肖祖飛,魏 希,張北紅,王顏波,李 鳳,姜 睿,彭 藝,金志農(nóng)
(南昌工程學(xué)院,江西省樟樹(shù)繁育與開(kāi)發(fā)利用工程研究中心 江西南昌 330099)
沉水樟 (Cinnamomummicranthum)為樟科樟屬常綠喬木,主要分布在浙江、江西、湖南、臺(tái)灣、廣西等省份[1]。沉水樟干形通直、高大雄偉、枝葉繁茂,是優(yōu)良的造林和綠化樹(shù)種。沉水樟木材紋理細(xì)致,具有芳香,是船舶、高檔家具等的原材料。沉水樟枝葉富含精油,枝葉精油主成分為黃樟素的為黃樟素型沉水樟(Cinnamomummicranthumct. safrole),是重要的醫(yī)藥原料。由于長(zhǎng)期對(duì)沉水樟資源的人為破壞,目前沉水樟處于瀕危狀態(tài),為國(guó)家三級(jí)重點(diǎn)保護(hù)植物[2-3]。沉水樟的繁殖可采用種子繁殖、扦插和組織培養(yǎng)[4-6]。有研究表明,沉水樟雌雄花發(fā)育成熟期不一致,因而結(jié)實(shí)率很低、難以采集到種子,且種子空殼率高,種子繁殖困難[2]。扦插繁殖又因資源少,較難獲得穗條,且扦插成活率低,生根難等因素,制約沉水樟苗木的繁殖。組織培養(yǎng)具有操作簡(jiǎn)單、繁殖速度快、不受季節(jié)影響、可周年生產(chǎn)、脫毒、保持木本優(yōu)良性狀等優(yōu)點(diǎn),是苗木快繁的重要方式。目前,關(guān)于沉水樟的組織培養(yǎng)研究較少,翟曉巧等[7]以沉水樟幼嫩莖段為材料,篩選了IBA與BA、IAA與BA、NAA與BA對(duì)莖段芽誘導(dǎo)的影響;羅坤水等[6]對(duì)沉水樟莖段的初代、繼代和生根培養(yǎng)基進(jìn)行篩選;陳碧華等[8]在翟曉巧、羅坤水等研究基礎(chǔ)上對(duì)沉水樟莖段的初代、繼代、生根培養(yǎng)基進(jìn)行改良,同時(shí)研究了組培苗的移栽技術(shù),為沉水樟的組織培養(yǎng)奠定了基礎(chǔ)。本文以黃樟素型沉水樟一年生半木質(zhì)化枝條為材料,研究外植體的采集時(shí)間、消毒時(shí)間和生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黃樟素型沉水樟莖段組織培養(yǎng)的影響,以期為黃樟素型沉水樟的苗木快繁提供理論依據(jù)。
供試材料為黃樟素型沉水樟2年生扦插苗一年生半木質(zhì)化枝條,剪切成帶1~2個(gè)芽的莖段(1.5~3 cm),用自來(lái)水沖洗2 h,置于超凈工作臺(tái),用體積分?jǐn)?shù)75%酒精浸泡30 s,無(wú)菌水沖洗3~5次,待用。
1.2.1 外植體的采集時(shí)間對(duì)黃樟素型沉水樟莖段組織培養(yǎng)的影響
分別在2020年5月、7月和9月份,利用上述處理好的外植體,用質(zhì)量濃度0.1%的升汞(HgCl2)消毒6 min,接種在MS + 0.8 mg/L 6-BA + 0.15 mg/L IBA培養(yǎng)基上,每瓶1個(gè)莖段,30瓶,3次生物重復(fù)。接種30 d,統(tǒng)計(jì)外植體的污染率、褐化率和萌芽率。
1.2.2 消毒時(shí)間對(duì)黃樟素型沉水樟莖段組織培養(yǎng)的影響
2020年5月中旬,利用上述處理好的外植體,用質(zhì)量濃度0.1%HgCl2消毒,消毒處理時(shí)間分別為3、5、7和9 min,之后接種在MS + 0.8 mg/L 6-BA + 0.15 mg/L IBA培養(yǎng)基上,每瓶1個(gè)莖段,30瓶,3次生物重復(fù)。接種30 d,統(tǒng)計(jì)莖段的污染率、褐化率和萌芽率。
1.2.3 生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黃樟素型沉水樟莖段萌芽誘導(dǎo)培養(yǎng)的影響
2020年5月中旬,利用上述處理好的外植體,用質(zhì)量濃度0.1%的HgCl2消毒6 min,分別接種到不同誘導(dǎo)培養(yǎng)基:(1)MS + 0.15 mg/L IBA + 0.2 mg/L 6-BA,(2)MS + 0.15 mg/L IBA + 0.4 mg/L 6-BA,(3)MS + 0.15 mg/L IBA + 0.8 mg/L 6-BA,(4)MS + 0.15 mg/L IBA + 1.6 mg/L 6-BA,(5)MS + 0.8 mg/L 6-BA + 0.30 mg/L IBA,(6)MS + 0.8 mg/L 6-BA + 0.45 mg/L IBA,(7)MS + 0.8 mg/L 6-BA + 0.60 mg/L IBA。每個(gè)處理30瓶,每瓶1個(gè)莖段。接種30 d,統(tǒng)計(jì)莖段的萌芽率。
1.2.4 生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗增殖培養(yǎng)的影響
將株高3~5 cm的無(wú)菌苗修剪成約1.5 cm長(zhǎng)的莖段(至少帶有一葉一芽),分別接種到不同增殖培養(yǎng)基:(1)MS + 0.10 mg/L IBA + 0.25 mg/L 6-BA,(2)MS + 0.10 mg/L IBA + 0.50 mg/L 6-BA,(3)MS + 0.10 mg/L IBA + 1.00 mg/L 6-BA,(4)MS + 0.10 mg/L IBA + 2.00 mg/L 6-BA,(5)MS + 1.00 mg/L 6-BA + 0.05 mg/L IBA,(6)MS + 1.00 mg/L IBA + 0.20 mg/L 6-BA,(7)MS + 1.00 mg/L IBA + 0.40 mg/L 6-BA。每個(gè)處理20瓶,每瓶6~7個(gè)莖段。繼代培養(yǎng)30 d,統(tǒng)計(jì)增殖芽數(shù)、株高、莖粗。
1.2.5 生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗生根培養(yǎng)研究
挑選株高3~5 cm的無(wú)菌苗接種于生根培養(yǎng)基:(1)1/2 MS + 0.5 mg/L IBA,(2)1/2 MS + 1.0 mg/L IBA,(3)1/2 MS + 1.5 mg/L IBA,(4)1/2 MS + 2.0 mg/L IBA,(5)1/2 MS + 0.5 mg/L NAA,(6)1/2 MS + 1.0 mg/L NAA,(7)1/2 MS + 1.5 mg/L NAA,(8)1/2 MS + 2.0 mg/L NAA。每瓶接種7~10株,組培苗生根培養(yǎng)25 d后統(tǒng)計(jì)生根率、根數(shù)、根長(zhǎng)和根粗。
1.2.6 黃樟素型沉水樟生根苗的煉苗和移栽技術(shù)研究
生根培養(yǎng)11~15 d,將組培生根苗移至透光率25%~30%、溫度25~30 ℃的大棚內(nèi)煉苗7~10 d,將組培苗移出瓶外,用自來(lái)水清洗干凈生根苗根部培養(yǎng)基,待移栽。移栽前將生根苗用質(zhì)量濃度0.5%多菌靈消毒10~15 min,以紅壤土和草木灰(體積比5∶1)為基質(zhì),之后移入裝滿(mǎn)基質(zhì)的無(wú)紡布袋中央,保持基質(zhì)濕潤(rùn),移栽?xún)蓚€(gè)月后統(tǒng)計(jì)移栽成活率。
1.2.7 組培苗培養(yǎng)條件
培養(yǎng)基均添加蔗糖30 g/L、瓊脂粉7.0 g/L,生根培養(yǎng)添加2 g/L活性炭,pH5.8。組培苗培養(yǎng)條件為光照3000~5000 lx、白質(zhì)光、光照時(shí)間12 h/d、溫度(25 ± 2)℃。
株高、根長(zhǎng)用米尺測(cè)量、根粗用游標(biāo)卡尺測(cè)定。采用Excel2010軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)的錄入、整理和方差分析。
由表1可知,外植體的污染率和褐化率隨采集時(shí)間的推后而顯著升高,萌芽率隨采集時(shí)間的推后顯著降低。5月份采集外植體進(jìn)行組織培養(yǎng),外植體的萌芽率最高,為51.80%,而污染率和褐化率最低,分別為18.95%和9.62%。與5月份比較,9月份采集外植體進(jìn)行組織培養(yǎng),外植體的污染率和褐化率分別提高了42.72%和10.55%,萌芽率降低了36.54%。
表1 外植體采集時(shí)間對(duì)黃樟素型沉水樟莖段培養(yǎng)的影響 %
由表2可知,外植體的污染率隨HgCl2的消毒時(shí)間的增加而降低,褐化率隨消毒時(shí)間的增加而逐漸升高,萌芽率隨消毒時(shí)間的增加而先升后降。消毒3 min,外植體的污染率達(dá)到62.81%,顯著高于消毒5、7、9 min,外植體的污染率最低的是消毒9 min。消毒9 min,外植體的褐化率達(dá)到58.15%,顯著高于消毒7、5、3 min;消毒3 min和5 min,外植體的褐化率低,分別為10.82%和15.33%。消毒5 min,外植體的萌芽率最高,為52.59%,顯著高于消毒3、7、9 min。因此,5月份采集黃樟素型沉水樟一年生半木質(zhì)化枝條,用質(zhì)量濃度0.1%HgCl2消毒,消毒最佳時(shí)間是5 min。
表2 消毒時(shí)間對(duì)黃樟素型沉水樟莖段培養(yǎng)的影響
由表3可知,IBA濃度為0.15 mg/L時(shí),莖段的萌芽率隨著6-BA濃度的增加呈先增后降的趨勢(shì)。當(dāng)6-BA濃度為0.8 mg/L時(shí),莖段的萌芽率達(dá)到最高,為66.67%,莖段的萌芽率最低的是0.15 mg/L IBA處理,僅為16.67%。當(dāng)6-BA濃度為0.8 mg/L時(shí),莖段的萌芽率隨著IBA濃度的升高而逐漸降低。0.15 mg/L IBA處理,莖段的萌芽率最高。因此,黃樟素型沉水樟莖段萌芽的最適培養(yǎng)基為MS + 0.8 mg/L 6-BA + 0.15 mg/L IBA。
表3 生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑配比對(duì)黃樟素型沉水樟莖段萌芽誘導(dǎo)培養(yǎng)的影響
由表4可知,當(dāng)IBA濃度為0.10 mg/L時(shí),組培苗的增殖系數(shù)隨6-BA濃度的增加而先增后降。6-BA濃度為1.00 mg/L時(shí),增殖系數(shù)最大,為3.94,與2.00 mg/L 6-BA處理差異不顯著,顯著高于0.50 mg/L和0.25 mg/L 6-BA處理。當(dāng)6-BA濃度為1.00 mg/L時(shí),組培苗的增殖系數(shù)隨IBA濃度的增加而先增后降,IBA濃度為0.10 mg/L,增殖系數(shù)最大。IBA有利于組培苗株高的生長(zhǎng),組培苗的株高隨著IBA濃度的增加而逐漸增大。組培苗的莖粗受6-BA和IBA影響不明顯,各處理組培苗的莖粗差異不顯著。因此,黃樟素型沉水樟組培苗最適增殖培養(yǎng)基為MS + 1.00 mg/L 6-BA + 0.10 mg/L IBA。
表4 生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑配比對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗增殖培養(yǎng)的影響
2.5.1 黃樟素型沉水樟組培苗生根過(guò)程基部形態(tài)變化
組培苗生根培養(yǎng)1~5 d,基部形態(tài)變化不明顯;生根培養(yǎng)7 d時(shí),少部分組培苗基部膨大、切口愈合,有少量愈傷組織出現(xiàn);生根培養(yǎng)9 d時(shí),大部分組培苗基部膨大、切口愈合,部分組培苗基部有凸起點(diǎn);生根培養(yǎng)11 d時(shí),組培苗基部出現(xiàn)不定根(圖1)。
注:a、b、c、d、e、f圖分別為生根培養(yǎng)1、3、5、7、9和11 d。圖1 1.0 mg/L IBA誘導(dǎo)黃樟素型沉水樟組培苗生根過(guò)程
2.5.2 生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗生根的影響
由表5可知,生根率隨IBA濃度的增加而先升后降。1.0 mg/L IBA處理時(shí),組培苗的生根率最高,為79.33%,其次是1.5 mg/L IBA處理,二者之間差異不顯著,組培苗的生根率最低的是0.5 mg/L IBA處理。1.0 mg/L IBA處理時(shí),組培苗的根數(shù)也最多,顯著高于其它處理,組培苗的根數(shù)最少的是0.5 mg/L IBA處理。1.5 mg/L IBA處理,組培苗的根長(zhǎng)最大,其次是1.0 mg/L IBA處理,組培苗的根長(zhǎng)最小的是0.5 mg/L IBA處理。IBA濃度對(duì)組培苗的根粗影響不明顯,各處理間組培苗的根粗差異不顯著。
表5 IBA對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗生根的影響
由表6可知,NAA對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗生根也有顯著的促進(jìn)作用,生根率隨NAA濃度的增加而先升后降。1.5 mg/L NAA處理時(shí),組培苗的生根率最高,為81.60%,顯著高于0.5mg/L和 1.0 mg/L NAA處理,稍高于2.0 mg/L NAA處理。根數(shù)的變化趨勢(shì)與生根率相似,1.5 mg/L和2.0 mg/L NAA處理,組培苗的根數(shù)分別為3.17和3.06,二者差異不顯著,顯著高于0.5 mg/L和1.0 mg/L NAA處理。2.0 mg/L NAA處理,組培苗的根長(zhǎng)最大,為5.42 cm,其次1.5 mg/L NAA處理,二者差異不顯著,顯著高于0.5 mg/L和1.0 mg/L NAA處理。NAA對(duì)組培苗的根粗影響不明顯,各處理間組培苗的根粗差異不顯著。綜合組培苗的生根率、根數(shù)、根長(zhǎng)和根粗指標(biāo),黃樟素型沉水樟組培苗生根最適培養(yǎng)基為1/2 MS + 1.5 mg/L NAA。
表6 NAA對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗生根的影響
組培苗生根培養(yǎng)11~15 d,移至溫室大棚,控制棚內(nèi)溫度25~30 ℃、透光率20%~35%,煉苗7~10 d。將生根苗移出瓶外,清洗干凈生根苗根部的培養(yǎng)基。移栽前用質(zhì)量濃度0.5%多菌靈消毒10~15 min,之后將生根苗移入裝有基質(zhì)的無(wú)紡布袋,移栽后20 d 內(nèi)保持空氣濕度90%以上,基質(zhì)保持濕潤(rùn),見(jiàn)干即澆,每次要澆透,移栽成活率可達(dá)90%(圖2)。之后依據(jù)苗木長(zhǎng)勢(shì)施用水肥,待苗木木質(zhì)化,株高20~30 cm,可將苗木移入大田定植。
圖2 黃樟素型沉水樟組培移栽苗
不同時(shí)間采集外植體,外植體的生理狀態(tài)、組織幼嫩程度、內(nèi)部營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)等差異較大,影響外植體的成活率。有研究表明,5月份采集猴樟一年生半木質(zhì)化枝條進(jìn)行莖段組織培養(yǎng),莖段的萌芽率顯著高于7月份和9月份[9],也有研究表明,2~3月份采集接種材料,外植體的污染率低,無(wú)菌活體獲得率高[10]。本研究表明,與7月和9月份相比較,5月份更適合采集黃樟素型沉水樟莖段進(jìn)行組織培養(yǎng)。究其原因可能是因?yàn)?月份新抽枝條處于半木質(zhì)化狀態(tài),組織幼嫩、生長(zhǎng)旺盛、內(nèi)部營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)豐富、新陳代謝旺盛、表面病菌少,因而外植體成活率高。
外植體消毒常用試劑有升汞、次氯酸鈉、酒精等,其中升汞消毒效果最好,一般使用質(zhì)量濃度為0.1%。外植體的消毒時(shí)間因不同植物、采集時(shí)間、采集部位等而異。消毒時(shí)間太短,外植體消毒不徹底,污染率高;消毒時(shí)間過(guò)長(zhǎng),容易殺死外植體細(xì)胞,導(dǎo)致褐化率提高,成活率降低。有研究表明,質(zhì)量濃度0.1%的升汞消毒7 min,香樟莖段的污染率較低,回綠時(shí)間較短,萌芽率高[11]。以體積分?jǐn)?shù)10%的84消毒液處理油樟莖段15 min或體積分?jǐn)?shù)15%的84消毒液處理油樟莖段10 min,油樟莖段的污染率小于15%,成活率大于70%[12]。本研究表明,5月份采集黃樟素型沉水樟半木質(zhì)帶芽莖段,用質(zhì)量濃度0.1%的HgCl2消毒5 min,莖段的污染率和褐化率較低,萌芽率最高,這可能是因?yàn)榘肽举|(zhì)化枝條本身帶病菌少、容易消毒,半木質(zhì)化枝條組織幼嫩、細(xì)胞分裂能力強(qiáng),容易成活。
植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑在植物組織培養(yǎng)過(guò)程發(fā)揮重要作用。有研究表明,細(xì)胞分裂素和生長(zhǎng)素二者的濃度配比適當(dāng)?shù)那闆r下才能在樟樹(shù)莖段腋芽誘導(dǎo)、叢生芽的增殖、生根時(shí)獲得較好效果[13-14]。本研究表明,6-BA、IBA、6-BA/IBA在黃樟素型沉水樟莖段的萌芽、組培苗的增值和生根過(guò)程中起重要作用。在IBA濃度不變情況下,黃樟素型沉水樟莖段的萌芽率隨6-BA濃度的增加而先增后降;在6-BA濃度不變情況下,黃樟素型沉水樟莖段的萌芽率隨IBA濃度的增加而降低。黃樟素型沉水樟莖段的萌芽率隨6-BA/IBA的比值的升高而先升后降。6-BA和IBA的比值為1.33時(shí),莖段的萌芽率僅為16.67%;6-BA和IBA的比值為5.33時(shí),莖段的萌芽率達(dá)到最大,為66.67%,之后萌芽率降低。6-BA、IBA、6-BA/IBA對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗的增殖影響與莖段萌芽率相似。6-BA和IBA的比值為10時(shí),增殖系數(shù)最大,達(dá)到3.94。IBA和NAA對(duì)黃樟素型沉水樟組培苗的生根有顯著促進(jìn)作用,且NAA對(duì)組培苗的生根效果優(yōu)于IBA。組培苗生根培養(yǎng)11d,基部出現(xiàn)不定根,生根適宜培養(yǎng)基為1/2 MS + 1.5 mg/L NAA,生根率為81.60%。
組培苗的移栽成活率直接關(guān)系到組培技術(shù)是否成功。組培苗從培養(yǎng)室到外界,溫度、濕度、光照等發(fā)生較大變化,需在有條件設(shè)施的地方煉苗一段時(shí)間才能移栽。有研究表明,黃樟組培苗煉苗3~5 d,采用泥炭土和珍珠巖混合基質(zhì),適當(dāng)遮光覆膜,黃樟組培苗移栽成活率高達(dá)85%[15]。沉水樟生根組培苗瓶?jī)?nèi)煉苗20~30 d,莖干成深綠色,可移栽到瓶外,采用1/3 椰糠 + 2/3 泥炭土作基質(zhì),移栽后25 d內(nèi)注意控制溫度和濕度,組培苗移栽成活率可達(dá)80%以上[6]。本研究表明,黃樟素型沉水樟組培苗生根培養(yǎng)11 ~15 d,將組培生根苗移至透光率25%~30%、溫度25~30 ℃的大棚內(nèi)煉苗7~10 d,可將生根組培苗移栽到瓶外,移栽20 d內(nèi)保持濕度90%以上,移栽成活率可達(dá)90%。待苗木莖木質(zhì)化,株高15~20 cm,可將苗木移入大田定植。