丁 聰,翟 濤,李 玲,王曉岑,宮鵬濤,張西臣,李建華,李 新 (吉林大學(xué) 動(dòng)物醫(yī)學(xué)學(xué)院,吉林 長(zhǎng)春 130062)
鴿毛滴蟲(Trichomonasgallinae)是一種嚴(yán)重危害鴿養(yǎng)殖業(yè)的寄生性原蟲,引起鴿消化道出現(xiàn)嚴(yán)重潰瘍、黃白色的干酪性壞死病變?yōu)橹饕卣鞯镍澝蜗x病,該病又稱“鴿癀”[1-2],這種病可以阻塞雛鴿的食道和呼吸道,致使患病雛鴿死于饑餓或窒息[3-4]。鴿毛滴蟲主要寄生于禽類的消化道上部,多見于咽部、食管、肝臟等部位,嚴(yán)重者可引起全身感染。SPRIGGS等[5]發(fā)現(xiàn)鴿毛滴蟲可侵入禽類頭部,寄生于腦部和眼部。鴿毛滴蟲病呈世界性分布[6-8],對(duì)不同品種和年齡段的鴿都具有傳染性,其中雛鴿和青年鴿最易感染。JIANG等[9]對(duì)山東省5個(gè)鴿場(chǎng)和1個(gè)鴿屠宰場(chǎng)進(jìn)行調(diào)查,發(fā)現(xiàn)鴿毛滴蟲感染率為33.8%,青年鴿患病率最高,為35.2%,種鴿患病率為13.6%,雛鴿患病率為4.8%。在北京地區(qū),鴿總患病率為28.30%,雛鴿患病率最高,為33.16%,其次為青年鴿和種鴿,分別為30.05%和20.59%[10]。鴿毛滴蟲病的主要傳播方式為經(jīng)口傳播。鴿子通過采食帶有鴿毛滴蟲蟲體的飼料、飲水而發(fā)生感染。因患鴿的毛滴蟲大量聚集在口腔潰瘍病灶,導(dǎo)致鴿口腔唾液內(nèi)含有大量的毛滴蟲,故而易感鴿通過和患鴿或帶蟲鴿子的接吻也會(huì)導(dǎo)致感染[11]。除發(fā)病鴿以外,無(wú)癥狀的帶蟲鴿也是重要的傳染源[12],導(dǎo)致鴿毛滴蟲病在鴿場(chǎng)很難被清除,給鴿養(yǎng)殖業(yè)造成嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失[13]。目前治療鴿毛滴蟲病主要使用甲硝唑等藥物,尚無(wú)其他有效措施。
鴿毛滴蟲鑒定可采用形態(tài)學(xué)觀察和ITS1/5.8S/ITS2基因分析方法。形態(tài)學(xué)觀察主要為咽拭子涂片鏡檢,當(dāng)觀察到活的鴿毛滴蟲蟲體時(shí)即可確診?;贗TS1/5.8S/ITS2基因的系統(tǒng)發(fā)育分析及限制性內(nèi)切酶片段長(zhǎng)度多態(tài)性分析可進(jìn)一步確定鴿毛滴蟲的基因型,可將鴿毛滴蟲分為3種基因型:基因型A、基因型B及基因型T.tenax(包括T.tenax-樣分離株)[3,14-15]。鴿毛滴蟲的體外培養(yǎng)主要通過采集病鴿口咽拭子,培養(yǎng)基可使用RPMI1640培養(yǎng)基、肝浸湯培養(yǎng)基、TYM培養(yǎng)基或Hollander瓊脂培養(yǎng)基等。動(dòng)物感染模型的建立是研究鴿毛滴蟲病的關(guān)鍵途徑。王飛等[16]、羅峰等[17]和YOUSSEFI等[18]成功建立了鴿毛滴蟲感染動(dòng)物模型。但國(guó)內(nèi)外對(duì)鴿毛滴蟲病的研究尚不十分系統(tǒng)。因此,有待加強(qiáng)鴿毛滴蟲病的研究,以保障鴿養(yǎng)殖業(yè)的健康發(fā)展。
本研究從感染鴿毛滴蟲的落地王鴿分離出鴿毛滴蟲,對(duì)蟲體進(jìn)行體外純培養(yǎng);通過形態(tài)學(xué)和超微結(jié)構(gòu)觀察鑒定蟲體;基于ITS1/5.8S/ITS2基因序列分析確定其基因型;以不同劑量蟲體經(jīng)口感染鴿建立鴿毛滴蟲感染動(dòng)物模型。為進(jìn)一步研究鴿毛滴蟲致病機(jī)理、免疫機(jī)制及藥物篩選等提供材料和方法。
1.1 試驗(yàn)動(dòng)物患病落地王鴿和40日齡健康落地王鴿均購(gòu)自長(zhǎng)春市某養(yǎng)鴿場(chǎng)。
1.2 材料瑞氏-吉姆薩染色液和Vero細(xì)胞,保存于本實(shí)驗(yàn)室;RPMI1640培養(yǎng)基、青鏈霉素混合液(雙抗)、胎牛血清均購(gòu)自BI公司;DH5α感受態(tài)細(xì)胞購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司; pMDTM18-T Vector Cloning Kit、DL2000 DNA Marker、DNA膠回收試劑盒、HaeⅢ限制性內(nèi)切酶、PrimeSTAR GXL DNA Polymerase等均購(gòu)自TaKaRa公司;細(xì)胞/血液基因組提取試劑盒購(gòu)自天根生化科技(北京)有限公司;BsiEⅠ限制性內(nèi)切酶購(gòu)自賽默飛世爾科技公司;多聚賴氨酸購(gòu)自Sigma公司。
1.3 鴿毛滴蟲的分離鑒定
1.3.1牛肝浸湯培養(yǎng)基的配制 取15 g新鮮牛肝,研磨后放入燒杯。加入100 mL蒸餾水,混勻后放入4℃靜置過夜。次日取出蒸煮1 h。用紗布過濾取上清液,后加入0.5 g氯化鈉、1 g麥芽糖、0.2 gL-半胱氨酸鹽酸鹽、2 g蛋白胨直至溶解,再用濾紙過濾。將濾液加蒸餾水定容至100 mL,121℃條件下30 min高溫高壓滅菌。冷卻后置于4℃保存。取4 mL的無(wú)菌肝浸湯于無(wú)菌試管中,加入60 μL雙抗溶液和1 mL滅活的胎牛血清,混勻后置于4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.2鴿毛滴蟲的分離 取患鴿毛滴蟲病落地王鴿腦組織于75%乙醇溶液中浸泡5 min,更換75%乙醇溶液后再次浸泡5 min,取中間未被浸泡的部分,在200目細(xì)胞篩上研磨至鋪好Vero細(xì)胞的6孔板中,加入1 mL含2%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基,在37℃,5% CO2的條件下培養(yǎng)48 h。取培養(yǎng)上清涂片后鏡檢鴿毛滴蟲。
1.3.3鴿毛滴蟲的純化培養(yǎng) 取上述1 mL培養(yǎng)上清,2 500 ×g離心10 min收集蟲體,棄上清,使用PBS清洗2次,取適量PBS重懸沉淀,接種于5 mL牛肝浸湯培養(yǎng)基內(nèi)進(jìn)行第1代傳代培養(yǎng),每隔24 h傳代1次,直至剩下純凈的鴿毛滴蟲。繼續(xù)培養(yǎng)無(wú)菌的鴿毛滴蟲至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,使用DMSO將部分蟲體凍存于液氮中。
1.4 鴿毛滴蟲形態(tài)學(xué)觀察
1.4.1鴿毛滴蟲光學(xué)顯微鏡形態(tài)觀察 于2 500 ×g離心10 min收集蟲體,棄上清,使用PBS清洗2次,取適量PBS重懸沉淀,涂于載玻片上,用酒精燈加熱固定,經(jīng)瑞氏-吉姆薩染色后,按低倍鏡→高倍鏡的順序觀察涂片。
1.4.2鴿毛滴蟲掃描電子顯微鏡(SEM)形態(tài)觀察 收集蟲體使用多聚賴氨酸進(jìn)行蟲體的固定,染色后在SEM下進(jìn)行觀察。
1.4.3鴿毛滴蟲透射電子顯微鏡(TEM)形態(tài)觀察 收集蟲體緩慢加入1 mL 2.5%的戊二醛固定液,之后進(jìn)行超薄切片樣品制備,染色后于TEM下進(jìn)行觀察。
1.5 鴿毛滴蟲基因分型的鑒定
1.5.1引物的設(shè)計(jì)與合成 引物序列參考ALREFAEI等[7]研究中使用的鴿毛滴蟲TFR引物(TFR1:5′-TGCTTCAGTTCAGCGGGTCTTCC-3′,TFR2:5′-CGGTAGGTGAACCTGCCGTTGG-3′),由吉林庫(kù)美生物公司合成。
1.5.2ITS1/5.8S/ITS2基因的PCR擴(kuò)增及測(cè)序 收集蟲體用細(xì)胞/血液基因組提取試劑盒提取蟲體全基因組DNA。以獲得的基因組DNA為模板,擴(kuò)增ITS1/5.8S/ITS2基因,反應(yīng)體系(50 μL):5×Buffer 10 μL,dNTP 4 μL,PrimeSTAR GXL Enzymes 1 μL,TFR1 1 μL,TFR2 1 μL,基因組DNA 2 μL,ddH2O 31 μL。PCR擴(kuò)增程序:98℃ 2 min;98℃ 10 s,60℃ 15 s,68℃ 40 s,共30個(gè)循環(huán);68℃延伸5 min,4℃保存。通過1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR產(chǎn)物,并用膠回收試劑盒回收目的片段。將擴(kuò)增后片段連接至pMD-18T載體,轉(zhuǎn)化至E.coliDH5α感受態(tài),均勻涂于含有氨芐抗性的培養(yǎng)皿,37℃培養(yǎng)12 h后,挑取陽(yáng)性單菌落進(jìn)行測(cè)序。
1.5.3鴿毛滴蟲ITS1/5.8S/ITS2基因系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化分析 利用NCBI網(wǎng)站的BLAST工具對(duì)測(cè)序結(jié)果進(jìn)行比對(duì),獲得與其同源性較高的序列,使用MEGA 6.0軟件對(duì)測(cè)序結(jié)果及與其同源性較高的序列進(jìn)行聚類分析,統(tǒng)計(jì)方法采用鄰接法,系統(tǒng)發(fā)生檢測(cè)采用自舉法,置信值為重復(fù)抽樣1 000次。
1.5.4限制性片段長(zhǎng)度多態(tài)性分析 分別使用限制性內(nèi)切酶BsiEⅠ和HaeⅢ對(duì)擴(kuò)增出的ITS1/5.8S/ITS2基因片段進(jìn)行酶切鑒定,BsiEⅠ可以將基因型為A或B的片段進(jìn)行切割,HaeⅢ可以將基因型為B的片段進(jìn)行切割,基因型為T.tenax(包括T.tenax樣分離株)的片段不會(huì)被BsiEⅠ或HaeⅢ切割[9]。
1.6 鴿毛滴蟲感染動(dòng)物模型的建立將20只40日齡健康落地王鴿分為4組,每組5只,Ⅰ組灌服生理鹽水為對(duì)照,Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ組分別灌服1×105,1×106,1×107個(gè)鴿毛滴蟲,連續(xù)5 d。觀察鴿臨床癥狀,1周后采集鴿口咽拭子鏡下觀察鴿毛滴蟲感染情況,同時(shí)剖檢鴿觀察口咽病理變化。
2.1 鴿毛滴蟲形態(tài)學(xué)觀察
2.1.1鴿毛滴蟲培養(yǎng) 經(jīng)Vero細(xì)胞培養(yǎng)24 h后,鴿毛滴蟲生長(zhǎng)狀態(tài)良好,部分蟲體聚團(tuán),呈橢圓形或梨形,運(yùn)動(dòng)迅速,活力強(qiáng),Vero細(xì)胞輪廓清晰,胞漿透亮,細(xì)胞形態(tài)完整(圖1A);培養(yǎng)48 h后,鴿毛滴蟲生長(zhǎng)狀態(tài)良好,大量蟲體聚團(tuán),Vero細(xì)胞部分裂解,從壁上脫落(圖1B)。經(jīng)牛肝浸湯培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h 的鴿毛滴蟲生長(zhǎng)狀態(tài)良好(圖1C);培養(yǎng)48 h后,鴿毛滴蟲大量死亡(圖1D)。鴿毛滴蟲呈橢圓形或梨形,長(zhǎng)8~10 μm,寬4~6 μm。
A.經(jīng)Vero細(xì)胞培養(yǎng)24 h;B.經(jīng)Vero細(xì)胞培養(yǎng)48 h;C.經(jīng)牛肝浸湯培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h;D.經(jīng)牛肝浸湯培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h圖1 鴿毛滴蟲活體形態(tài)學(xué)觀察(400×)
2.1.2鴿毛滴蟲吉姆薩染色后形態(tài)學(xué)觀察 經(jīng)瑞氏-吉姆薩染色后,蟲體被染成藍(lán)紫色,呈橢圓形或不規(guī)則形(圖2A)。細(xì)胞核呈橢圓形,且被染成藍(lán)紫色,位于蟲體前端。4根前鞭毛呈紫紅色。軸柱顏色淺于原生質(zhì),且稍突出于蟲體后緣。一側(cè)可清晰觀察到波動(dòng)膜外邊緣的輪廓(圖2B)。
A.20倍放大蟲體形態(tài);B.100倍放大蟲體形態(tài)(F.鞭毛;B.毛基體;N.細(xì)胞核;UM.波動(dòng)膜;AX.軸柱)圖2 鴿毛滴蟲吉姆薩染色后形態(tài)學(xué)觀察
2.1.3鴿毛滴蟲掃描電鏡形態(tài)觀察 鴿毛滴蟲呈圓形、卵圓形或梨形,輪廓清晰,表面有許多孔洞且凹凸不平。蟲體前端毛基體處伸出長(zhǎng)短不一的4根鞭毛,是蟲體的運(yùn)動(dòng)器官。在蟲體的中央,有一根細(xì)長(zhǎng)的軸柱以自前向后的方向延伸至蟲體游離的后鞭毛之外。蟲體一側(cè)有起始于蟲體前端終止于蟲體側(cè)后方的波動(dòng)膜(圖3A)。
2.1.4鴿毛滴蟲透射電鏡形態(tài)觀察 TEM下可見呈橢圓形或卵圓形的細(xì)胞核位于蟲體的前端中央,細(xì)胞核周圍的核膜粗糙不齊,細(xì)胞質(zhì)中含有大量的糖原顆粒,在蟲體內(nèi)部還可見到氫化酶體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體等細(xì)胞器,還有食物泡等結(jié)構(gòu),蟲體周圍可以觀察到覆蓋于外側(cè)的波動(dòng)膜和游離的鞭毛等結(jié)構(gòu)(圖3B)。
A.鴿毛滴蟲掃描電鏡形態(tài)觀察;B.鴿毛滴蟲透射電鏡形態(tài)觀察(N.細(xì)胞核;NU.核仁;NM.核膜;G.糖原顆粒;ER.內(nèi)質(zhì)網(wǎng);GO.高爾基體;C.中脈;UM.波動(dòng)膜;AX.軸柱;H.氫化酶體;B.鞭毛基體;F.鞭毛;V.食物泡)圖3 鴿毛滴蟲電子顯微鏡下形態(tài)觀察
2.2 鴿毛滴蟲基因分型的鑒定
2.2.1鴿毛滴蟲ITS1/5.8S/ITS2基因系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹的構(gòu)建 使用引物TFR1和TFR2對(duì)鴿毛滴蟲ITS1/5.8S/ITS2基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增,經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳分析,可在350 bp左右的位置看見明顯條帶(圖4A)。將擴(kuò)增得到的ITS1/5.8S/ITS2片段的測(cè)序結(jié)果與GenBank上登錄的基因序列進(jìn)行BLAST比對(duì),顯示其與英國(guó)分離株MT632479.1同源性為100%。使用MEGA 6.0軟件對(duì)ITS1/5.8S/ITS2基因及與其同源性較高的序列進(jìn)行聚類分析,可以認(rèn)定所分離得到的毛滴蟲即為鴿毛滴蟲(圖4B)。
A.ITS1/5.8S/ITS2的PCR擴(kuò)增(M.DL2000 DNA Marker;1.ITS1/5.8S/ITS2基因PCR產(chǎn)物);B.ITS1/5.8S/ITS2基因系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹圖4 鴿毛滴蟲ITS1/5.8S/ITS2基因系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹
2.2.2限制性內(nèi)切酶片段長(zhǎng)度多態(tài)性分析 擴(kuò)增得到的ITS1/5.8S/ITS2序列片段經(jīng)限制性內(nèi)切酶BsiEⅠ處理后被切割為大小為234 bp和125 bp的2個(gè)片段;經(jīng)限制性內(nèi)切酶HaeⅢ處理后未被切割,可以判定該株鴿毛滴蟲的基因型為A型(圖5)。
M.DL2000 DNA Marker;1.未酶切;2.BsiEⅠ單酶切;3.HaeⅢ單酶切圖5 限制性內(nèi)切酶片段長(zhǎng)度多態(tài)性分析
2.3 鴿毛滴蟲感染動(dòng)物模型的建立Ⅰ組落地王鴿灌服生理鹽水,為對(duì)照組,Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ組落地王鴿每天分別灌服1×105,1×106,1×107個(gè)毛滴蟲,連續(xù)5 d。對(duì)照組鴿只死亡率為0,無(wú)明顯臨床癥狀,口咽部剖檢均未見病變(圖6A),取口咽拭子鏡檢鴿毛滴蟲感染率為0(圖6E);攻蟲量為1×105個(gè)時(shí),鴿只死亡率為0,無(wú)明顯臨床癥狀,口咽部剖檢均未見明顯病變(圖6B),取口咽拭子鏡檢顯示,鴿毛滴蟲感染率為40%(圖6F);攻蟲量為1×106個(gè)時(shí),鴿只死亡率為20%,出現(xiàn)精神萎靡、食欲不振、羽毛松亂、腹瀉等癥狀,口咽部剖檢可見黃色粘液或黃白色干酪樣物質(zhì)(圖6C),取口咽拭子鏡檢顯示,鴿毛滴蟲感染率為80%(圖6G);攻蟲量為1×107個(gè)時(shí),鴿只迅速死亡,死亡率為100%,臨床癥狀加劇,甚至無(wú)法站立(圖6D),取口咽拭子鏡檢顯示,鴿毛滴蟲感染率為80%(圖6H)。
A~D.分別為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ組落地王鴿口咽病理變化;E~H.分別為Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ組落地王鴿口咽拭子鏡檢圖6 鴿毛滴蟲感染動(dòng)物模型的建立
鴿毛滴蟲主要寄生于禽類的消化道上部,多見于咽部、食管、肝臟等部位,嚴(yán)重者可引起全身感染,甚至入侵大腦[4]。鴿毛滴蟲的體外培養(yǎng)主要通過采集病鴿口咽拭子,接種于含抗生素及血清的培養(yǎng)基中37℃恒溫培養(yǎng)。培養(yǎng)基可使用RPMI1640培養(yǎng)基、肝浸湯培養(yǎng)基、TYM培養(yǎng)基或Hollander瓊脂培養(yǎng)基,培養(yǎng)24~48 h后收集蟲體,經(jīng)光學(xué)及電子顯微鏡對(duì)蟲體進(jìn)行形態(tài)學(xué)觀察,確認(rèn)是否為鴿毛滴蟲。楊秀環(huán)等[19]、陳海華等[20]和陸雨楠等[21]經(jīng)光學(xué)顯微鏡觀察可見鴿毛滴蟲呈圓形、卵圓形、梨形或紡錘形,有折光性,運(yùn)動(dòng)活潑;經(jīng)掃描顯微鏡觀察可見鴿毛滴蟲多呈卵圓形或梨形,少數(shù)呈球形,蟲體表面分布皺褶;長(zhǎng)5~9 μm,寬2~9 μm,具有4根前鞭毛,1根延伸至蟲體的后緣以外的軸柱,波動(dòng)膜起始于蟲體的前端,終止在蟲體后端的稍前方。MEHLHORN等[22]經(jīng)透射電子顯微鏡觀察可見鴿毛滴蟲細(xì)胞質(zhì)中含有大量的糖原顆粒及氫化酶體;在蟲體內(nèi)部可見內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、高爾基體等細(xì)胞器,還有食物泡等。蟲體周圍可以觀察到覆蓋于外側(cè)的波動(dòng)膜和游離的鞭毛等。本研究成功從落地王鴿腦組織中分離出鴿毛滴蟲,并使用Vero細(xì)胞及牛肝浸湯培養(yǎng)基對(duì)鴿毛滴蟲進(jìn)行體外純培養(yǎng)。該株鴿毛滴蟲形態(tài)與前人研究結(jié)果一致。
目前鑒定鴿毛滴蟲的基因型主要依賴ITS1/5.8S/ITS2 基因的系統(tǒng)發(fā)育分析及限制性內(nèi)切酶片段多態(tài)性分析,可將鴿毛滴蟲分為3種基因型:基因型A、基因型B及基因型T.tenax(包括T.tenax樣分離株)[3,14-15]。已報(bào)道蟲體基因型與致病性相關(guān)[9],A型鴿毛滴蟲的致病性相比于B型更強(qiáng),其感染的家鴿更易出現(xiàn)嚴(yán)重的口腔病變。FENG等[10]對(duì)北京地區(qū)和JIANG等[9]對(duì)山東地區(qū)的鴿毛滴蟲分別進(jìn)行ITS1/5.8S/ITS2基因分析,均檢出A型和B型鴿毛滴蟲。ELKHATAM等[23]對(duì)埃及米努菲亞地區(qū)的鴿毛滴蟲進(jìn)行分析,確定其基因型為A型。西歐和南歐的野生鴿群中均檢出A型及B型鴿毛滴蟲[24]。西班牙東部鴿群中流行的A型鴿毛滴蟲占76.1%,B型鴿毛滴蟲占20.5%,混合感染占3.4%[25]。本研究通過對(duì)分離的鴿毛滴蟲進(jìn)行基于ITS1/5.8S/ITS2基因系統(tǒng)發(fā)育分析及限制性內(nèi)切酶片段長(zhǎng)度多態(tài)性分析,確定其基因型為A型,與英國(guó)分離株MT632479.1序列一致[26]。為研究長(zhǎng)春地區(qū)鴿毛滴蟲病的流行情況、蟲株致病性和基因型的相關(guān)性提供了依據(jù)。
鴿毛滴蟲病的發(fā)生發(fā)展是鴿毛滴蟲和免疫系統(tǒng)相互作用的病理過程,動(dòng)物感染模型的建立是研究鴿毛滴蟲致病性和防治技術(shù)的關(guān)鍵途徑。王飛等[16]使用25~30日齡肉鴿灌服1×106個(gè)毛滴蟲,連續(xù)5 d,鴿只剖檢可見口腔和咽喉黏膜出現(xiàn)白色干酪樣沉著物,死亡率為0,發(fā)病率為80%。羅峰等[17]使用120日齡健康鴿口腔接種1×107個(gè)鴿毛滴蟲,連續(xù)觀察15 d,鴿只感染率為100%,死亡率為18.75%。YOUSSEFI等[18]使用6周齡健康鴿口腔接種4×104個(gè)鴿毛滴蟲,連續(xù)觀察7 d,鴿只感染率為100%,死亡率為0。肉鴿對(duì)鴿毛滴蟲感染的抵抗力會(huì)隨著年齡增長(zhǎng)而增強(qiáng)[9],故肉鴿日齡的選擇十分關(guān)鍵。25日齡肉鴿雖易感鴿毛滴蟲,但需母鴿喂食鴿乳及飼料,在實(shí)驗(yàn)室條件下不易存活;120日齡的肉鴿對(duì)鴿毛滴蟲感染的抵抗力較強(qiáng),在實(shí)際生產(chǎn)中多為隱性感染。40日齡肉鴿已脫離母鴿,獨(dú)立進(jìn)食,可在實(shí)驗(yàn)室條件下穩(wěn)定飼養(yǎng),且40日齡肉鴿仍屬于實(shí)際生產(chǎn)中鴿毛滴蟲病發(fā)病率較高的群體[10]。故本研究選用40日齡健康肉鴿(落地王鴿),每日口腔接種1×106個(gè)強(qiáng)致病性的鴿毛滴蟲,連續(xù)5 d,在攻蟲后采集鴿只口咽拭子鏡檢、剖檢觀察感染鴿只口咽病理變化,成功建立了鴿毛滴蟲感染動(dòng)物模型。
綜上,本研究成功分離鑒定了1株基因A型鴿毛滴蟲,成功進(jìn)行體外培養(yǎng)并建立感染鴿模型,為研究鴿毛滴蟲免疫機(jī)制及藥物篩選等提供了技術(shù)支撐。
中國(guó)獸醫(yī)學(xué)報(bào)2022年5期