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低溫誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳菌絲成熟的機(jī)制研究

2022-06-12 01:20許子潔曹子健胡寶徐子昕王晶鄭素月王春霞
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年10期
關(guān)鍵詞:電導(dǎo)率

許子潔 曹子健 胡寶 徐子昕 王晶 鄭素月 王春霞

摘要:為探究低溫誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳菌絲成熟的機(jī)制,為糙皮側(cè)耳在實際栽培與生產(chǎn)中提供理論依據(jù)與技術(shù)支撐,以糙皮側(cè)耳菌株“雙抗黑平”為試驗材料,測定不同溫度誘導(dǎo)處理后糙皮側(cè)耳的出菇情況及菌絲生理指標(biāo)的變化。設(shè)置3種不同溫度處理,分別為對照組(25 ℃)、低溫處理組(17 ℃)、高溫處理組(33 ℃)。結(jié)果表明,經(jīng)低溫17 ℃誘導(dǎo)處理糙皮側(cè)耳后可正常出菇,而25、33 ℃誘導(dǎo)處理后均無原基形成,無法形成子實體。經(jīng)不同溫度誘導(dǎo)處理后,DAB染色顯示處理組中菌絲的染色程度較深。經(jīng)不同溫度誘導(dǎo)處理后,處理組中可溶性糖、可溶性蛋白和游離脯氨酸的含量顯著高于對照組(P<0.05),并且33 ℃高溫處理組中各個物質(zhì)的含量最高;丙二醛和相對電導(dǎo)率的變化趨勢基本一致,均是處理組顯著高于對照組(P<0.05);菌絲中CAT活性的大小依次為33 ℃處理組>17 ℃處理組>25 ℃處理組;高溫處理組菌絲POD活性最高,達(dá)到115.63 U/(g·min),但17 ℃處理組與對照組無明顯差別(P>0.05);不同溫度誘導(dǎo)處理7 d,對照組中SOD活性最高,然而經(jīng)12 h和24 h處理后,處理組顯著高于對照組。

關(guān)鍵詞:糙皮側(cè)耳;低溫刺激;DAB;滲透調(diào)節(jié)物質(zhì);電導(dǎo)率;保護(hù)酶

中圖分類號:S646.1+41.04 ??文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A

文章編號:1002-1302(2022)10-0133-07

目前,“一葷一素一菇”被稱為最恰當(dāng)?shù)纳攀辰Y(jié)構(gòu)[1]。糙皮側(cè)耳(Pleurotus ostreatus)是食用菌范圍里栽培歷史深遠(yuǎn)、種植廣、發(fā)展快、產(chǎn)量高的菌種,又名平菇、牡蠣菇[2],良好的市場銷路和豐富的價值,使其成為世界上最受歡迎的食用菌之一[3]。

環(huán)境溫度是調(diào)控食用菌生長發(fā)育最活躍和具有重大意義的因素,食用菌在不一樣的生長階段,對溫度的要求也都不同,菌絲發(fā)育期一般所需溫度較高,而子實體期相對較低。郭勇等分析鳳尾菇、靈芝等菌絲在不同溫度下的生長狀態(tài),發(fā)現(xiàn)在最適溫度時菌絲生長迅速且顏色濃白、邊緣整齊;當(dāng)溫度降低10 ℃時,菌絲生長速度降低,顏色變淺,邊緣不整齊,菌絲間橫隔較短,鎖狀聯(lián)合密集,菌絲發(fā)育不健全[4]。沈穎越等發(fā)現(xiàn)短時間冷刺激或持續(xù)溫差刺激可使肺形側(cè)耳從營養(yǎng)生長期轉(zhuǎn)化進(jìn)入生殖期[5]。Sakamoto等研究發(fā)現(xiàn)金針菇菌絲在常溫黑暗條件下無法出菇,經(jīng)過13~16 ℃低溫刺激后,金針菇子實體形成[6]。溫嘉偉對白靈側(cè)耳菌絲進(jìn)行 0~4 ℃持續(xù)3~5 d的低溫脅迫,促使原基形成[7]。因此,低溫誘導(dǎo)對食用菌菌絲成熟、原基形成及子實體生長發(fā)育過程都具有重要作用。

糙皮側(cè)耳作為變溫結(jié)實性食用菌之一,需經(jīng)歷復(fù)雜的生化、生理低溫應(yīng)激反應(yīng),才能促使菌絲成熟,完成營養(yǎng)生長往生殖生長的轉(zhuǎn)變。目前,關(guān)于糙皮側(cè)耳的研究多集中于栽培料[8-9]、不同基質(zhì)及外源添加物[10-11]對平菇生長的影響,對低溫誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳菌絲成熟機(jī)制的研究甚少。本研究以糙皮側(cè)耳菌株“雙抗黑平”為試驗材料,測定低溫誘導(dǎo)處理糙皮側(cè)耳菌絲后出菇情況、活性氧(reactive oxygen species,ROS)、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量、超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過氧化物酶(perxidase,POD)、過氧化氫酶(catalase,CAT)、丙二醛(malondialdehyd,MDA)等生理指標(biāo)的變化,研究菌絲成熟的生理機(jī)制,為更加深入理解糙皮側(cè)耳菌絲的生長發(fā)育過程,進(jìn)一步為實際栽培生產(chǎn)提供理論依據(jù)與技術(shù)支撐。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

糙皮側(cè)耳菌株“雙抗黑平”,保存于河北工程大學(xué)園林與生態(tài)工程學(xué)院食用菌研究室。

1.2 培養(yǎng)環(huán)境與方法

本試驗于2020年3月至2021年6月在河北工程大學(xué)食用菌研究室完成。

1.2.1 培養(yǎng)基

PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200.0 g,瓊脂粉20.0 g,葡萄糖20.0 g,磷酸二氫鉀3.0 g,硫酸鎂1.5 g,維生素B 10 mg,1 L水。

1.2.2 菌絲培養(yǎng)

在超凈工作臺中無菌環(huán)境下將待測菌株接種于一次性35 mm小培養(yǎng)皿中,待菌絲長滿后,選取長勢良好的“雙抗黑平”再次重復(fù)接種操作進(jìn)行活化,活化3次后備用;接種直徑5 mm菌絲于鋪有玻璃紙的一次性直徑90 mm培養(yǎng)皿中,25 ℃ 恒溫培養(yǎng)箱中暗處理7 d。7 d后,將所有菌絲分3組處理,對照組為25 ℃恒溫繼續(xù)培養(yǎng)7 d,低溫處理組為17 ℃低溫處理7 d,高溫處理組為33 ℃高溫脅迫7 d。然后收集不同溫度處理的菌絲,液氮中速凍,放于-80 ℃冰箱內(nèi)保存?zhèn)溆谩2煌瑴囟忍幚淼木z見圖1。

1.3 各項生理指標(biāo)的測定

DAB染色,參照二氨基聯(lián)苯胺(3,3′-diaminobenzidine-HC1,DAB)染色檢測法[12]??捡R斯亮藍(lán)法[13]測可溶性蛋白含量,蒽酮比色法[14]測可溶性糖含量,酸性茚三酮法[13]測游離脯氨酸含量,MDA含量測定使用硫代巴比妥顯色測定法[13],相對電導(dǎo)率測定參考周冰謙等的方法[15],3種保護(hù)酶(CAT、POD、SOD)活性測定參考王學(xué)奎的方法[13]進(jìn)行調(diào)整。

1.4 栽培管理

按照玉米芯86%、麥麩10%、石灰3%、石膏1%、含水量60%,裝袋后,高壓滅菌1.5 h,冷卻接種。所有菌棒放置25 ℃培養(yǎng)箱內(nèi)避光培養(yǎng),待菌絲長滿料袋后,將料袋隨機(jī)分成3個處理組,分別于17、25、33 ℃恒溫培養(yǎng)箱避光進(jìn)行培養(yǎng),濕度控制在80%~90%,原基形成后,每天早、中、晚各噴水1次,當(dāng)子實體分化5~7 d、菌蓋平展、邊沿略有波浪狀時進(jìn)行采摘,標(biāo)記并記錄體質(zhì)量、生物學(xué)效率。

生物學(xué)效率=子實體濕質(zhì)量(g)/培養(yǎng)料干質(zhì)量(g)×100%。

1.5 數(shù)據(jù)處理

采用SPSS 26.0統(tǒng)計分析軟件進(jìn)行單因素ANOVA差異顯著性分析,進(jìn)行平均值Duncans多重比較(α=0.05),所有試驗數(shù)據(jù)運(yùn)用Microsoft Excel 2016 統(tǒng)計、計算。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同溫度誘導(dǎo)處理對糙皮側(cè)耳出菇的影響

對糙皮側(cè)耳進(jìn)行不同溫度誘導(dǎo)處理后發(fā)現(xiàn),僅有經(jīng)過17 ℃低溫處理的菌絲才能正常形成原基,其顏色有藍(lán)黑和黑色2種,25、33 ℃處理的菌絲均未有原基產(chǎn)生,從而導(dǎo)致無法出菇。由表1可知,經(jīng)過17 ℃低溫刺激后,原基到子實體的過程顏色由深黑、藍(lán)黑逐漸轉(zhuǎn)為淺黑、灰色,子實體菌蓋直徑在5.199~6.828 cm之間,菌蓋厚度在1.272~1.862 cm之間,菌柄長度在3.851~4.658 cm之間,菌柄直徑在1.540~1.633 cm之間,單朵質(zhì)量范圍在169.4~187.5 g之間,生物學(xué)效率最低62.8%,最高達(dá)82.3%。

2.2 不同溫度誘導(dǎo)處理對糙皮側(cè)耳菌絲中活性氧(ROS) 的影響

為檢測經(jīng)不同溫度誘導(dǎo)處理后活性氧的積累,用DAB染色檢測了糙皮側(cè)耳菌絲中H2O2和O-2·的水平,由圖2可知,25 ℃處理后菌絲的染色程度較弱,菌絲顏色較淺(圖2-A);與對照相比較,17 ℃ 和33 ℃誘導(dǎo)處理后的菌絲能觀察到顯著的染色斑點且顏色深,說明溫度對菌絲造成影響會積累H2O2和O-2·,且33 ℃處理后菌絲的顏色更深,提示積累了更多ROS(圖2-B、圖2-C)。

2.3 不同溫度誘導(dǎo)處理對糙皮側(cè)耳可溶性糖和可溶性蛋白含量的影響

可溶性糖、可溶性蛋白是調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)外滲透平衡的重要物質(zhì),物質(zhì)含量與提高細(xì)胞液濃度呈正相關(guān),含量增加可以穩(wěn)定細(xì)胞膜結(jié)構(gòu),調(diào)節(jié)內(nèi)外平衡,從而增強(qiáng)對脅迫環(huán)境的抵抗能力[16]。不同溫度處理對糙皮側(cè)耳菌絲中可溶性糖含量的影響見圖 3-A,17、33 ℃誘導(dǎo)處理后,可溶性糖含量分別為3.51%和5.98%,顯著高于對照組(P<0.05),可溶性糖含量大幅提高,上升幅度分別為55%及165%。

可溶性蛋白含量的增多有利于抵御外界溫度變化對自身的影響,增加抗逆性[17]。糙皮側(cè)耳菌絲中可溶性蛋白含量在不同溫度處理誘導(dǎo)下的變化趨勢見圖3-B,可溶性蛋白含量變化趨勢與可溶性糖含量變化趨勢基本保持一致,17、33 ℃處理7 d后,菌絲中可溶性蛋白含量與對照組相比較,顯著提高41.94%和66.01%(P<0.05),分別達(dá)到11.93、13.95 mg/g,且33 ℃處理組中可溶性蛋白含量顯著高于17 ℃處理組(P<0.05)。

2.4 不同溫度誘導(dǎo)處理對糙皮側(cè)耳菌絲中游離脯氨酸含量的影響

游離脯氨酸同樣是細(xì)胞內(nèi)重要的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)[18-19],脯氨酸作為最大的水溶性氨基酸,是細(xì)胞組織內(nèi)的防凍劑、膜穩(wěn)定劑[20],可抵御或減緩不同溫度脅迫對細(xì)胞的損傷。糙皮側(cè)耳菌絲中游離脯氨酸含量變化見圖4,不同溫度處理對菌絲中游離脯氨酸含量的影響比較顯著,對照組中游離脯氨酸的含量為0.002 1%,經(jīng)17 ℃和33 ℃誘導(dǎo)處理后,游離脯氨酸含量顯著增加(P<0.05),分別提高230.10%和449.17%。并且33 ℃處理組含量最高,與17 ℃低溫處理相比,游離脯氨酸顯著升高(P<0.05)。

2.5 不同溫度誘導(dǎo)處理對糙皮側(cè)耳菌絲中丙二醛(MDA)含量和相對電導(dǎo)率的影響

在逆境環(huán)境下,細(xì)胞膜系統(tǒng)是最先遭受傷害,也是最先反應(yīng)的系統(tǒng)[21]。MDA含量與植物抗逆性呈負(fù)相關(guān)[22],逆境中其含量將會增加。糙皮側(cè)耳菌絲中MDA含量的變化趨勢見圖5-A,MDA含量依次為33 ℃處理組(11.24 μmol/g)>17 ℃處理組(9.54 μmol/g)>25 ℃處理組(7.86 μmol/g),低溫

及高溫誘導(dǎo)處理后,MDA含量均明顯升高(P<0.05),提示遇到外界溫度脅迫時菌絲通過提高M(jìn)DA含量來增強(qiáng)自身的抵抗能力。

環(huán)境脅迫導(dǎo)致細(xì)胞膜透性加大,電解質(zhì)受影響出現(xiàn)紊亂,引起相對電導(dǎo)率變化,并反映了細(xì)胞膜受損程度[23]。相對電導(dǎo)率變化趨勢與MDA基本一致,由圖5-B可知,對照組的相對電導(dǎo)率為33.81%,經(jīng)過不同溫度誘導(dǎo)處理后,菌絲的相對電導(dǎo)率發(fā)生差異性變化,都呈現(xiàn)出明顯上升趨勢(P<0.05),與對照組相比較,17 ℃處理組中相對電導(dǎo)率增幅為60.8%,33 ℃處理組最高 增幅達(dá)到90.2%,說明高溫誘導(dǎo)處理導(dǎo)致菌絲電解質(zhì)外滲嚴(yán)重增加,細(xì)胞膜受損最嚴(yán)重。

2.6 不同溫度誘導(dǎo)處理對糙皮側(cè)耳菌絲中CAT、POD及SOD活性的影響

CAT和POD是植物體內(nèi)保護(hù)酶系統(tǒng)的重要組成部分,能有效清除植物體內(nèi)H2O2和其他過氧化產(chǎn)物,避免細(xì)胞膜的過氧化傷害[24]。糙皮側(cè)耳菌絲中CAT活性在不同溫度誘導(dǎo)處理下的變化情況見圖6。由圖6可知,對照組25 ℃條件下CAT活性為 121.36 mg/(g·min)。17 ℃低溫誘導(dǎo)處理后,CAT活性增加了27.21%,達(dá)到154.39 mg/(g·min)。在33 ℃高溫誘導(dǎo)處理后,CAT活性比17 ℃處理組有小幅增加,達(dá)到169.35 mg/(g·min),但比對照組顯著增加(P<0.05),增幅達(dá)39.5%。

糙皮側(cè)耳菌絲中POD活性的變化趨勢如圖7所示,POD活性變化趨勢與CAT基本一致,大小依次為:33 ℃處理組>17 ℃處理組>25 ℃處理組,25 ℃ 條件下POD活性為80.62 U/(g·min),17 ℃低溫誘導(dǎo)使得POD活性增加,但與對照相比較變化不顯著(P>0.05),然而33 ℃高溫誘導(dǎo)處理后,POD活性顯著增加(P<0.05),平均增幅為43.42%,POD活性高達(dá)115.63 U/(g·min),因此推測糙皮側(cè)耳菌絲對高溫更加敏感,當(dāng)遇到高溫脅迫時,細(xì)胞中POD活性能夠達(dá)到相對較高的水平,從而能快速有效清除多余的H2O2和其他過氧化物,使菌絲內(nèi)部的活性氧和氧自由基處于低含量的狀態(tài),在一定程度上減緩高溫脅迫對菌絲的影響。

SOD同樣是植物體內(nèi)重要的保護(hù)酶之一[25],在逆境脅迫下,能有效清除超氧陰離子自由基,起到保護(hù)作用。糙皮側(cè)耳菌絲中SOD活性在不同溫度誘導(dǎo)下的變化情況見圖8,由圖8可知,對糙皮側(cè)耳菌絲進(jìn)行誘導(dǎo)處理7 d后發(fā)現(xiàn)對照組(25 ℃)菌絲中SOD活性最高,達(dá)到1 237.74 U/g,高于17 ℃和33 ℃處理組。這與POD活性的變化趨勢不一致,因此推測可能是在溫度誘導(dǎo)處理時,短時間內(nèi)SOD活性快速上升,導(dǎo)致處理組菌絲中SOD活性顯著高于對照組,隨著處理時間增加,溫度脅迫會對菌絲的生理狀態(tài)產(chǎn)生非常嚴(yán)重的破壞,所以溫度誘導(dǎo)處理7 d后,對照組中SOD活性最高。為了驗證這一猜想,又對菌絲進(jìn)行了12 h和24 h的溫度誘導(dǎo)處理,試驗結(jié)果顯示處理12 h后,處理組中SOD活性顯著高于對照組;處理24 h后33 ℃處理組中SOD活性最高,17 ℃ 處理組與對照組沒有顯著差別,這與推測基本相符。

3 討論與結(jié)論

糙皮側(cè)耳菌絲適宜生長溫度25 ℃,子實體分化需要的適宜溫度為17 ℃左右,是典型的變溫結(jié)實性食用菌。在經(jīng)受環(huán)境溫度改變時,生物體內(nèi)的活性氧、可溶性蛋白、可溶性糖、游離脯氨酸及保護(hù)酶等都與其抗逆性密切相關(guān)。可溶性糖、可溶性蛋白及游離脯氨酸利用其特質(zhì)調(diào)節(jié)含量,維持細(xì)胞內(nèi)外的滲透平衡[26],其含量的高低與抗性能力呈正相關(guān)。本研究中可溶性蛋白、可溶性糖和游離脯氨酸在高溫及低溫誘導(dǎo)處理下,含量都有明顯升高,且33 ℃高溫組中這些物質(zhì)的含量最高,變化最顯著,提示糙皮側(cè)耳菌絲對高溫更加敏感,表現(xiàn)出對高溫更強(qiáng)的抵抗能力,同時也表明了相對于17 ℃低溫處理,菌絲在高溫處理下遭受到了嚴(yán)重的破壞,因此推測菌絲可能在高溫下受損程度嚴(yán)重,所以導(dǎo)致后期無法形成子實體,造成不出菇的現(xiàn)象。MDA是膜脂過氧化產(chǎn)物之一,是質(zhì)膜受損的重要指標(biāo)[27]。在本研究中菌絲中MDA含量的變化趨勢與相對電導(dǎo)率基本一致,處理組中MDA及相對電導(dǎo)率顯著高于對照組,且33 ℃處理組中最高,本研究結(jié)果也說明了菌絲在高溫下遭受到了相對更加嚴(yán)重的破壞。

當(dāng)外界環(huán)境發(fā)生溫度變化時,食用菌菌絲內(nèi)部的保護(hù)酶系統(tǒng)會被立即激活,抵御逆境對菌絲的傷害。在17、33 ℃溫度誘導(dǎo)處理后,CAT活性顯著高于對照組25 ℃,且33 ℃處理組最高,說明CAT能快速有效清除多余的H2O2和其他過氧化物,使菌絲內(nèi)部的活性氧和氧自由基處于低含量的狀態(tài),在一定程度上減緩溫度脅迫對菌絲的影響。POD活性變化趨勢與CAT基本一致,大小依次為:33 ℃處理組>17 ℃處理組>25 ℃處理組,17 ℃低溫誘導(dǎo)使得POD活性增加,與對照相比較增加幅度較低(P>0.05),然而33 ℃高溫誘導(dǎo)處理后,POD活性顯著增加(P<0.05)。SOD活性的變化情況與前兩者有所不同,經(jīng)7 d誘導(dǎo)處理后,不同處理組SOD活性均低于對照組25 ℃。然后又測了另外2個時間點SOD的活性分別是誘導(dǎo)處理12 h和24 h,結(jié)果顯示在不同溫度處理12 h后,SOD活性的大小依次為33 ℃處理組>17 ℃處理組>25 ℃處理組,且33 ℃和17 ℃處理組都顯著高于對照組。繼續(xù)低溫或高溫處理24 h后,SOD活性的變化趨勢沒有太大改變,依然是33 ℃處理組最高,但是低溫處理組即 17 ℃ 誘導(dǎo)處理24 h后,菌絲中SOD活性與對照組相比沒有顯著上升。因此,推測低溫結(jié)實性菇類在溫度脅迫初期反應(yīng)強(qiáng)烈,SOD活性快速上升,尤其是高溫脅迫后快速響應(yīng),說明高溫對菌絲傷害性更大,但隨著脅迫時間的延長,SOD活性快速增加之后將不再持續(xù)增加,這與管道平、郝海波等的研究結(jié)果[28-29]相似,活性氧在生物體內(nèi)含量的多少,需要整個防御清除系統(tǒng)協(xié)調(diào)合作[30],部分酶活性的高低不能作為直接判斷因素,植物有利用酶促防御系統(tǒng),達(dá)到減緩衰老的目的[31],這可能是SOD酶活性后期出現(xiàn)對照組較高的原因,因此深入透徹了解糙皮側(cè)耳菌絲應(yīng)對溫度脅迫的生理變化過程就需要多層次、多方位、多角度進(jìn)行研究。

綜上所述,研究低溫誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳菌絲成熟時各個生理指標(biāo)變化情況,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)(可溶性糖、可溶性蛋白和游離脯氨酸)、MDA、相對電導(dǎo)率和抗氧化保護(hù)酶活性(CAT、POD和SOD)均有明顯變化,DAB染色后顏色深淺也顯現(xiàn)氧化脅迫狀態(tài)的不同,且33 ℃高溫處理組的各個物質(zhì)的含量最高,說明菌絲對高溫比較敏感,在高溫下受到更加嚴(yán)重的破壞,同時也表明了低溫誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳菌絲成熟時,不止生理指標(biāo)變化,也需要多種機(jī)制的共同調(diào)控。栽培袋出菇試驗,充分驗證低溫誘導(dǎo)刺激是糙皮側(cè)耳形成子實體的必要條件,這與孔令淼等、孔維威等的研究結(jié)果[32-33]一致。本研究為更加深入理解糙皮側(cè)耳菌絲的成熟機(jī)制及低溫誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳在實際栽培生產(chǎn)中的應(yīng)用提供了理論依據(jù)與技術(shù)支撐。

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