黃亞麗,李亞倬,李蕊婷,于紅紅,盧士玲
(石河子大學(xué)食品學(xué)院,新疆 石河子 832003)
新疆熏馬腸是一種自然發(fā)酵香腸,具有高蛋白水解活性和較長的成熟期,因此有利于微生物積累生物胺。酪胺是一種廣泛存在于發(fā)酵肉制品中的生物胺[1],攝入過量可能會引起偏頭痛、惡心、心血管疾病等[2-3]。歐洲食品安全局建議健康人群對酪胺的每日最大攝取量為600 mg,但服用經(jīng)典單胺氧化酶抑制劑的人群每日最多可攝取酪胺6 mg[4]。食品中細(xì)菌通過酶解酪氨酸生成酪胺,已知腸桿菌、腸道球菌、乳酸桿菌等細(xì)菌在食品發(fā)酵過程中產(chǎn)生酪胺[5-6]。研究人員發(fā)現(xiàn)產(chǎn)生酪胺的基因由編碼酪氨酸脫羧酶(tyrosine decarboxylase,tdcA)、酪氨酸/酪胺逆向轉(zhuǎn)運(yùn)體(tyrosine/tyramine antiporter,tyrP)、酪氨酸t(yī)-RNA合成酶(tyrosine t-RNA synthetases,tyrS)和Na+/H+逆向轉(zhuǎn)運(yùn)體(Na+/H+antiporter,nhaC)4 個基因組成[7],nhaC在酪胺生物合成中的作用仍未知[8]。
多酚作為一種抗菌劑具有潛在的應(yīng)用價(jià)值,可提高肉制品的質(zhì)量和安全性[9]。阿魏酸(ferulic acid,F(xiàn)A)是肉桂酸衍生物之一,是一種普遍存在于植物界的酚酸。Lemos等[10]證實(shí),F(xiàn)A可以破壞蠟樣芽孢桿菌的生物膜結(jié)構(gòu),從而抑制其生長。但FA水溶性差、光穩(wěn)定性低從而影響其利用率[11]。研究表明包封技術(shù)能夠有效保持多酚穩(wěn)定性和利用率。Kfoury等[12]使用2-羥丙基-β-環(huán)糊精(2-hydroxypropyl-β-cyclodextrin,HP-β-CD)包埋苯丙烷類化合物,顯著提高了其溶解度和光穩(wěn)定性,分別為未包埋組的14 倍和44 倍。此外,Gong Liang等[13]研究HP-β-CD包埋丁香酚的抗真菌作用模式,發(fā)現(xiàn)包埋能夠提高丁香酚在食品應(yīng)用中的穩(wěn)定性。然而,目前關(guān)于FA包合物HP-β-CD/FA對熏馬腸產(chǎn)酪胺的抑制作用,及其對產(chǎn)酪胺基因表達(dá)影響的研究鮮見報(bào)道。
本實(shí)驗(yàn)研究HP-β-CD/FA包合物對陰溝腸桿菌(Enterobacter cloacae)L63生長、基因表達(dá)和酪胺積累的影響,明確HP-β-CD/FA包合物對新疆熏馬腸中產(chǎn)酪胺途徑機(jī)制的影響,以期提高熏馬腸等發(fā)酵肉制品的安全性,為HP-β-CD/FA包合物應(yīng)用于熏馬腸及其他發(fā)酵肉制品提供一定理論依據(jù)。
陰溝腸桿菌L63(GenBank登錄號:MW386397)由石河子大學(xué)食品學(xué)院畜產(chǎn)品加工與安全控制中心實(shí)驗(yàn)室分離。
FA(反-4-羥基-3-甲氧基肉桂酸≥98%) 北京博鰲科技有限公司;HP-β-CD 上海麥克林生化試劑有限公司;丹磺酰氯、甲醇(色譜純) 美國Sigma公司;乙腈(色譜純) 賽默飛世爾科技(中國)有限公司;腦心浸液(brain heart infusion,BHI)、紫紅膽鹽葡萄糖瓊脂(violet red bile glucose agar,VRBGA)、甘露醇鹽瓊脂(mannitol salt agar,MSA)和MRS(Man Rogosa Sharpe)瓊脂培養(yǎng)基 青島海博生物技術(shù)有限公司;TRIzol試劑(MagZolTMReagent) 美國Invitrogen公司;cDNA合成試劑盒 加拿大Applied Biological Materials公司;2×S6 Universal SYBR qPCR Mix 新貝(上海)生物科技有限公司;馬肉、天然腸衣 新疆伊犁市伊卡孜有限公司。
Beta 2-8 LD plus冷凍干燥機(jī) 德國Christ公司;IX71倒置熒光顯微鏡 日本奧林巴斯株式會社;Nicolet IS10傅里葉變換紅外光譜(Fourier transform infrared spectroscopy,F(xiàn)T-IR)儀、ND-2000C超微量核酸測定儀 美國賽默飛世爾公司;H1M多功能酶標(biāo)儀美國伯騰儀器有限公司;PHS-3C pH計(jì) 上海儀電有限公司;MX3000P實(shí)時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀 美國安捷倫科技公司;LC-20AT高效液相色譜(high-performance liquid chromatography,HPLC)儀 日本島津制作所;高速冷凍離心機(jī) 美國貝克曼公司;T25均質(zhì)機(jī) 德國艾卡設(shè)備有限公司。
1.3.1 HP-β-CD/FA包合物和物理混合物的制備
采用Hsu等[14]方法,準(zhǔn)確稱取0.58 g FA和4.6 g HP-β-CD分別溶解在10 mL無水乙醇和10 mL蒸餾水中,然后將FA溶液緩慢加入HP-β-CD溶液中,搖床室溫(22~26 ℃)振蕩24 h,將獲得的澄清溶液4 ℃放置12 h。置于-80 ℃冰箱冷凍24 h,真空冷凍干燥12 h獲得固體HP-β-CD/FA包合物。
物理混合物:FA和HP-β-CD按物質(zhì)的量比1∶1置于研缽中研磨2 min,獲得均勻的混合物。
1.3.2 HP-β-CD/FA包合物的表征
1.3.2.1 微觀結(jié)構(gòu)觀察
取少量FA、HP-β-CD、HP-β-CD/FA包合物及其物理混合物分別放置在載玻片上,蒸餾水分散制成懸濁液并將蓋玻片放置在頂部,使用倒置熒光顯微鏡觀察并記錄每個樣品。
1.3.2.2 FT-IR分析
采用溴化鉀壓片法,取FA、HP-β-CD、HP-β-CD/FA包合物及其物理混合物與光譜級溴化鉀混合(2 mg KBr/200 mg樣品),每個樣品粉末研磨5 min,在20 MPa下壓制40 s,以獲得1 mm透明顆粒,置于FT-IR光譜儀中掃描樣品測定紅外光譜吸收曲線。掃描范圍4 000~400 cm-1,分辨率2 cm-1。
1.3.2.3 HP-β-CD/FA包合物和FA最低抑菌濃度的測定
使用微量肉湯稀釋法[15],采用無菌96 孔板,每孔中加入100 μL BHI肉湯,同時制備質(zhì)量濃度為100 mg/mL的HP-β-CD/FA包合物原液。將100 μL原液添加到第1行每孔中,然后從第1行每孔取100 μL與第2行相應(yīng)孔中肉湯混合,再從第2行取100 μL與第3行相應(yīng)孔肉湯混合,依次倍增稀釋至第7行(第7行每孔中取100 μL棄用)。然后每孔中加入100 μL 106CFU/mL菌液,每組3 個復(fù)孔。使用僅含菌液培養(yǎng)基、僅含HP-β-CD/FA包合物原液培養(yǎng)基以及不含HP-β-CD/FA包合物和菌液培養(yǎng)基作為對照。96 孔板在37 ℃培養(yǎng)持續(xù)24 h。目測96 孔板孔中肉湯濁度未改變的質(zhì)量濃度為最低抑菌濃度(minimal inhibitory concentration,MIC)。按相同方法測定FA的MIC。
1.3.2.4 陰溝腸桿菌L63生長量和pH值的測定
制備3 組菌液:L組:培養(yǎng)液中添加酪氨酸;L+MIC包合物組:培養(yǎng)液中添加酪氨酸和質(zhì)量濃度為MIC的HP-β-CD/FA;L+FA組:培養(yǎng)液中添加酪氨酸和質(zhì)量濃度為MIC的HP-β-CD/FA包合物中相同質(zhì)量的FA;酪氨酸添加量均為0.2 g/100 mL。每組3 個重復(fù),接入200 μL供試菌液在37 ℃下恒溫培養(yǎng),每組不添加供試菌作為陰性對照,48 h內(nèi)每4 h采集樣品一次(2 mL),測定OD600nm和pH值。
1.3.3 酪氨酸脫羧酶相關(guān)基因表達(dá)量的測定
1.3.3.1 RNA提取和cDNA合成
按照1.3.2.4節(jié)方法制備3 組培養(yǎng)物,接入供試菌后在37 ℃恒溫培養(yǎng)48 h。根據(jù)于紅紅等[16]的方法激活酪氨酸脫羧酶(tyrosine decarboxylase,TDC)基因簇的轉(zhuǎn)錄,用MagZol試劑法從陰溝腸桿菌L63中提取總RNA。純化的RNA樣品在無RNA酶的水中重浮,分別在260 nm和280 nm波長處測定吸光度,以確定RNA濃度。采用1%瓊脂糖凝膠電泳觀察條帶,以檢測RNA完整性。然后根據(jù)cDNA合成試劑盒進(jìn)行cDNA的合成。取2 μg符合要求的RNA加入2 μL AccuRT Reaction Mix(4×),加無酶水至終體積為8 μL,42 ℃孵育2 min,去除gDNA后加入2 μL AccuRT Reaction Stopper(5×),隨后加入4 μL 5×All-in-One RT MasterMix和6 μL無酶水,反應(yīng)終體積20 μL。20 ℃孵育10 min,42 ℃孵育15 min,85 ℃孵育5 min后終止反應(yīng),于冰上冷卻。
1.3.3.2 實(shí)時熒光定量PCR檢測基因表達(dá)
使用表1所列引物通過PCR分析cDNA樣本。以引物對recA-F/recA-R和tuf-F/tuf-R作為參考。反應(yīng)體系(總體積20 μL):2×S6 Universal SYBR qPCR Mix 10 μL,上、下游引物各0.4 μL和cDNA模板2 μL,加入無酶水補(bǔ)至20 μL。每次實(shí)驗(yàn)中未加cDNA模板作為陰性對照。根據(jù)公式R=2?ΔΔCt計(jì)算基因相對表達(dá)量[17]。
表1 實(shí)時熒光定量PCR所用引物Table 1 Primers used for real-time PCR
1.3.4 酪胺質(zhì)量濃度的測定
參考Lu Shiling等[21]的方法并作修改,采用HPLC法測定樣品中的酪胺質(zhì)量濃度。準(zhǔn)確稱取酪胺標(biāo)準(zhǔn)品10 mg,加入0.4 mol/L高氯酸溶液定容至5 mL,分別稀釋成質(zhì)量濃度10、20、50、100、200、400 μg/mL的標(biāo)準(zhǔn)溶液備用。按照1.3.2.4節(jié)方法制備3 組菌液樣品,并在48 h內(nèi)每4 h采集2 mL菌液,然后12 000×g離心10 min,取1 mL上清液加入200 μL 2 mol/L NaOH溶液、300 μL飽和NaHCO3溶液和2 mL 5 mg/mL丹磺酰氯溶液,35 ℃暗反應(yīng)45 min后加入100 μL氨水終止反應(yīng),然后乙腈定容至5 mL。過0.22 μm過濾器后進(jìn)行HPLC分析。檢測條件:Agilent C18柱(4.6 mm×250 mm),柱溫30 ℃,上樣體積20 μL,流動相A超純水、流動相B乙腈;按照黃笠原等[22]的程序進(jìn)行梯度洗脫。
1.3.5 HP-β-CD/FA包合物對熏馬腸中酪胺積累影響的研究
1.3.5.1 熏馬腸的制備
原料肉去除淋巴、血管、筋膜等組織,優(yōu)質(zhì)瘦肉、肥肉質(zhì)量比80∶20。在肉塊表面噴涂體積分?jǐn)?shù)75%乙醇溶液灼燒,紫外燈照射30 min滅菌。將原料肉切成邊長1~2 cm塊狀,以肉質(zhì)量計(jì),加入2.0%食鹽、2.0%白糖、0.1%味精、0.2%姜粉、0.1%八角、0.1%胡椒粉、0.15%花椒粉、0.1%五香粉和0.01%亞硝酸鈉充分混勻,再加入1%煙熏液攪拌均勻。4 ℃下腌制1 h,用灌腸機(jī)將已調(diào)味的肉粒灌入天然腸衣內(nèi),灌腸要求飽滿,過程中用牙簽扎孔,保證腸內(nèi)無空氣。
制備5 組熏馬腸:A組:空白;B組:添加質(zhì)量濃度為MIC的HP-β-CD/FA;C組:接種103CFU/mL陰溝腸桿菌L63;D組:接種103CFU/mL陰溝腸桿菌L63和質(zhì)量濃度為MIC的HP-β-CD/FA;E組:接種103CFU/mL陰溝腸桿菌L63和質(zhì)量濃度為MIC的HP-β-CD/FA包合物中相同質(zhì)量的FA。以上菌株接種量均為3%(以熏馬腸質(zhì)量計(jì)),每組3 個重復(fù)。制作完成后于恒溫恒濕培養(yǎng)箱中發(fā)酵,分別在0、3、7、14、21、28 d取樣進(jìn)行指標(biāo)測定,每個處理平行測定3 次。發(fā)酵條件如表2所示。
表2 熏馬腸的發(fā)酵條件Table 2 Fermentation conditions of smoked horsemeat sausage
1.3.5.2 微生物計(jì)數(shù)
在無菌條件下稱取10 g熏馬腸樣品加入90 mL生理鹽水,拍打機(jī)拍打20 min直至樣液在無菌生理鹽水中完全渾濁,按照Yu Honghong等[23]的方法采用平板計(jì)數(shù)法,連續(xù)稀釋后在選擇培養(yǎng)基上涂布,分別對腸桿菌科、腸球菌、乳酸菌(lactic acid bacteria,LAB)計(jì)數(shù)。
1.3.5.3 熏馬腸pH值的測定
采用無菌拍打袋稱取熏馬腸樣品10 g,加入90 mL生理鹽水,拍打機(jī)拍打20 min使樣液在無菌生理鹽水中完全渾濁,靜置沉淀后用pH計(jì)測定上清液pH值。
1.3.5.4 熏馬腸生物胺質(zhì)量濃度的測定
取5 g熏馬腸樣品加入0.4 mol/mL 20 mL高氯酸溶液后均質(zhì),于10 ℃、5 000 r/min均質(zhì)10 min,取上清液;再次重復(fù)上述操作,將上清液用乙腈定容到50 mL。取1 mL處理好的樣品液按1.3.4節(jié)方法測定酪胺質(zhì)量濃度。
所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3 次,結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差表示。使用GraphPad Prism 9.0.0軟件采用單因素方差分析和鄧肯多范圍檢驗(yàn)進(jìn)行組間顯著性差異比較,P<0.05被認(rèn)為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
經(jīng)冷凍干燥法制備的HP-β-CD/FA包合物外觀為淡粉色粉末,略有FA氣味。如圖1所示,F(xiàn)A為短柱狀晶體,而HP-β-CD呈球形結(jié)構(gòu);FA和HP-β-CD的物理混合物保留了二者原始形態(tài),物理混合后沒有發(fā)生形態(tài)變化,表明物理混合僅為疊加;而HP-β-CD/FA包合物的表面形貌與FA和HP-β-CD均不同,呈不規(guī)則塊狀結(jié)構(gòu)且變化明顯,表明包合物形成。Zhong Yuanyuan等[24]也報(bào)道了類似結(jié)果,進(jìn)一步證實(shí)HP-β-CD/FA包合物的形成。
圖1 FA(A)、HP-β-CD(B)、物理混合物(C)和HP-β-CD/FA包合物(D)的微觀圖像Fig. 1 Micrographs of FA (A), HP-β-CD (B), physical mixture (C), and HP-β-CD/FA inclusion complex (D)
如圖2所示,F(xiàn)A在3 436 cm-1處存在O—H鍵的伸縮振動、1 620~1 433 cm-1處存在C—C鍵的伸縮振動[25];此外,1 691cm-1處為芳香共軛羰基特征峰,804 cm-1和851 cm-1處的銳帶是由FA苯環(huán)上兩個相鄰氫原子引起[26]。HP-β-CD在2 931 cm-1處表現(xiàn)出明顯的C—H伸縮振動吸收峰[27],在1 155 cm-1和1 033 cm-1處表現(xiàn)出顯著的C—O伸縮振動吸收峰[24]。與單組分相比,物理混合物的FT-IR光譜沒有顯著變化,表現(xiàn)為FA和HP-β-CD特征峰的疊加。然而,HP-β-CD/FA包合物的FT-IR光譜與FA顯著不同,由于羥基數(shù)量改變,HP-β-CD/FA包合物在3 436 cm-1附近的寬峰強(qiáng)度增加[28],位于FA上1 691、1 620、1 516 cm-1和851 cm-1的特征峰發(fā)生位移且強(qiáng)度減小,而位于1 433 cm-1和804 cm-1處的峰則完全被HP-β-CD的峰掩蓋。表明FA成功進(jìn)入HP-β-CD形成包合物,這與顯微觀察結(jié)果一致。
圖2 FA、HP-β-CD、物理混合物和HP-β-CD/FA包合物FT-IR圖Fig. 2 FT-IR spectra of FA, HP-β-CD, physical mixture and HP-β-CD/FA inclusion complex
研究表明FA對革蘭氏陽性菌、革蘭氏陰性菌和酵母菌具有較強(qiáng)的抗菌活性[29],并對一些人體胃腸道菌群表現(xiàn)出強(qiáng)烈的抑制作用,如大腸桿菌、肺炎克雷伯菌、產(chǎn)氣腸桿菌、銅綠假單胞菌和幽門螺桿菌等[30]。如表3所示,HP-β-CD/FA包合物質(zhì)量濃度不同對供試菌的抑制效果不同。FA對陰溝腸桿菌L63的MIC為0.781 mg/mL。此前,趙利利等[31]報(bào)道FA對大腸桿菌和蠟狀芽孢桿菌的MIC分別為0.31 mg/mL和0.63 mg/mL,表明大腸桿菌和蠟狀芽孢桿菌對FA的敏感度要高于陰溝腸桿菌L63。王麗平[32]研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)A包合物對大腸桿菌、金黃色葡萄球菌和蠟狀芽孢桿菌的MIC分別為1.25、5 mg/mL和2.5 mg/mL。本研究中HP-β-CD/FA包合物對陰溝腸桿菌L63的MIC為3.125 mg/mL。Chan等[33]研究發(fā)現(xiàn),6 種酚類植物提取物對5 種常見食源性致病菌的MIC范圍在0.31~2.5 mg/mL之間,低于本研究結(jié)果,這可能是因?yàn)榉宇惡凸┰嚲牟煌?,也可能由于FA被β-CD包埋。
表3 HP-β-CD/FA包合物和FA對陰溝腸桿菌L63的MICTable 3 MICs of HP-β-CD/FA inclusion complex and FA against E. cloacae L63
如圖3A所示,供試菌OD600nm為L組>L+FA組>L+MIC包合物組,說明HP-β-CD/FA包合物對陰溝腸桿菌L63生長有一定的抑制作用。FA包埋后抑制效果更明顯,這可能是因?yàn)镕A包埋后釋放緩慢,同時在介質(zhì)中擴(kuò)散性增強(qiáng)[10]。添加HP-β-CD/FA包合物延緩了供試菌的生長期和對數(shù)期,整個時期生長趨勢沒有改變,培養(yǎng)48 h,L+MIC包合物組OD600nm較L組降低了63.67%,這與Hsu等[14]的研究結(jié)果類似。
如圖3B所示,培養(yǎng)48 h期間,L組pH值逐漸升高,這可能是由于酪氨酸在TDC作用下脫羧產(chǎn)生酪胺;L+FA和L+MIC包合物組的pH值先略下降,隨后逐漸升高,這表明初期酸性物質(zhì)的產(chǎn)生速率略高于酪胺的產(chǎn)生速率,與于紅紅等[16]研究結(jié)果一致。L+FA和L+MIC包合物組的pH值均低于L組,表明FA和HP-β-CD/FA包合物均抑制了陰溝腸桿菌L63的生長,進(jìn)而減緩了酪胺積累,添加HP-β-CD/FA包合物的抑制效果更明顯。Hu Yongjin等[34]報(bào)道混合發(fā)酵劑培養(yǎng)可快速降低pH值,并抑制酪胺的累積。部分學(xué)者認(rèn)為,快速降低pH值有利于控制生物胺的產(chǎn)生[35]。
圖3 HP-β-CD/FA包合物在48 h內(nèi)對陰溝腸桿菌L63 OD600 nm(A)和pH值(B)的影響Fig. 3 Effects of HP-β-CD/FA inclusion complex on OD600 nm (A) and pH (B) of E. cloacae L63 during 48 h of culture
酪胺產(chǎn)生基因的排列順序依次為tyrS、tdcA、tyrP、nhaC[36]。由圖4A可知,與L組相比,添加L+MIC包合物顯著抑制tdcA和tyrP基因在陰溝腸桿菌L63中的表達(dá)。相反,tyrS和nhaC的轉(zhuǎn)錄不受HP-β-CD/FA包合物的調(diào)控。L組中tdcA、tyrP和nhaC表達(dá)水平較高,tyrS的轉(zhuǎn)錄未顯著表達(dá)。Linares等[37]觀察到在大腸桿菌的TDC基因簇中tyrS表達(dá)取決于酸性pH和酪氨酸缺乏,tyrS的過表達(dá)不影響tdcA的表達(dá)。此外,tdcA和nhaC起始密碼子的上游存在假定的啟動子和終止子[38],tdcA和tyrP之間沒有假定的啟動子和終止子[39]。這表明tdcA和tyrP的表達(dá)可能是獨(dú)立的,tyrS和nhaC在酪氨酸脫羧途徑中不是必需的[40]。酪胺由tdcA和tyrP蛋白相互作用形成,tdcA依賴磷酸吡哆醛催化酪氨酸脫羧生成酪胺并釋放CO2[41];tyrP作為一種特殊的膜逆向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,不僅促進(jìn)酪氨酸的攝取和酪胺的釋放,還可以在沒有酪胺交換的情況下將酪氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞中,但速率較慢[18]。本研究中,與FA相比,HP-β-CD/FA包合物較FA更顯著地抑制了陰溝腸桿菌L63中tdcA和tyrP的表達(dá)。通過降低pH值,HP-β-CD/FA包合物也可以間接影響tdcA和tyrp基因的轉(zhuǎn)錄表達(dá),從而減少酪胺積累。
圖4 HP-β-CD/FA包合物對陰溝腸桿菌L63中TDC相關(guān)基因表達(dá)(A)和酪胺積累(B)的影響Fig. 4 Effects of HP-β-CD/FA inclusion complex on the expression of TDC-related genes (A) and tyramine accumulation (B) in E. cloacae L63
如圖4B所示,在8~20 h,酪胺質(zhì)量濃度明顯增加;穩(wěn)定期酪胺積累速率明顯減慢,質(zhì)量濃度逐漸趨于穩(wěn)定,48 h時L組中酪胺質(zhì)量濃度為471.414 μg/mL。Zhang Qiuqin等[9]證明玫瑰多酚可抑制生物胺的形成和細(xì)菌腐敗生長。于紅紅等[16]報(bào)道百里香微膠囊可以抑制摩根氏菌ND和變形桿菌R3的生長,分別有效減少了61.08%和55.89%的組胺積累。相同培養(yǎng)時間下,L+MIC包合物組酪胺質(zhì)量濃度明顯低于L+FA組,這說明FA包埋后抑制效果更好,培養(yǎng)48 h時,與L組相比,L+MIC包合物組酪胺積累減少了64.46%,優(yōu)于之前研究中添加發(fā)酵劑的抑制效果[42-43]。結(jié)果證實(shí)HP-β-CD/FA包合物能顯著抑制陰溝腸桿菌L63的生長和tdcA、tyrP基因的轉(zhuǎn)錄,有效減少酪胺的積累。
2.7.1 微生物分析
如表4所示,0~7 d腸球菌和LAB數(shù)量逐漸增加,第14天時略有降低。LAB為整個發(fā)酵期間的優(yōu)勢菌。第28天時,A、D、E組的LAB數(shù)量沒有顯著差異,B組的LAB數(shù)量顯著高于A組(P<0.05),這說明HP-β-CD/FA包合物對LAB的生長可能有促進(jìn)作用。此前,Zhao Danyue等[44]研究表明葡萄多酚可以促進(jìn)LAB的生長。此外,HP-β-CD/FA包合物抑制了腸桿菌科的生長,但沒有表現(xiàn)出明顯的殺菌活性,Lu Shiling等[45]在不同植物提取物對熏馬腸影響的研究中得到了類似結(jié)果。在第28天發(fā)酵成熟時,B、D組中腸桿菌科數(shù)量較A、C組顯著降低,表明HP-β-CD/FA包合物能夠抑制腸桿菌科微生物的生長。D組中腸桿菌科數(shù)量低于E組,表明HP-β-CD/FA包合物對腸桿菌的抑制效果較FA更顯著。HP-β-CD/FA包合物通過干擾細(xì)胞膜磷脂,破壞其生物膜結(jié)構(gòu),導(dǎo)致細(xì)胞膜通透性增強(qiáng),細(xì)胞質(zhì)滲出,從而達(dá)到抑菌效果[46]。因此,HP-β-CD/FA包合物的高抗菌性能歸因于FA的緩慢釋放和更好的溶解性,使其具有更穩(wěn)定的抑菌作用。
表4 熏馬腸成熟過程中微生物計(jì)數(shù)Table 4 Microbial counts during ripening of smoked horsemeat sausage
2.7.2 熏馬腸的pH值
pH值是影響肉制品中生物胺生成的一個重要因素。pH值對細(xì)菌污染、酵母菌生長以及發(fā)酵速率有抑制作用[45]。正常情況下,新鮮馬肉的pH值為5.5~6.2。如圖5A所示,5 組熏馬腸的初始pH值在5.32~5.47之間。在0~3 d時pH值迅速下降,這是由于微生物分解碳水化合物為乳酸或發(fā)酵過程中氨基酸脫氨轉(zhuǎn)化為有機(jī)酸[47]。在發(fā)酵7 d開始pH值緩慢回升,這可能是因?yàn)槲⑸锇l(fā)生脫羧或脫氨反應(yīng)積累生物胺從而抵抗酸性環(huán)境。此外,B、D和E組的pH值低于A、C組,說明加入FA和HP-β-CD/FA包合物均能夠有效降低熏馬腸pH值,抑制腐敗菌生長;此外,D組pH值低于E組,說明FA包埋后的抑制效果較FA更顯著。
圖5 熏馬腸發(fā)酵期間pH值(A)和酪胺質(zhì)量濃度(B)的變化Fig. 5 Changes in pH (A) and tyramine content (B) in smoked horsemeat sausage during fermentation
2.7.3 酪胺質(zhì)量濃度
如圖5B所示,在0~21 d酪胺質(zhì)量濃度明顯增加,第21天時A組和C組中檢測到較高質(zhì)量濃度的酪胺,第28天時略有下降,分別下降至315.94 μg/mL和384.19 μg/mL,這可能是因?yàn)檠R腸中某些微生物產(chǎn)生了生物胺氧化酶,降低了生物胺含量[48]。Zhao Lili等[49]證明,在發(fā)酵和成熟過程中,F(xiàn)A可以減少熏馬肉中32.17%的組胺。薛林林等[50]報(bào)道FA分別減少了屎腸球菌和糞腸球菌中19.9%和27%的酪胺積累。第28天時,與C組相比,D組酪胺質(zhì)量濃度減少了63.27%,E組酪胺質(zhì)量濃度僅減少49.61%。這些結(jié)果表明,與FA相比,HP-β-CD/FA包合物在減少酪胺積累方面更有效。Li Lu[42]和Dias[51]等研究不同葡萄球菌和乳桿菌作為發(fā)酵劑對生物胺積累的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)酪胺積累量僅減少了7.45%~29.24%。本研究中,發(fā)酵結(jié)束時B組酪胺積累量較A組減少74.34%。HP-β-CD/FA包合物抑制產(chǎn)酪胺相關(guān)基因以及tdcA和tyrP表達(dá)的細(xì)菌生長,從而減少酪胺形成。因此,添加HP-β-CD/FA包合物是抑制腐敗菌(腸桿菌科)生長和減少酪胺積累的有效途徑,有助于提高熏馬腸的安全性。
添加HP-β-CD/FA包合物抑制腸桿菌效果好于FA,能夠明顯降低pH值,減少酪胺含量,以及TDC基因簇的表達(dá)。在純菌體系中HP-β-CD/FA包合物對tyrS和nhaC基因表達(dá)影響不顯著,但能顯著抑制tdcA和tyrP基因的轉(zhuǎn)錄。在熏馬腸中添加HP-β-CD/FA包合物能降低pH值,減少酪胺積累,添加MIC HP-β-CD/FA包合物與空白對照組相比酪胺積累減少74.34%??傊?,HP-β-CD/FA包合物能夠有效抑制酪胺積累和tdcA和tyrP基因表達(dá),本實(shí)驗(yàn)可為提高傳統(tǒng)新疆熏馬腸和其他發(fā)酵肉制品的安全性提供一定理論依據(jù)。