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ROCK抑制劑對青光眼術后瘢痕形成的作用機制

2021-12-31 03:25:32劉莉莉招志毅曾招榮
解剖學雜志 2021年6期
關鍵詞:可抑制纖維細胞青光眼

劉莉莉 招志毅 曾招榮

(廣西醫(yī)科大學第四附屬醫(yī)院柳州市工人醫(yī)院眼科,柳州 545005)

青光眼是由于眼壓升高導致的進行性視神經(jīng)損害、視野缺損的一種不可逆的致盲眼病。青光眼的患病人數(shù)較多,在2010年之前全球就已經(jīng)累計近億人,且呈上升趨勢[1]。據(jù)相關報道,我國青光眼患者45 歲以上發(fā)病率較高,其中近一半的患者最終發(fā)展為眼盲[2]。藥物在青光眼中期以后便不能控制眼內(nèi)壓水平,此時需要外部手術來進行治療,但需要面臨手術失敗的后果。在手術失敗后濾過道愈合的過程中,血小板與凝血級聯(lián)反應使細胞的炎癥因子增加,最后形成瘢痕[3]。臨床上一般會應用干擾素等藥物提高手術成功率,但藥物對機體產(chǎn)生危害。Rho 相關卷曲螺旋形成蛋白激酶(rho associated coiled coil forming protein kinase,ROCK)是一種細胞內(nèi)的信號通路分子,其不同的表達會影響細胞發(fā)育。ROCK 抑制劑是可調(diào)節(jié)ROCK 活性的復合物[4],有研究者用ROCK 抑制劑治療術后瘢痕,效果較為明顯[5],但其作用機制尚不明確。因此,本研究探討ROCK 抑制劑對青光眼手術導致瘢痕的影響,分析其對瘢痕形成的作用機制。

1 材料和方法

1.1 實驗動物與試劑

健康大鼠28 只購自君科生物公司,鼠齡1~2月,體質(zhì)量200~250 g,常規(guī)飼養(yǎng),溫度在25.6 ℃左右。

氯霉素眼液(長春迪瑞公司);阿托品眼膏(沈陽興齊公司);10-0 尼龍線(東莞博斯蒂公司);金霉素眼膏(上海通用公司);ROCK 抑制劑Y-27632(上海澤葉公司);胰蛋白酶(南寧龐博生物公司)。

1.2 青光眼模型的建立及分組

28 只健康大鼠術前1 d 采用氯霉素滴眼,均采取右眼為實驗眼。0.15 mL/kg 速眠新注射液肌內(nèi)注射麻醉后,氯霉素沖洗眼結膜,在右眼鼻上端角膜緣為底部的結膜瓣,暴露鞏膜,做大小為4 mm×3 mm、深度為1/2 的四方形鞏膜瓣,分離至清亮角膜內(nèi)至少0.5 mm 處,做1 mm×2 mm 大小的小梁組織切除,并做虹膜根部切除;將鞏膜復位對合后采用10-0 尼龍線縫合鞏膜瓣,8-0 尼龍線縫合結膜瓣。術畢,采用0.5%金霉素眼膏和阿托品眼膏涂抹患眼,術后連續(xù)3 d 氯霉素眼藥水點眼1~2 次,每次1~2 滴。28 只青光眼模型分為2 組,模型組14 只:青光眼模型大鼠常規(guī)飼養(yǎng);RR 組14只:在青光眼模型建立成功24 h 后,進行玻璃體腔注射ROCK 抑制劑Y-27632(30 μmol/L)5 μL,15 d 后10%水合氯醛(500 mg/kg)麻醉大鼠,取右眼眼球放置-80℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3 瘢痕組織成纖維細胞的培養(yǎng)

取各組大鼠濾過道瘢痕組織,置于培養(yǎng)皿內(nèi),PBS 漂洗2 次,加入適量胎牛血清(fetal calf serum,F(xiàn)CS),將瘢痕組織剪碎,篩網(wǎng)過濾,將含組織塊的FCS 混合液均勻覆蓋于50 mL 培養(yǎng)瓶接種面,輕輕翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶使組織貼壁面朝上。貼壁4 h后加入含有雙抗及10%FCS 的DMEM 培養(yǎng)液,置37℃,5%CO2培養(yǎng)箱內(nèi),每周換液2~3 次,待細胞融合后,用0.125%的胰蛋白酶消化,以1∶2 傳代,取傳至第4~9 代的細胞進行實驗。

1.4 MTT 法測定瘢痕組織中成纖維細胞增殖

取對數(shù)生長期的成纖維細胞,用胰蛋白酶消化成單細胞懸液,接種于培養(yǎng)板,常規(guī)培養(yǎng)24 h。采用酶標儀于490 nm 波長下測定吸光度(A490)值,計算成纖維細胞的抑制率。

1.5 RT-PCR 檢測濾過道瘢痕組織轉(zhuǎn)化生長因子-β1(transforing growth factoe-β1,TGF-β1)、ROCK、α 平滑肌肌動蛋白(α-smooth muscle actin,α-SMA)mRNA 表達

將術后28 d 的2 組大鼠濾過道瘢痕組織加入胰蛋白酶消化,提取細胞重懸液,沖洗,置入無菌試管中,采用TRIzol 試劑提取RNA,逆轉(zhuǎn)錄為DNA,對TGF-β1、ROCK、α-SMA mRNA 進行擴增,β-actin 為內(nèi)參,引物序列見表1。PCR 反應條件:98 ℃6 min,98 ℃28 s,75 ℃30 s,80 ℃4 min,總計55 個循環(huán),用2-△△Ct法計算2 組大鼠濾過道瘢痕組織中基因的相對表達水平。

表1 引物序列

1.6 免疫組織化學檢測濾過道瘢痕組織白介素(interleukin,IL)-1β(IL-1β)、α-SMA 表達

2 組大鼠于第7 周斷頭處死,取眼部術后瘢痕組織脫蠟、常規(guī)切片,胰蛋白酶消化修復抗原,H2O2去除過氧化物酶活性,加 IL-1β、α-SMA 一抗、生物素標記二抗、辣根過氧化物酶標記鏈霉素工作液,DAB 顯色,蒸餾水終止顯色;脫水,透明,封片,光學顯微鏡下觀察,以組織中出現(xiàn)棕黃色染色為陽性表達。每組任意選取6 張石蠟切片,拍照記錄。

1.7 免疫印跡檢測濾過道瘢痕組織IL-1β、IL-6、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothlial growth factor,VEGF)、α-SMA 蛋白的表達

將青光眼術后瘢痕組織進行裂解,并提取蛋白,并對蛋白的濃度進行測量,分裝后,保存在-20℃的環(huán)境中。將提取出的蛋白溶液和緩沖溶液按照4∶1 比例混勻,煮沸使蛋白質(zhì)變性,將蛋白樣品(50 μg)轉(zhuǎn)移PVDF 膜上,脫脂奶粉封閉1 h。加入一抗(1∶150)稀釋后孵育過夜,TBS 漂洗3 次,每次10 min,最后加入二抗常溫孵育。取出PVDF膜,每隔10 min 漂洗1 次,共3 次,DAB 顯色后照相。嚴格按照IL-1β、IL-6、VEGF 試劑盒說明操作,計算各蛋白表達含量。

1.8 統(tǒng)計學處理

采用SPSS 23.0 統(tǒng)計學軟件進行分析。計量資料數(shù)據(jù)以±s表示,組間比較采用t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

2 結果

2.1 ROCK 抑制劑對瘢痕成纖維細胞增殖的影響

MTT 法測定結果顯示,模型組成纖維細胞的抑制率為60.12%±5.21%,低于RR 組的抑制率91.12%±0.94%,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),說明ROCK 抑制劑可抑制瘢痕成纖維細胞的增殖。

2.2 術后濾過道瘢痕組織TGF-β1 mRNA、ROCK mRNA、α-SMA mRNA 的表達

RT-PCR 檢測結果顯示,建模組大鼠濾過道瘢痕 組 織TGF-β1 mRNA、ROCK mRNA、α-SMA mRNA 的表達均顯著高于RR 組,差異均有統(tǒng)計學意義(P<0.05)(表2)。

表2 濾過道瘢痕組織TGF-β1 mRNA、ROCK mRNA、α-SMAmRNA 的表達(n=14,±s)

表2 濾過道瘢痕組織TGF-β1 mRNA、ROCK mRNA、α-SMAmRNA 的表達(n=14,±s)

*P<0.05 vs 模型組

組別 TGF-β1 mRNA ROCK mRNA α-SMA mRNA模型組 1.00±0.00 1.00±0.00 1.00±0.00 RR 組 0.35±0.01* 0.27±0.03* 0.23±0.02*

2.3 濾過道瘢痕組織IL-1β、α-SMA 陽性表達

免疫組織化學檢測結果顯示,RR 組大鼠濾過道瘢痕組織中IL-1β、α-SMA 的陽性表達低于模型組(P<0.05),說明ROCK 抑制劑可抑制IL-1β、α-SMA 的陽性表達(表3,圖1)。

表3 濾過道瘢痕組織IL-1β、α-SMA 的陽性表達(n=14,±s,%)

表3 濾過道瘢痕組織IL-1β、α-SMA 的陽性表達(n=14,±s,%)

*P<0.05 vs 模型組

組別 IL-1β α-SMA模型組 30.12±2.85 60.15±4.21 RR 組 22.47±1.04* 34.26±0.03*

圖1 大鼠濾過道瘢痕組織 IL-1β(A1、B1)、α-SMA(A2、B2)陽性表達,免疫組織化學顯色,×400

2.4 濾過道瘢痕組織IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA蛋白表達

免疫印跡檢測結果顯示,模型組大鼠濾過道瘢痕組織IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA 的表達水平高于RR 組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),說明ROCK 抑制劑可使IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA的表達降低(表4、圖2)。

表4 濾過道瘢痕組織IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA蛋白的表達(n=14,±s)

表4 濾過道瘢痕組織IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA蛋白的表達(n=14,±s)

*P<0.05 vs 模型組

組別 IL-1β IL-6 VEGF α-SMA模型組 1.42±0.18 1.30±0.13 1.26±0.11 1.56±0.21 RR 組 0.32±0.03* 0.41±0.05* 0.35±0.04 0.47±0.07

圖2 大鼠濾過道瘢痕組織IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA 蛋白表達免疫印跡電泳圖

3 討論

青光眼濾過道術失敗后,手術區(qū)可形成瘢痕,瘢痕的形成與成纖維細胞的增殖以及TGF-β1、VEGF 的異常表達有著密切的聯(lián)系。近年來的研究表明,ROCK 抑制劑可降低成纖維細胞增殖,改善血流動力學,增加眼部血供,減少炎癥因子的表達,抑制眼部神經(jīng)細胞的凋亡,加速神經(jīng)元生長,對眼部神經(jīng)起到一定保護作用[6-9]。因此,抑制瘢痕形成在青光眼濾過術治療中具有重要作用。

本研究結果表明,ROCK 抑制劑可抑制青光眼術后瘢痕成纖維細胞增殖。青光眼濾過性手術后,由于血-房水屏障的破壞以及手術區(qū)的炎癥反應,使得成纖維細胞大量增殖,導致結膜下組織纖維化和濾過道瘢痕形成。蔣鵬飛等[10]研究表明,青光眼有效成分通過抑制膠原纖維、成纖維細胞特異性蛋 白1(fibroblast-specific protein 1,F(xiàn)SP-1)、結締組織生長因子(connective tissue growth factor,CTGF)的表達,降低肌成纖維細胞的增殖,從而減少濾過道瘢痕組織的增生。ROCK 抑制劑具有抗炎、抗瘢痕等作用,可以特異性抑制酪氨酸蛋白激酶(tyrosine protein kinase,TPK),阻礙細胞膜受體與血小板源性生長因子結合,降低成纖維細胞增殖率[11]。RKI-1447 是一種高效的ROCK 抑制劑。孫琳[12]研究表明,RKI-1447 可有效抑制外源性TGF-β1 誘導的大鼠尿道成纖維細胞的增殖、表型轉(zhuǎn)化、遷移和細胞外基質(zhì)成分合成等細胞生物學變化。本研究與上述研究結果一致。

本研究結果表明,ROCK 抑制劑可抑制TGF-β1 mRNA、ROCK mRNA、IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA 的表達。TGF-β1 主要通過激活成纖維細胞內(nèi)Smad 家族蛋白3(Smad3)啟動膠原基因轉(zhuǎn)錄和表達,促進膠原形成,使成纖維細胞增加,進而使瘢痕形成[13]。歐陽云等[14]通過對兔進行研究顯示,青光眼可降低TGF-β/Smad 細胞信號轉(zhuǎn)導,抑制濾過道瘢痕形成。ROCK 是蛋白激酶的一種,接受RhoA 信號后,參與氨基酸磷酸化,從而使其表達升高,進而調(diào)節(jié)細胞運動。根據(jù)有關研究表明RhoA/ROCK 信號在青光眼瘢痕中表達升高,表示RhoA/ROCK 參與了瘢痕發(fā)生發(fā)展[15]。陳曉柳等[16]研究表明血栓通、絲裂霉素等可以通過抑制ROCK的表達進而抑制成纖維細胞的活性,從而阻礙瘢痕的形成。IL-1β 是由成纖維細胞分泌的細胞因子,增加炎癥反應,使術后愈合時間延長及成纖維細胞增加。張康玉等[17]通過對大白兔建立青光眼術后瘢痕研究表明,可通過抑制IL-1β 進而抑制成纖維細胞的增殖,從而抑制瘢痕的產(chǎn)生。IL-6 是一種免疫調(diào)節(jié)因子,在多種纖維化疾病中可通過對靶細胞的調(diào)控進而抑制成纖維細胞的增殖,阻礙瘢痕的形成。蔡海豐等[18]研究顯示,通過磷酸腺苷激活蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK)激動劑降低TGF-1β及IL-6的表達,可抑制成纖維細胞增加,阻礙人皮膚異常瘢痕的形成。VEGF可促進血管內(nèi)皮細胞的增殖,進而促進新生血管的生成;還可通過誘導炎癥細胞的增殖進而促進成纖維細胞的增殖,在青光眼濾過手術修復過程中具有修復作用。卞新海[19]對兔建立耳瘢痕實驗顯示,點陣CO2激光聯(lián)合積雪苷霜軟膏通過抑制TGF-β1和VEGF的表達,可抑制瘢痕組織的增生。α-SMA是成纖維細胞的特異性標志物之一,可通過自身的高表達進而使成纖維細胞活化,使其合成膠原的能力提升,導致瘢痕形成[20]。黃學思等[21]運用絲裂霉素C以及青光安混懸液等藥物治療青光眼術后瘢痕實驗研究表明,通過降低膠原纖維、α-SMA及纖維黏連蛋白的水平,可抑制青光眼術后瘢痕的形成。本研究結果與上述研究結果相似。

綜上所述,ROCK 抑制劑可通過降低TGF-β1 mRNA、ROCK mRNA、IL-1β、IL-6、VEGF、α-SMA的表達進而抑制成纖維細胞的增殖,從而提高手術的成功率,阻礙青光眼術后瘢痕的形成。

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