張鵬飛,劉新奇,石 菲
(1.榆林市第一醫(yī)院普外科,陜西 榆林 719000;2.空軍軍醫(yī)大學(xué)航空航天醫(yī)學(xué)院,陜西 西安 710032)
胃癌又稱胃腺癌,是世界上第四大癌癥類型,也是癌癥相關(guān)死亡的第二大原因[1]。研究[1]表明,胃癌發(fā)生與性別、年齡有關(guān),男性發(fā)病率高于女性。50歲以上人群中胃癌的發(fā)病率明顯升高[2-3]。胃癌在亞洲、拉丁美洲、中歐和東歐的發(fā)病率較高。由于在早期階段,胃癌沒有臨床表現(xiàn),許多患者在疾病的晚期才被診斷,因此胃癌的治療效果欠佳[2]。雖然病理診斷和手術(shù)治療是提高胃癌患者生存率的有效手段,但由于胃癌的復(fù)發(fā)和轉(zhuǎn)移,胃癌患者的5年生存率仍然很低[3]。微小RNA(microRNA,miRNA)在許多疾病和病理生理過程中起著至關(guān)重要的調(diào)節(jié)作用如腫瘤發(fā)生、白血病、心肌重塑、胚胎發(fā)育和造血干細(xì)胞分化等[4-6]。越來越多的證據(jù)表明,miRNA對胃癌發(fā)生發(fā)展的有著重要調(diào)節(jié)作用,miRNA代謝的紊亂可能是胃癌的潛在發(fā)病機制[4-6]。有研究[7-8]表明,miRNA-35(miR-35)在乳腺癌和黑色素瘤中發(fā)揮重要作用,而miR-35對胃癌的調(diào)控作用尚不明確。本研究擬探究miR-35對胃癌細(xì)胞凋亡的作用及機制。
1.1 實驗材料 澳洲胎牛血清(美國Gibco公司,貨號10100147),低糖DMEM細(xì)胞培養(yǎng)基(美國Gibco公司,貨號31330095),I型膠原(美國Gibco公司,貨號A1048301);Lipofectamine 2000(美國Invitrogen公司,貨號11668030);miRNA核苷酸序列(miR-35序列)(生工生物公司);RNA抽提試劑盒(日本Takara公司,貨號639505)、反轉(zhuǎn)錄試劑盒(日本Takara公司,貨號639549)、擴增試劑盒(日本Takara公司,貨號639503);q-PCR引物由生工生物公司合成;Hoechst33342(南京舟達(dá)生物科技公司,貨號BN12457)、PI(南京舟達(dá)生物科技公司,貨號BN12624)、轉(zhuǎn)移酶介導(dǎo)的缺口末端標(biāo)記(TUNEL)分析試劑(美國Promega公司,貨號PNE0324);抗Caspase 3抗體(美國Abcam公司,貨號ab32147)、抗Bax抗體(美國Abcam公司,貨號ab128873)、抗Bcl-2抗體(美國Abcam公司,貨號ab135745)、抗RhoA抗體(美國Abcam公司,貨號ab3547)和抗β-actin抗體(美國Abcam公司,貨號ab78453);DNA內(nèi)切酶及連接酶(北京百奧萊博科技有限公司,貨號BTN130639、BTN130653)。實時熒光定量PCR儀(美國Applied Biosystems公司,型號ABI7500fast);酶標(biāo)儀(上海沛歐分析儀器有限公司,型號SPS5845);流式細(xì)胞儀(美國Beckman Coulter公司,型號BEC2058);顯微鏡(日本Olympus公司,型號CX21FS1);電泳儀及發(fā)光儀(中國天能公司,型號天能EPS600)。
1.2 實驗方法
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染:人正常胃黏膜上皮細(xì)胞GES-1和胃癌細(xì)胞系MNK-45、MGC803、SCG-7901、AGS購買自蘇州思瑞坦細(xì)胞庫。根據(jù)轉(zhuǎn)染寡核苷酸序列不同分為轉(zhuǎn)染miR-35陰性對照序列(5’-AGC AGC CUU GUA CAG GGC UAU GA-3’)對照組、轉(zhuǎn)染miR-35模擬序列(5’-AAU ACU GCC UGG UAA UGA U-3’)的模擬物組和轉(zhuǎn)染miR-35互補配對序列(5’-UUA UGA CGG ACC AUU ACU A-3’)的抑制劑組[7-8]。轉(zhuǎn)染時將普通培養(yǎng)基去除,換為低血清、不含雙抗的培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)6 h;在此期間,將Lipofectamine 2000和由生工生物公司合成的miRNA相關(guān)核苷酸序列混合均勻,室溫放置30 min,待脂質(zhì)體將核苷酸序列充分包裹;在培養(yǎng)6 h后將適量上述脂質(zhì)體混合液加入到上述低血清培養(yǎng)基中(miRNA相關(guān)核苷酸序列濃度為80 nmol/L)繼續(xù)常規(guī)培養(yǎng)6 h,隨后更換上述培養(yǎng)基為常規(guī)培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)細(xì)胞[9]。
1.2.2 轉(zhuǎn)染效率檢測:將合成的miRNA相關(guān)核苷酸序列(帶有綠色熒光的對照序列)轉(zhuǎn)染進(jìn)細(xì)胞后,利用熒光顯微鏡檢測熒光物質(zhì)的分布情況,以此來判斷核苷酸的轉(zhuǎn)染效率[10]。
1.2.3 q-PCR檢測miRNA表達(dá)量:按照說明書利用RNAiso進(jìn)行細(xì)胞裂解,室溫裂解2 min后加入適量的三氯甲烷震蕩,待溶液完全乳化,室溫放置10 min后見萃取分層,高速離心后取無色上清加入等體積的異丙醇,充分混合后冰凍過夜。離心后棄去上清,加入無水乙醇充分洗滌沉淀,棄去上清,加入DEPC水溶解RNA。根據(jù)說明書配制反應(yīng)液,根據(jù)說明書內(nèi)容設(shè)置參數(shù),并進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄:37 ℃預(yù)熱15 min,42 ℃加熱15 min,85 ℃加熱5 s,反應(yīng)結(jié)束后得到的cDNA用于后續(xù)實驗。根據(jù)擴增試劑盒說明書配制反應(yīng)液,經(jīng)過預(yù)變性和擴增反應(yīng)等步驟完成擴增步驟,利用相對定量法進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,具體擴增條件為:95 ℃預(yù)變性30 s;95 ℃維持5 s,60 ℃維持34 s,進(jìn)行40個循環(huán)[9]。
1.2.4 流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡:利用緩沖液制備細(xì)胞懸液(細(xì)胞密度為1×106/ml),按照Annexin-V/PI凋亡試劑盒說明,制備反應(yīng)用細(xì)胞懸液,然后利用流式細(xì)胞儀檢測細(xì)胞凋亡情況[10]。
1.2.5 形態(tài)學(xué)方法評估細(xì)胞凋亡:根據(jù)發(fā)生凋亡的細(xì)胞核形態(tài)不同,利用Hoechst33342和PI兩種細(xì)胞核染料對細(xì)胞進(jìn)行染色,染料濃度為5 μg/ml。完成染色后利用熒光顯微鏡觀察細(xì)胞核形態(tài)和染色情況,根據(jù)以下分級對細(xì)胞進(jìn)行評估:正常細(xì)胞核(藍(lán)色染色質(zhì)有組織結(jié)構(gòu))、凋亡細(xì)胞核(發(fā)生濃縮或破碎的熒光染色質(zhì))和壞死細(xì)胞核(紅色熒光染色質(zhì))。每組隨機選取5~10個野(20~25個細(xì)胞/野),根據(jù)細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)特征,確定凋亡細(xì)胞占細(xì)胞總數(shù)的百分比。每個培養(yǎng)皿中至少有1000個細(xì)胞被計數(shù)和定量。凋亡指數(shù)計算為凋亡細(xì)胞數(shù)/總細(xì)胞數(shù)×100%[10]。TUNEL染色:利用95%乙醇在緩沖液中室溫固定細(xì)胞系20 min。再利用1% Tritonx-100室溫下固定細(xì)胞1 h,利用過氧化物酶在緩沖液中孵育5 min,DNA碎片末端脫氧核苷酸混合物標(biāo)記TUNEL后在平衡緩沖液中混合90 min。穩(wěn)定的顯色劑二氨基聯(lián)苯胺和蘇木精復(fù)染細(xì)胞[10]。
1.2.6 Western blot技術(shù)檢測蛋白表達(dá)量:利用蛋白酶裂解液制備蛋白樣本;在蛋白樣本中加入緩沖液,利用煮沸方法制備蛋白樣品。按照以下參數(shù)將上述蛋白進(jìn)行電泳:95 V進(jìn)行30 min完成濃縮膠的電泳,隨后調(diào)整為120 V電泳90 min完成分離膠的電泳;繼續(xù)調(diào)整參數(shù)進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,250 mA恒流轉(zhuǎn)膜2 h;按照Caspase 3(1∶3000稀釋)、Bax(1∶5000稀釋)、Bcl-2(1∶3000稀釋)、RhoA(1∶5000稀釋)和β-actin(1∶10000稀釋)抗體說明書配制一定濃度的一抗,室溫孵育一抗4 h,取出條帶后沖洗干凈,配制帶有辣根過氧化物酶的二抗孵育液,隨后室溫孵育1 h,進(jìn)行發(fā)光[10]。
2.1 miR-35在多種胃癌細(xì)胞系中的表達(dá) 與正常胃黏膜上皮細(xì)胞GES-1相比,胃癌細(xì)胞系MNK-45、MGC803、SCG-7901和AGS中miR-35均低表達(dá)(均P<0.05),見圖1。
2.2 miR-35寡核苷酸作用效率驗證 熒光miRNA序列在MNK-45細(xì)胞中的轉(zhuǎn)染效率好(圖2A);miR-35模擬物能夠上調(diào)MNK-45細(xì)胞內(nèi)miR-35的水平(P<0.05),miR-35抑制劑能夠降低MNK-45細(xì)胞內(nèi)miR-35的水平(P<0.05)(圖2B)。
A:光鏡(Hoechst33342和PI細(xì)胞核染色,×200)和熒光顯微鏡(TUNEL染色,×200)下觀察寡核苷酸的轉(zhuǎn)染效率;B:胃癌細(xì)胞系MNK-45內(nèi)miR-35相對含量(與對照組比較,**P<0.01)
2.3 miR-35促進(jìn)胃癌細(xì)胞系MNK-45凋亡 和對照組相比,miR-35模擬物能夠促進(jìn)MNK-45細(xì)胞凋亡(P<0.05),而miR-35抑制劑能夠抑制MNK-45細(xì)胞凋亡(P<0.05)(圖3A、B)。為了進(jìn)一步確認(rèn)miR-35對MNK-45細(xì)胞凋亡的影響,利用細(xì)胞核形態(tài)學(xué)方法評估細(xì)胞凋亡情況。正常細(xì)胞核形態(tài)為藍(lán)色染色質(zhì)有組織結(jié)構(gòu),凋亡細(xì)胞核形態(tài)為發(fā)生濃縮或破碎的熒光染色質(zhì)(箭頭所指),而壞死細(xì)胞核的形態(tài)為紅色熒光染色質(zhì)(圖3C)。棕色深染的細(xì)胞為發(fā)生凋亡的細(xì)胞(箭頭所指)(圖3D);隨后根據(jù)染色結(jié)果對凋亡細(xì)胞進(jìn)行計數(shù)發(fā)現(xiàn),miR-35模擬物能夠促進(jìn)MNK-45細(xì)胞凋亡(P<0.05),而miR-35抑制劑能夠抑制MNK-45細(xì)胞凋亡(P<0.05)。
2.4 miR-35對胃癌細(xì)胞MNK-45凋亡相關(guān)蛋白表達(dá)的影響 見圖4。與對照組相比,模擬物組MNK-45內(nèi)Caspase 3和Bax表達(dá)增加(均P<0.05),而Bcl-2表達(dá)減少(P<0.05);抑制劑組MNK-45細(xì)胞內(nèi)Caspase 3和Bax表達(dá)減少,而Bcl-2表達(dá)增加(均P<0.05)。
A:流式細(xì)胞儀檢測凋亡示意圖;B:MNK-45細(xì)胞凋亡統(tǒng)計圖(與對照組比較,*P<0.05);C:Hoechst33342和PI細(xì)胞核染色(×200);D:TUNEL染色(×200)
A:蛋白灰度圖;B:蛋白相對表達(dá)量統(tǒng)計圖(與對照組比較,*P<0.05,**P<0.01)
2.5 RhoA是miR-35的靶基因 利用Targetscan和MiRanda等靶基因預(yù)測軟件預(yù)測miR-35的潛在靶基因,發(fā)現(xiàn)RhoA基因的3’UTR上存在miR-35的潛在結(jié)合位點(圖5A)。繼而,利用熒光素酶報告基因技術(shù)發(fā)現(xiàn)miR-35能夠顯著抑制RhoA 3’UTR質(zhì)粒的熒光素酶活性(P<0.05)(圖5B),說明RhoA是miR-35的直接作用靶基因。為了進(jìn)一步驗證RhoA是miR-35的靶基因,我們分別將miR-35對照序列、模擬序列和互補配對序列分別轉(zhuǎn)染至MNK-45細(xì)胞內(nèi),隨后檢測細(xì)胞內(nèi)RhoA蛋白的表達(dá)量,和對照組相比,miR-35模擬序列抑制RhoA蛋白的表達(dá)(P<0.05),而miR-35互補配對序列促進(jìn)RhoA蛋白的表達(dá)(P<0.05)(圖5C、D)。
胃癌是世界范圍內(nèi)最常見的胃腸道疾病之一,是導(dǎo)致癌癥相關(guān)死亡的第二大原因。由于胃癌在疾病的早期沒有明顯臨床表現(xiàn),大多數(shù)患者在疾病的后期才被發(fā)現(xiàn),不幸的是此時的康復(fù)機會較低[1-3]。故深入研究胃癌發(fā)病機制及尋求治療新靶點成為近年來的研究熱點。而miRNA研究較為深入,已有多種miRNA藥物已經(jīng)進(jìn)入臨床試驗[11]。文獻(xiàn)[7-8]回顧中發(fā)現(xiàn)miR-35在多種腫瘤發(fā)生發(fā)展調(diào)控中發(fā)揮重要作用,而為miR-35在胃腸道腫瘤方面的報道甚少。故為探究miR-35在胃腺癌中的作用,我們首先在正常胃黏膜細(xì)胞(GES-1)和4種胃癌細(xì)胞系(MNK-45、MGC803、SCG-7901和AGS)中檢測了miR-35的含量變化,結(jié)果發(fā)現(xiàn),胃癌細(xì)胞系中miR-35含量明顯減低。上述結(jié)果暗示了,miR-35在胃癌發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要調(diào)控作用。
細(xì)胞凋亡是受細(xì)胞自身調(diào)控的主動過程,該過程是一系列基因活動引起的級聯(lián)反應(yīng)的結(jié)果。凋亡調(diào)控的紊亂會造成一系列的疾病,如感染、神經(jīng)退行性疾病、血液系統(tǒng)疾病、自身免疫病和腫瘤等[12]。隨著對胃癌發(fā)病機制研究的不斷深入,細(xì)胞凋亡失衡成為胃癌發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵分子機制[13-14]。
A:miR-35和其潛在靶基因的互補序列示意圖;B:熒光素酶報告基因技術(shù)驗證miR-35和RhoA的靶向關(guān)系;C、D:Western blot檢測MNK-45細(xì)胞中RhoA含量(與對照組比較,*P<0.05)
為了驗證miR-35對胃癌細(xì)胞凋亡的調(diào)控作用,我們選取4種胃癌細(xì)胞系中應(yīng)用廣泛且較為穩(wěn)定的細(xì)胞系MNK-45作為研究對象[15]。我們首先利用細(xì)胞轉(zhuǎn)染技術(shù)在體外成功過表達(dá)或敲低胃癌細(xì)胞系MNK-45中miR-35含量。隨后我們應(yīng)用包括流式細(xì)胞儀檢測技術(shù)、Hoechst33342和PI細(xì)胞核染色技術(shù)和TUNEL染色技術(shù)等多種技術(shù)檢測miR-35對胃癌細(xì)胞系MNK-45凋亡的作用,結(jié)果發(fā)現(xiàn),miR-35可促進(jìn)胃癌細(xì)胞系的凋亡,這與之前學(xué)者報道一致[16-17]。有研究[16]表明,miR-35通過拮抗核心細(xì)胞凋亡途徑來降低秀麗隱桿線蟲的凋亡閾值。也有學(xué)者報道,miR-35家族通過MPK-1/ERK-MAPK信號轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控秀麗隱桿線蟲DNA損傷誘導(dǎo)的凋亡[17]。凋亡失衡被認(rèn)為是腫瘤發(fā)病機制中的關(guān)鍵途徑,而Caspase 3作為凋亡過程中最重要的執(zhí)行者,在凋亡過程中發(fā)揮至關(guān)重要的作用,Bax和Bcl-2作為研究最為明確的促凋亡和抗凋亡蛋白,對Caspase 3有著決定性影響,這些靶蛋白被認(rèn)為是腫瘤治療的重要靶點[18-19]。有研究[20-21]發(fā)現(xiàn),胃癌組織或細(xì)胞中促凋亡基因Bax和凋亡執(zhí)行基因Caspase 3低表達(dá),而抑凋亡基因Bcl-2高表達(dá),這使得胃癌組織或細(xì)胞凋亡減少。為進(jìn)一步探究miR-35調(diào)控胃癌細(xì)胞凋亡的作用,我們驗證了miR-35對胃癌細(xì)胞系凋亡信號通路中關(guān)鍵分子表達(dá)的影響。在本實驗中,我們發(fā)現(xiàn)miR-35增加了胃癌細(xì)胞系促凋亡蛋白Bax和凋亡執(zhí)行蛋白Caspase 3的表達(dá),同時減少了抑凋亡蛋白Bcl-2的表達(dá)。
明確miR-35促進(jìn)胃癌細(xì)胞凋亡的現(xiàn)象后,我們進(jìn)一步探究其促凋亡的分子機制。miRNAs作為重要的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控分子,對超過1/3的基因發(fā)揮調(diào)控作用,而miRNAs的5’端種子序列與靶基因3’端非編碼區(qū)的互補配對后對靶基因的沉默或降解是其對靶基因最主要的調(diào)控方式[7-9]。目前研究表明,在人類的多種腫瘤中RhoA基因被過度激活,進(jìn)而促進(jìn)腫瘤的生長及侵襲[22]。已經(jīng)研究證實,抑制RhoA基因的活化可促進(jìn)癌細(xì)胞凋亡,從而發(fā)揮抑癌作用[23-25]。為了探究miR-35促進(jìn)胃癌細(xì)胞凋亡的機制,我們首先利用生物信息學(xué)分析技術(shù)預(yù)測了miR-35可能的靶基因,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-35的5’端種子序列與RhoA基因的3’端非編碼區(qū)有著較高的匹配度。為了進(jìn)一步驗證miR-35與RhoA基因的直接調(diào)控作用,我們通過熒光素酶報告基因技術(shù)驗證了miR-35可以直接靶向作用于癌基因RhoA,這可能是miR-35發(fā)揮抑癌作用的重要方式。隨后我們又在蛋白水平驗證了上述結(jié)論,即過表達(dá)miR-35后RhoA蛋白表達(dá)降低,而調(diào)低miR-35表達(dá)后RhoA蛋白表達(dá)升高。
綜上所述,多種胃癌細(xì)胞系內(nèi)低表達(dá)miR-35,miR-35可通過靶向RhoA促進(jìn)胃癌細(xì)胞MNK-45的凋亡。后續(xù)研究我們將進(jìn)一步利用在體實驗驗證miR-35的抑癌作用及分子機制。