欒楓婷 龔 蘭 王 冉 朱 磊 何 濤 魏瑞成
(江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全與營(yíng)養(yǎng)研究所,江蘇省食品質(zhì)量安全重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室-省部共建國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室培育基地,南京 210014)
氨基糖苷類(lèi)藥物(Aminoglycosides,AGs)是由氨基糖分子和苷元通過(guò)醚鍵連接而成,主要分為天然和半合成兩類(lèi)。其中,鏈霉素、雙氫鏈霉素、卡那霉素和安普霉素均是在鏈霉菌屬培養(yǎng)液中提取獲得的,屬于天然來(lái)源的AGs。AGs易在細(xì)菌的核糖體中與蛋白體結(jié)合,對(duì)細(xì)菌蛋白質(zhì)合成起抑制作用,并且破壞細(xì)胞膜的完整性,從而殺滅細(xì)菌或抑制其生長(zhǎng)[1]。上述4種AGs具有殺菌活性強(qiáng)、臨床療效好、廣譜抗菌性等特點(diǎn),被廣泛用于畜牧養(yǎng)殖業(yè)。但為維護(hù)我國(guó)動(dòng)物源性食品安全和公共衛(wèi)生安全,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部在發(fā)布的第194號(hào)公告中規(guī)定,自2020年7月起禁止抗菌類(lèi)藥物作為飼料添加劑使用。因此,飼料中添加氨基糖苷類(lèi)等藥物屬于違禁行為。雙氫鏈霉素和鏈霉素有相同的母體結(jié)構(gòu),當(dāng)側(cè)鏈基團(tuán)是-CH2OH時(shí)為雙氫鏈霉素,是-CHO時(shí)為鏈霉素。安普霉素為單組分藥物。卡那霉素主要有A、B、C 3種組分,B的耳毒性和腎毒性比A高1~1.5倍,國(guó)內(nèi)外是將B作為雜質(zhì)進(jìn)行控制,市售產(chǎn)品中卡那霉素A的含量占95%以上,B的含量則控制在5%內(nèi),C含量極少。因此,監(jiān)測(cè)飼料中卡那霉素違禁添加時(shí),實(shí)際測(cè)定卡那霉素A。
AGs是高度極性化合物,以多離子形式存在于水溶液,很難實(shí)現(xiàn)萃取或預(yù)濃縮,且該類(lèi)藥物相互作用小,在傳統(tǒng)的反相色譜柱滯留量小。因此,開(kāi)發(fā)AGs的分析方法具有挑戰(zhàn)性[2]。目前,對(duì)飼料中AGs殘留檢測(cè)方法主要有微生物法、離子色譜法和高效液相色譜法等。美國(guó)分析化學(xué)家協(xié)會(huì)的AOAC 973.81、AOAC 971.49和AOAC 998.02標(biāo) 準(zhǔn) 采 用微生物法分別測(cè)定了飼料中大觀霉素、鏈霉素、新霉素,但該方法操作繁瑣、靈敏度低、重現(xiàn)性差,僅適用于定性實(shí)驗(yàn)[3]。LIU等[4]、ZHOU等[5]采用高效液相色譜法測(cè)定飼料中的AGs,因AGs分子結(jié)構(gòu)缺少紫外和熒光吸收基團(tuán)[6],待測(cè)樣品需進(jìn)行柱前或柱后衍生化,操作繁瑣,易造成目標(biāo)物損失,導(dǎo)致測(cè)定結(jié)果偏低。近年來(lái),液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法因定量準(zhǔn)確、靈敏度高、抗背景干擾力強(qiáng)且無(wú)需衍生化等優(yōu)點(diǎn)被廣泛應(yīng)用[7]。目前,飼料檢測(cè)的方法標(biāo)準(zhǔn)或文獻(xiàn)報(bào)道了在流動(dòng)相中加入離子對(duì)試劑(如七氟丁酸、庚烷磺酸鈉等)[6,8~11],使目標(biāo)物易于在反向色譜柱上保留,但離子對(duì)試劑對(duì)質(zhì)譜負(fù)離子模式的抑制作用極大地限制了方法的應(yīng)用,如何在多殘留測(cè)定的液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法中規(guī)避使用離子對(duì)試劑是測(cè)定方法開(kāi)發(fā)面臨的關(guān)鍵難題。本文避免使用離子對(duì)試劑,通過(guò)優(yōu)化前處理過(guò)程和色譜分析條件,研究建立同時(shí)測(cè)定飼料中鏈霉素、雙氫鏈霉素、卡那霉素和安普霉素殘留的固相萃?。合嗌V-串聯(lián)質(zhì)譜法,旨在為農(nóng)業(yè)農(nóng)村主管部門(mén)安全監(jiān)管飼料中氨基糖苷類(lèi)藥物殘留提供方法支持。
(一)儀器LC-20A液相色譜儀(日本島津公司);Triple QuadTM6500+三重四極桿串聯(lián)質(zhì)譜儀(美國(guó)AB SCIEX公司);ME104E型電子分析天平(瑞士Mettler-Toledo公司);VORTEX 3型渦旋混勻器(德國(guó)IKA公司);5810R型高速冷凍離心機(jī)(美國(guó)Eppendorf公司);KQ-500E型超聲波清洗機(jī)(昆山超聲波儀器有限公司);N-EVAP-24型氮吹儀(美國(guó)Organomation公司)。
(二)材料與試劑Oasis HLB固相萃取(Solid phase extraction,SPE)柱 (500 mg/6 mL,美國(guó)Waters公司);異丙醇(色譜級(jí),德國(guó)Merck公司);乙腈和甲醇 (色譜級(jí),美國(guó)Honeywell公司);甲酸和乙酸銨(色譜級(jí),上海阿拉丁生化科技股份有限公司);磷酸二氫鉀、乙二胺四乙酸二鈉、純氨水、三氯乙酸和甲醇(分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);鏈霉素、雙氫鏈霉素、卡那霉素和安普霉素標(biāo)準(zhǔn)品(純度≥92%,德國(guó)Dr.Ehrenstorfer公司)。
(三)實(shí)驗(yàn)方法
1.樣品提取。準(zhǔn)確稱(chēng)取2 g樣品于50 mL離心管內(nèi),準(zhǔn)確加入30 mL 10%三氯乙酸溶液(含0.002 mol/L EDTA-2Na、0.01 mol/L磷酸二氫鉀,pH為7.5±0.2),渦旋混勻,超聲提取15 min,振蕩5 min,以10 000 r/min離心10 min。準(zhǔn)確移取15 mL上清液于另一50 mL離心管內(nèi),用氨水調(diào)節(jié)pH至6.5±0.1,作為備用液。
2.樣品凈化。HLB固相萃取柱預(yù)先用5 mL甲醇、水活化,取備用液全部過(guò)柱,用水和10%甲醇水溶液各5 mL依次淋洗,抽干。準(zhǔn)確加入5.0 mL甲酸-異丙醇-0.002 mol/L乙酸銨水溶液(10∶5∶85,體積比,pH 0.8)洗脫并收集,渦旋混勻后,經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾后,供液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜儀測(cè)定。
3.儀器條件。色譜條件:色譜柱為ACQUITY UPLC BEH Amide色譜柱(2.1 mm×100 mm,1.7 μm),柱溫為35℃,流速為0.3 mL/min,進(jìn)樣量為4 μL。流動(dòng)相A為1%甲酸,流動(dòng)相B為含1%甲酸的乙腈,均含0.002 mol/L乙酸銨,梯度洗脫程序?yàn)?~2.5 min,20%A;2.6~4.0 min,20%A→65%A;4.1~5.5 min,65%A→90%A;5.6~6.7 min,90%A;6.8~7.5 min,90%A→20%A;7.6~12.0 min,回到20%A的初始條件。
質(zhì)譜條件:電噴霧離子源正離子模式(ESI+),氣簾氣壓力為206.8 kPa,碰撞氣壓力為55.2 kPa,離子源電壓為5 500 V,離子源溫度為550℃,霧化氣壓力為448.2 kPa,輔助加熱氣壓力為413.7 kPa,掃描方式為多反應(yīng)監(jiān)測(cè)模式,質(zhì)譜參數(shù)見(jiàn)表1。
表1 4種AGs的質(zhì)譜參數(shù)
(一)色譜柱的選擇AGs含有氨基等堿性基團(tuán),水溶性較大,C18色譜柱為反相色譜柱,目標(biāo)藥物保留較弱。有文獻(xiàn)報(bào)道在流動(dòng)相中加入離子對(duì)試劑可實(shí)現(xiàn)對(duì)該類(lèi)藥物的分離,如張靜等[8]和劉清穎[6]在流動(dòng)相中添加0.02~0.05 mol/L七氟丁酸溶液測(cè)定AGs,王欽欽[9]在樣品溶液中加入1%七氟丁酸溶液測(cè)定AGs,均通過(guò)加入離子對(duì)試劑增強(qiáng)了目標(biāo)物在反向色譜柱上的保留。但離子對(duì)試劑的使用會(huì)嚴(yán)重抑制質(zhì)譜儀的電噴霧離子化效果,大幅降低儀器靈敏度,尤其是對(duì)負(fù)離子模式的影響更為明顯。因此,為了規(guī)避離子對(duì)試劑在質(zhì)譜方法中的使用,本研究考察了OSAKA SODA SILICA、SiELC Obelisc R、BEH C18、HSS T3、BEH HILIC和BEH Amide等色譜柱對(duì)4種氨基糖苷類(lèi)藥物的分離效果。結(jié)果表明,在沒(méi)有加入離子對(duì)試劑情況下,BEH Amide和Obelisc R色譜柱可對(duì)目標(biāo)物進(jìn)行分離洗脫,色譜峰和保留時(shí)間均符合要求,但Obelisc R色譜柱對(duì)醇敏感,影響色譜柱的活性,微量醇試劑會(huì)造成目標(biāo)物峰形拖尾,對(duì)儀器管路系統(tǒng)要求嚴(yán)格[12~13]。BEH C18、HSS T3、OSAKA SODA SILICA、BEH HILIC色譜柱對(duì)目標(biāo)物保留時(shí)間短、雜質(zhì)干擾大。因此,最終選擇使用BEH Amide色譜柱。
(二)提取條件的優(yōu)化
1.提取液的優(yōu)化。本研究選取富含多種礦物元素及微量元素等成分的豬預(yù)混合飼料優(yōu)化提取溶劑。比較了提取液的不同組成和pH對(duì)4種藥物回收率的影響,通過(guò)EDTA-2Na、三氯乙酸、pH 3因素交叉試驗(yàn),確定提取液組成為10%三氯乙酸、2 mmol/L EDTA-2Na、10 mmol/L磷酸二氫鉀,pH為7.5±0.2,此條件下4種藥物的回收率約80%,滿(mǎn)足要求(見(jiàn)圖1)。提取液中的EDTA-2Na可螯合金屬離子減少對(duì)目標(biāo)藥物的影響[14],其螯合能力受提取液pH影響。磷酸二氫鉀起到穩(wěn)定溶液酸堿度的作用,而三氯乙酸溶液可沉降樣品中的蛋白質(zhì),起到樣品凈化作用。
圖1 提取液的不同組成和pH對(duì)豬預(yù)混合飼料中4種AGs回收率的影響 (添加水平為0.5 mg/kg)
2.不同提取液體積和提取時(shí)間的優(yōu)化。分別選擇10、20、30、40 mL提取液進(jìn)行樣品提取,當(dāng)提取液體積為10 mL和20 mL時(shí)上清液少,不利于移??;當(dāng)提取液體積為30 mL和40 mL時(shí)4種藥物回收率增加不明顯(見(jiàn)圖2)。從節(jié)約試劑角度考慮,將樣品提取液體積定為30 mL。之后進(jìn)一步比較了不同超聲提取時(shí)間(5、10、15、20 min)對(duì)4種藥物回收率的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)超聲15 min后目標(biāo)藥物的回收率無(wú)明顯增加(見(jiàn)圖2),為節(jié)約操作時(shí)間,將樣品超聲提取時(shí)間定為15 min。
圖2 提取液體積及時(shí)間對(duì)豬預(yù)混合飼料中4種AGs回收率的影響 (添加水平為0.5 mg/kg)
(三)凈化條件的優(yōu)化
1.不同SPE柱的選擇。AGs屬于極性較強(qiáng)的堿性化合物,為增加目標(biāo)物在SPE柱填料上的保留,張靜等[8]在固相萃取過(guò)程中添加0.02 mol/L七氟丁酸溶液。本研究為簡(jiǎn)化凈化步驟,避免使用離子對(duì)試劑,比較了WCX(150 mg/6 mL)、MCX(500 mg/6 mL)和HLB(500 mg/6 mL)3種不同類(lèi)型的SPE柱對(duì)4種藥物回收率的影響,結(jié)果見(jiàn)圖3。結(jié)果表明,WCX柱(150 mg/6 mL)和MCX柱(500 mg/6 mL)對(duì)鏈霉素和雙氫鏈霉素基本無(wú)保留,HLB柱(500 mg/6 mL)對(duì)4種AGs保留穩(wěn)定,回收率為65.1%~87.9%。因此,選擇HLB柱(500 mg/6 mL)作為凈化SPE柱。
2.過(guò)柱備用液pH的優(yōu)化。過(guò)SPE柱的備用液中目標(biāo)物的離子化程度將影響SPE柱填料對(duì)目標(biāo)物的吸附率。由于精料補(bǔ)充料、配合飼料、濃縮飼料和預(yù)混合飼料4種飼料配料之間存在差異,本研究分別選取4種不同飼料,對(duì)比pH為3.5、4.5、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.5的過(guò)柱備用液對(duì)各飼料中4種AGs固相萃取效率的影響。結(jié)果表明,pH對(duì)配合飼料、濃縮飼料和預(yù)混合飼料3種飼料基質(zhì)中目標(biāo)物的固相萃取效率影響不大,添加回收率均在70.5%~100.1%范圍內(nèi)。精料補(bǔ)充料與其他3種飼料相比干物質(zhì)含量高,精料補(bǔ)充料中4種AGs回收率僅在過(guò)柱備用液pH為6.5時(shí)在90.5%~100.4%之間(見(jiàn)圖4),該回收率范圍滿(mǎn)足檢測(cè)要求。因此,選擇pH為6.5±0.1作為過(guò)柱備用液的pH。與蔡春燕等[15]開(kāi)發(fā)的方法相比,本方法可同時(shí)滿(mǎn)足精料補(bǔ)充料、配合飼料、濃縮飼料和預(yù)混合飼料4種飼料的測(cè)定。
圖4 精料補(bǔ)充料中4種AGs在不同過(guò)柱備用液pH條件下的添加回收率(添加水平為0.5 mg/kg)
3.SPE柱洗脫液的優(yōu)化。異丙醇極性較強(qiáng),在酸性溶液中加入一定濃度異丙醇可提高4種AGs在HLB柱(500 mg/6 mL)上的洗脫效果。本研究比較了5%異丙醇、甲酸-異丙醇-水(10∶10∶80,體積比)和甲酸-異丙醇-水(10∶5∶85,體積比)3種洗脫溶液的洗脫效率,發(fā)現(xiàn)甲酸-異丙醇-水(10∶5∶85,體積比)組洗脫溶液的效果明顯高于其他兩種,飼料中4種AGs回收率均在65%以上(見(jiàn)圖5)。
圖5 不同洗脫液組成對(duì)飼料中4種AGs回收率的影響(添加水平為0.5 mg/kg)
洗脫液中含有較高的水分,采用氮?dú)獯蹈蓪⒂绊懱幚硇剩狙芯繉⑾疵摵笕芤褐苯由蠙C(jī)測(cè)定以簡(jiǎn)化前處理過(guò)程,提高分析效率。由于pH對(duì)目標(biāo)物的響應(yīng)值和安普霉素色譜峰峰形影響較大,分別比 較 了 洗 脫 液pH為0.8、1.2、1.6、2.0時(shí)4種AGs的色譜峰分離效果及峰形情況(預(yù)先添加0.002 mol/L乙酸銨穩(wěn)定洗脫液pH)。結(jié)果發(fā)現(xiàn),當(dāng)洗脫液pH為0.8時(shí),目標(biāo)物響應(yīng)值和安普霉素色譜峰峰形顯著改善(見(jiàn)圖6)。
圖6 不同洗脫液pH條件下安普霉素特征離子色譜圖對(duì)比
4.不同廠家HLB固相萃取柱的適用性研究。為進(jìn)一步研究固相萃取凈化效果的穩(wěn)定性,本研究選取StrataTM-X(500 mg/6 mL)、Oasis HLB(500 mg/6 mL)、Copure HLB(500 mg/6 mL)、Poly-Sery HLB(500 mg/6 mL)等親水-親脂固相萃取柱凈化,以基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)行結(jié)果校正,考察不同廠家固相萃取柱的凈化效果,結(jié)果發(fā)現(xiàn),各固相萃取柱的回收率和重現(xiàn)性普遍較好,說(shuō)明不同廠家的固相萃取柱對(duì)4種AGs的凈化效果差異不明顯,均適用于本方法。
(四)方法學(xué)考察
1.方法的基質(zhì)效應(yīng)評(píng)價(jià)。飼料產(chǎn)品種類(lèi)繁多且本底復(fù)雜,含有豐富的蛋白質(zhì)、纖維素、脂肪、維生素等,ESI離子源易受到上述物質(zhì)干擾[16],產(chǎn)生基質(zhì)效應(yīng)(Matrix effect,ME)。一般以基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率(A)和溶劑標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率(B)的比值評(píng)估基質(zhì)效應(yīng),若ME值為0.8~1.2,則表明基質(zhì)效應(yīng)不明顯[17]。本研究按照實(shí)驗(yàn)方法制備10、20、50、100、250、500、1 000 ng/mL溶劑標(biāo)準(zhǔn)溶液,以及配合飼料、濃縮飼料、精料補(bǔ)充料、預(yù)混合飼料的空白基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)溶液來(lái)評(píng)估飼料的基質(zhì)效應(yīng)。結(jié)果表明,4種AGs在上述飼料中均存在一定的基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng),ME值為1.0~2.4。為消除基質(zhì)效應(yīng)帶來(lái)的定量偏差,采用基質(zhì)混合標(biāo)準(zhǔn)工作液進(jìn)行定量。
2.方法的線性范圍、檢出限和定量限。選取配合飼料、濃縮飼料、精料補(bǔ)充料和預(yù)混合飼料4種空白飼料樣品,按前處理方法得到空白基質(zhì)溶液,配制4種AGs的10、20、50、100、250、500、1 000 μg/L基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)系列溶液,以定量離子的峰面積和相應(yīng)的質(zhì)量濃度求出線性方程和相關(guān)系數(shù)(r),結(jié)果見(jiàn)表2。結(jié)果表明,4種藥物在10~1 000 μg/L質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)(r)為0.995 9~0.999 9,特征離子色譜圖見(jiàn)圖7。用空白飼料制備0.05、0.1、0.2、0.3 mg/kg添加樣品,處理后測(cè)定,分別選取3倍和10倍信噪比為方法的檢出限(LOD)和定量限(LOQ)[17]。計(jì)算得出,方法的LOD和LOQ分別為0.05 mg/kg和0.1 mg/kg。
表2 基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線的線性方程和相關(guān)系數(shù)
圖7 豬配合飼料基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)溶液(20 μg/L)中4種AGs的多反應(yīng)監(jiān)測(cè)色譜圖
3.方法的回收率和精密度。添加低、中、高濃度目標(biāo)物至配合飼料、濃縮飼料、精料補(bǔ)充料和預(yù)混合飼料空白樣品,考察加標(biāo)回收率,每種添加水平做6次重復(fù),連做3 d。結(jié)果表明,4種AGs的平均回收率均在69.8%~101.7%范圍內(nèi),批間和批內(nèi)的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)均小于15%(見(jiàn)表3)。
表3 4種AGs在飼料樣品中不同添加水平下的回收率和精密度 (n=6)
4.實(shí)際樣品測(cè)定。根據(jù)所建立的測(cè)定方法,對(duì)采自養(yǎng)殖場(chǎng)的20份飼料樣品(配合飼料、濃縮飼料、精料補(bǔ)充料和預(yù)混合飼料)進(jìn)行檢測(cè)。結(jié)果顯示,20份樣品中4種AGs均低于檢出限,該結(jié)果表明所收集的飼料均未檢出陽(yáng)性,也同時(shí)反映出禁抗政策得到很好的實(shí)施。
本研究采用固相萃取法結(jié)合液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜技術(shù),建立了配合飼料、濃縮飼料、精料補(bǔ)充料、預(yù)混合飼料中鏈霉素、雙氫鏈霉素、卡那霉素和安普霉素殘留的定量測(cè)定方法。為了規(guī)避使用離子對(duì)試劑和獲得較高的目標(biāo)物回收率,對(duì)色譜柱、提取條件、凈化條件等參數(shù)進(jìn)行了優(yōu)化。最終確定飼料樣品經(jīng)10%三氯乙酸溶液(含0.002 mol/L EDTA-2Na、0.01 mol/L磷酸二氫鉀,pH為7.5±0.2)提取,HLB柱凈化,采用液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜測(cè)定。4種藥物的檢出限為0.05 mg/kg,定量限為0.1 mg/kg,平均回收率均在69.8%~101.7%范圍內(nèi),批內(nèi)和批間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于15%。該方法簡(jiǎn)便、快速、準(zhǔn)確、靈敏,無(wú)離子對(duì)試劑干擾,可用于飼料中鏈霉素、雙氫鏈霉素、卡那霉素和安普霉素的測(cè)定,為飼料質(zhì)量安全監(jiān)管提供了重要的技術(shù)手段。
農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量與安全2022年5期