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酶聯(lián)免疫吸附法、電化學(xué)發(fā)光法和熒光定量PCR法三種檢驗(yàn)方式在丙型肝炎檢驗(yàn)中的應(yīng)用進(jìn)展

2022-11-24 19:32崔欲曉天津市東麗區(qū)疾病預(yù)防控制中心檢驗(yàn)科天津300300
中國(guó)醫(yī)療器械信息 2022年18期
關(guān)鍵詞:化學(xué)發(fā)光夾心抗原

崔欲曉 天津市東麗區(qū)疾病預(yù)防控制中心檢驗(yàn)科 (天津 300300)

內(nèi)容提要: 丙型肝炎(hepatitis C,HC)是丙型肝炎病毒(Hepatitis C virus,HCV)感染所致的一種疾病,在臨床中主要表現(xiàn)為發(fā)熱、惡心、厭食、關(guān)節(jié)疼痛、乏力等,具有易反復(fù)、慢性化、傳染性等特點(diǎn)。酶聯(lián)免疫吸附法(enzymelinked immunosorbent assay,ELISA)、電化學(xué)發(fā)光法(electro-chemiluminescence immunoassay,ECLIA)和熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)法(fluorescentquantitative polymerase chain reaction,F(xiàn)Q-PCR)是臨床較為常用的三種檢驗(yàn)方式,目前其應(yīng)用于HC的研究也越來(lái)越多。因此,本文就近年來(lái)ELISA、ECLIA和FQ-PCR三種檢驗(yàn)方式應(yīng)用于HC的現(xiàn)狀作一綜述,旨在為HC的臨床診治提供更多參考。

丙型肝炎病毒(Hepatitis C virus,HCV)在全球感染率已達(dá)3.2%且逐年升高,研究顯示近80%患者可進(jìn)展為丙型肝炎(hepatitis C,HC)[1]。HC治療難度較高,初期臨床癥狀不顯著,患者未得到及時(shí)治療很可能發(fā)展為肝癌,是導(dǎo)致患者死亡的重要原因之一[2]。目前臨床常用的檢測(cè)方法包括酶聯(lián)免疫吸附法(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)電化學(xué)發(fā)光法(electro-chemiluminescence immunoassay,ECLIA)和熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)法(fluorescent quantitative polymerase chain reaction,F(xiàn)Q-PCR)[3,4],為HC的防治提供了重要的參考。因此,本文對(duì)近年來(lái)HC患者應(yīng)用ELISA、ECLIA和FQ-PCR進(jìn)行展開(kāi)綜述,旨在提高HC患者生存質(zhì)量。

1.檢驗(yàn)方式

1.1 ELISA

ELISA敏感性和特異性均較高,但檢驗(yàn)方式操作步驟較為復(fù)雜,且費(fèi)用較高[5]。ELISA可分為間接法和雙抗原夾心法[6],間接法的原理是采用HCV抗原對(duì)固體載體進(jìn)行包被,通過(guò)辣根過(guò)氧化物酶辣根過(guò)氧化物酶(horseradish peroxidase,HRP)對(duì)被檢樣品抗-HCV反應(yīng)和抗人免疫球蛋白G(Immunoglobulin,IgG)進(jìn)行標(biāo)記,待底物鄰苯二胺顯色,即采用酶標(biāo)儀判定結(jié)果的陰陽(yáng)性[7]。間接法主要的反應(yīng)過(guò)程為:向已包被的抗原反應(yīng)孔中加入待測(cè)樣本進(jìn)行孵育,若標(biāo)本中存在抗-HCV,則可與微孔抗原結(jié)合成為固相抗原抗體復(fù)合物;由于其他的免疫球蛋白和樣品雜志無(wú)法結(jié)合固相抗原,因而可被洗滌洗去;將酶結(jié)合物加入其中孵育后使得其連接于抗原抗體復(fù)合物,洗滌后,可在3,3’,5,5’-四甲基聯(lián)苯胺底物(3,3’,5,5’-Tetramethylbenzidine,TMB)參與的條件下出現(xiàn)顯色反應(yīng),將終止液加入其中后,采用酶標(biāo)儀對(duì)結(jié)果進(jìn)行測(cè)量分析。雙抗原夾心法的原理是借助純化的抗-HCV抗體對(duì)微孔板進(jìn)行包被,再將HCV抗原的肽片段加入微孔中,隨后結(jié)合被HRP所標(biāo)記過(guò)的HCV抗原成為抗原-抗體-酶標(biāo)抗原復(fù)合物,徹底洗滌并加入TMB進(jìn)行顯色,最后采用酶標(biāo)儀對(duì)結(jié)果進(jìn)行判定[8]。雙抗原夾心法主要的反應(yīng)過(guò)程為:待樣本和試劑恢復(fù)到室溫后,向設(shè)置好的7個(gè)標(biāo)準(zhǔn)的樣品孔中依次加入不同稀釋比例的100μL標(biāo)品,而零孔中則加100μL的標(biāo)準(zhǔn)品,對(duì)酶標(biāo)板進(jìn)行覆膜,在37°C下反應(yīng)2h,行去液和甩干處理后,再加入100μL檢測(cè)溶液1的工作液,于37°C反應(yīng)1h,將孔內(nèi)液體甩干后,在350μL洗滌液中浸泡1~2min,隨后進(jìn)行3次充分洗滌,注意在洗滌的最后一次需完全甩干孔內(nèi)的洗滌液,在將100μL檢測(cè)溶液2的工作液加入孔內(nèi),對(duì)酶標(biāo)板覆膜并于37°C反應(yīng)30min,在進(jìn)行5次甩干和洗板操作,將90μL的底物溶液加入各孔,對(duì)酶標(biāo)板進(jìn)行覆膜后在避光、37°C條件下進(jìn)行顯色反應(yīng),待充分顯色,即將終止液加入其中,最后采用酶標(biāo)儀判定結(jié)果。

孫強(qiáng)等[9]分別采用雙抗原夾心法和間接法對(duì)HCV抗體進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果顯示兩者檢測(cè)的準(zhǔn)確率具有顯著的差異性,雙抗原夾心法和間接法均可有效檢測(cè)HCV抗體,但雙抗原夾心法的特異性、靈敏度更高。分析其可能原因:雙抗原夾心法能夠檢測(cè)IgG、免疫球蛋白M(Immunoglobulin,IgM)在內(nèi)的總抗體,同時(shí)IgG亞型不會(huì)影響反應(yīng)過(guò)程,對(duì)HCV感染窗口期的縮短有著重要的意義,進(jìn)而提高早期感染的檢出率,并且雙抗原夾心法通過(guò)不同重組抗原對(duì)吖啶酯和生物素進(jìn)行標(biāo)記,能夠減少非特異性的抗體和類(lèi)風(fēng)濕因子干擾,降低假陽(yáng)性率。

ELISA發(fā)生假陽(yáng)性現(xiàn)象可能因素:①注液量未達(dá)到要求、抽吸不全等不符合標(biāo)準(zhǔn)的操作;②患者原發(fā)病中存在超氧化物歧化酶、高免疫蛋白、類(lèi)風(fēng)濕因子等或血樣溶血;③試劑:酶結(jié)合物、所克隆抗體純度低于標(biāo)準(zhǔn)以及抗原不純。

1.2 ECLIA

ECLIA主要是由電化學(xué)所引發(fā)的特異效果而產(chǎn)生的一種化學(xué)發(fā)光反應(yīng),在檢測(cè)中能夠自動(dòng)稀釋和重新檢測(cè)[10]。ECLIA結(jié)合了高特異性免疫反應(yīng)和高度靈敏化學(xué)發(fā)光的測(cè)定技術(shù),在臨床上廣泛應(yīng)用。通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)法對(duì)小分子的抗原進(jìn)行檢測(cè),夾心法對(duì)大分子的抗原進(jìn)行檢測(cè),非特異性的結(jié)合少;結(jié)合大分子后不影響光量產(chǎn)生,有利于提高靈敏度。ECLIA原理是通過(guò)聯(lián)吡啶釕對(duì)病原體抗體或抗原免疫反應(yīng)發(fā)生后的復(fù)合物進(jìn)行標(biāo)記,借助電場(chǎng)作用中電子傳遞將激發(fā)態(tài)轉(zhuǎn)化為基態(tài)并發(fā)光?;瘜W(xué)發(fā)光法屬于分子發(fā)光廣譜分析法中的一類(lèi),其主要依據(jù)化學(xué)檢測(cè)體系中待測(cè)物濃度與體系的化學(xué)發(fā)光強(qiáng)度在一定條件下呈線性定量關(guān)系的原理,通過(guò)儀器檢測(cè)待測(cè)物發(fā)光強(qiáng)度的痕量分析方法。除在臨床檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)中具有廣泛應(yīng)用外,在各類(lèi)痕量金屬離子、無(wú)機(jī)化合物、有機(jī)化合物及生物領(lǐng)域也有較高應(yīng)用價(jià)值?;瘜W(xué)發(fā)光是某種物質(zhì)分子吸收化學(xué)能而產(chǎn)生的光輻射。任何一個(gè)化學(xué)發(fā)光反應(yīng)都包括兩個(gè)關(guān)鍵步驟,即化學(xué)激發(fā)和發(fā)光。因此,一個(gè)化學(xué)反應(yīng)要成為發(fā)光反應(yīng),必須滿(mǎn)足兩個(gè)條件:第一:反應(yīng)必須提供足夠的能量(170~300KJ/mol),第二,這些化學(xué)能必須能被某種物質(zhì)分子吸收而產(chǎn)生電子激發(fā)態(tài),并且有足夠的熒光量子產(chǎn)率。所研究的化學(xué)發(fā)光反應(yīng)大多為氧化還原反應(yīng),且多為液相化學(xué)發(fā)光反應(yīng)。

陳少彬等[11]分別采用ECLIA和ELISA對(duì)獻(xiàn)血者抗-HCV進(jìn)行檢測(cè),研究結(jié)果顯示,兩種檢測(cè)方法有著高度的一致性,而在靈敏度方面,ECLIA更高。ECLIA假陽(yáng)性率較高的原因分析為:①干擾:在檢測(cè)過(guò)程中可能受類(lèi)風(fēng)濕類(lèi)等其他抗體干擾;②標(biāo)本狀態(tài):標(biāo)本存在較多的纖維蛋白原、嚴(yán)重溶血、乳糜等。段金霞等[12]也在其相關(guān)研究中指出,ECLIA法對(duì)乙肝病毒的檢測(cè)效能較ELISA法更好,但相比之下,ECLIA法的檢測(cè)成本較ELISA法更高,或無(wú)法很好適應(yīng)患者的臨床需求。周明等[13]卻表示,ELISA、ECLIA均有其自身優(yōu)勢(shì)、劣勢(shì),該研究中兩種檢測(cè)方式的檢出率、敏感度、特異度均無(wú)明顯差異,該學(xué)者建議可在充分結(jié)合臨床實(shí)際基礎(chǔ)上為不同患者選擇合理的檢測(cè)方法。

1.3 FQ-PCR

FQ-PCR作為一種新型分子生物學(xué)技術(shù),是目前病毒核酸檢測(cè)的最靈敏的直接檢測(cè)手段,其在病毒載量很低時(shí)即可檢測(cè)出。其檢測(cè)最常用的是DNA結(jié)合染料SYBR Green Ⅰ的非特異性方法和Taqman水解探針的特異性方法。理論上PCR是一個(gè)指數(shù)增長(zhǎng)的過(guò)程,但是實(shí)際的PCR擴(kuò)增曲線并不是標(biāo)準(zhǔn)的指數(shù)曲線,而是S形曲線。這是因?yàn)殡S著PCR循環(huán)的增多,擴(kuò)增規(guī)模迅速增大,Taq酶、dNTP、引物,甚至DNA模板等各種PCR要素逐漸不敷需求,PCR的效率越來(lái)越低,產(chǎn)物增長(zhǎng)的速度就逐漸減緩。當(dāng)所有的Taq酶都被飽和以后,PCR就進(jìn)入了平臺(tái)期。FQ-PCR的原理是將HCV編碼區(qū)高度保守的區(qū)域視作靶區(qū)域,對(duì)熒光探針和特異性的引物進(jìn)行設(shè)計(jì),通過(guò)一步法逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)擴(kuò)增,進(jìn)而對(duì)血漿或血清樣本HCV RNA進(jìn)行定量檢測(cè),而HCV RNA陽(yáng)性和病毒量含量能夠表明病毒的存在及其傳染性強(qiáng)弱和復(fù)制的活躍程度,對(duì)抗HCV和HCV RNA變化進(jìn)行動(dòng)態(tài)觀察,能夠有效判斷HC預(yù)后以及評(píng)價(jià)其用藥的臨床療效。與其他醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)手段相比,F(xiàn)Q-PCR具有靈敏度高、特異性強(qiáng)、檢測(cè)時(shí)間短等諸多優(yōu)勢(shì),目前該技術(shù)在多種病原學(xué)檢測(cè)、免疫疾病或腫瘤疾病的診斷中均有積極意義。

郭杰等[14]采用FQ-PCR對(duì)HC病毒核酸進(jìn)行定量檢測(cè)并評(píng)價(jià)其檢測(cè)性能,研究結(jié)果表明FQ-PCR能夠有效檢測(cè)HCV RNA,且其正確度、精密度、線性范圍、檢測(cè)限、抗干擾的能力等均在臨床要求以?xún)?nèi)。劉麗[15]也在其相關(guān)研究中表示,與ELISA等常見(jiàn)檢測(cè)方法相比,F(xiàn)O-PCR的檢測(cè)效率更高、結(jié)果更加準(zhǔn)確。

FQ-PCR影響因素有:①保存:采用肝素抗凝標(biāo)本對(duì)HCV RNA進(jìn)行檢測(cè)時(shí),若Taq酶與樣本殘余肝素相結(jié)合即可引起Taq酶濃度的降低,對(duì)其活性產(chǎn)生了間接性的抑制作用,最終對(duì)PCR的檢測(cè)結(jié)果產(chǎn)生影響;②前處理:HCV RNA PCR的擴(kuò)增效果及準(zhǔn)確性與核酸的提取方法有著直接的聯(lián)系,而磁珠法可最大限度的減少核酸的丟失,進(jìn)而使PCR反應(yīng)中存在盡可能多的核酸標(biāo)本;③其他:儀器設(shè)備的精密度、人員操作、環(huán)境的溫濕度等也可能會(huì)對(duì)結(jié)果準(zhǔn)確性產(chǎn)生影響,HCV的短期治療,例如直接抗病毒藥物治療,可引起HCV RNA的迅速降低,導(dǎo)致其低于試劑的檢測(cè)下限,引起假陰性結(jié)果的出現(xiàn),同時(shí)核酸檢測(cè)很容易被污染,則又會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果的出現(xiàn)。

2.小結(jié)及展望

目前檢測(cè)HCV的方法主要有ELISA、ECLIA和FQ-PCR,但其均具有一定的局限性,因此提示臨床可通過(guò)比較各種檢測(cè)方法的優(yōu)缺點(diǎn),采用兩種及兩種以上檢驗(yàn)方法以縮短檢驗(yàn)的窗口期,降低漏診率、假陰性率等,最終提高HCV感染的初期確診率。另外HCV確認(rèn)的檢測(cè)成本較高,特別是核酸檢測(cè),其對(duì)操作人員和實(shí)驗(yàn)室的條件也有著較高的要求,大多數(shù)的實(shí)驗(yàn)室陽(yáng)性檢測(cè)結(jié)果報(bào)告只依賴(lài)于一次的初篩陽(yáng)性實(shí)驗(yàn)結(jié)果,而并未進(jìn)行更高特異性的核酸或血清學(xué)確證實(shí)驗(yàn),故臨床因重視病毒學(xué)的檢測(cè)方案的建立和完善,開(kāi)發(fā)出高效率、低成本的新的檢測(cè)試劑或方法,同時(shí)對(duì)資源較為有限的地區(qū)的HCV基因的分型技術(shù)、核酸定量檢測(cè)技術(shù)進(jìn)行積極發(fā)展,進(jìn)而提高檢測(cè)結(jié)果的準(zhǔn)確性,以為HCV病原體的地域分布、耐藥位點(diǎn)的分布以及基因組的凈化等研究提供一定的科學(xué)參考數(shù)據(jù)。

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