表達(dá)MAS1,但是溫度過低則會導(dǎo)致BL21(DE3)/pET22b-MAS1生長受到抑制并且影響到MAS1的表達(dá)。
圖6 誘導(dǎo)溫度對BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵過程的影響Fig.6 The influence of induction temperature on the fermentation process of BL21(DE3)/pET22b-MAS1
利用R語言的rsm包設(shè)計了Box-Behnken實驗方案,隨后依據(jù)Box-Behnken實驗方案得到了對應(yīng)的數(shù)據(jù)。利用MATLAB 2020a軟件的Mapminmax函數(shù)對Box-Behnken實驗方案結(jié)果進(jìn)行歸一化處理,然后用randperm隨機(jī)函數(shù)將數(shù)據(jù)集隨機(jī)分為兩組,其中測試集函數(shù)由12組實驗數(shù)據(jù)構(gòu)成,測試集由3組實驗數(shù)據(jù)構(gòu)成。通過 MATLAB 2020a軟件的 LIBSVMFarutoUltimate工具箱的SVMcgForClass函數(shù)對SVM模型的c值和g值進(jìn)行尋優(yōu),確定c值和g值分別為1.5157和0.33。隨后使用MATLAB 2020a的Libsvm工具箱構(gòu)建 BL21(DE3)/pET22b-MAS1產(chǎn) MAS1的SVM模型。由表2和表3可知,訓(xùn)練集的平均相對誤差為4.26%,測試集的平均相對誤差為3.32%,綜合訓(xùn)練集和測試集誤差來看,SVM模型預(yù)測結(jié)果與實驗結(jié)果平均相對誤差為4.07%,擬合效果較好。
表2 SVM模型訓(xùn)練數(shù)據(jù)樣本設(shè)計與實驗結(jié)果Table 2 SVM model training data sample design and experimental results
表3 SVM模型測試數(shù)據(jù)樣本設(shè)計與實驗結(jié)果Table 3 SVM model testing data sample design and experimental results
從MATLAB 2020a軟件的GA工具箱對SVM模型尋優(yōu)結(jié)果(如圖7)來看,當(dāng)?shù)?6代時,GA找到了最優(yōu)結(jié)果:BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵產(chǎn)MAS1的最佳發(fā)酵條件為誘導(dǎo)pH值6.73、誘導(dǎo)溫度22.923 ℃、誘導(dǎo)物IPTG濃度0.648 mmol/L,預(yù)測此時MAS1的酶活達(dá)到了最大為2 276.99 U/mL。
圖7 遺傳算法尋優(yōu)結(jié)果圖Fig.7 Genetic algorithm optimization result graph
對SVM和GA得到的BL21(DE3)/pET22b-MAS1發(fā)酵產(chǎn)MAS1的最佳發(fā)酵條件進(jìn)行發(fā)酵驗證,設(shè)置誘導(dǎo)pH值6.7、誘導(dǎo)溫度23 ℃、誘導(dǎo)物IPTG濃度為0.65 mmol/L,重復(fù)三次,實驗結(jié)果分別為2 310.32、2 307.44、2 330.29 U/mL。圖8的電泳結(jié)果表明了該策略具有可行性。王鮮芳等[36]將用SVM建立了谷氨酸動態(tài)時變發(fā)酵模型,用免疫遺傳算法(Immune Genetic Algorithm,IGA)對一些關(guān)鍵操作變量進(jìn)行了優(yōu)化,在發(fā)酵28 h時谷氨酸濃度達(dá)到了12.05 g/L,比未優(yōu)化前提高了29.57%。Zhang等[37]用SVM建立了以纖維素乙醇廢水為原料紅酵母發(fā)酵模型,采用 GA對SVM模型尋優(yōu),最終將生物量和脂質(zhì)分別提升至11.87和2.18 g/L。說明了SVM-GA算法可在發(fā)酵條件優(yōu)化中良好應(yīng)用。
圖8 MAS1的SDS-PAGE檢測Fig.8 SDS-PAGE detection of MAS1
本研究通過對BL21(DE3)/pET22b-MAS1產(chǎn)MAS1的發(fā)酵條件進(jìn)行模型構(gòu)建,使用 GA對三個重要的發(fā)酵參數(shù)進(jìn)行了優(yōu)化。研究結(jié)果表明,通過SVM-GA優(yōu)化后的最佳發(fā)酵條件為誘導(dǎo)pH值6.7、誘導(dǎo)溫度23 ℃、誘導(dǎo)物IPTG濃度為0.65 mmol/L,優(yōu)化后MAS1酶活力達(dá)到了2 316.02 U/mL,較優(yōu)化前提高了33.61%。本研究通過一系列的發(fā)酵條件優(yōu)化,MAS1的發(fā)酵表達(dá)水平有了明顯的提高,豐富了MAS1發(fā)酵條件優(yōu)化的手段。目前在發(fā)酵罐進(jìn)行的發(fā)酵條件優(yōu)化限于誘導(dǎo)時間、誘導(dǎo)pH、誘導(dǎo)物IPTG濃度和誘導(dǎo)溫度,后續(xù)可進(jìn)行補料策略的優(yōu)化以進(jìn)一步提升MAS1的表達(dá)水平,為實現(xiàn)MAS1的工業(yè)化應(yīng)用奠定基礎(chǔ)。