趙玉瑛 黃之鐠 張瓊 趙慶 柏葉濤 張曉梅
摘 要: 為研究劍葉龍血樹內(nèi)生真菌資源多樣性,初步探討和篩選具有抑菌活性的特異性菌株以及進(jìn)一步開發(fā)劍葉龍血樹內(nèi)生真菌的抗菌活性化合物。該文采用植物組織分離法從劍葉龍血樹莖和葉中分離內(nèi)生真菌,對內(nèi)生真菌進(jìn)行液體發(fā)酵7 d,經(jīng)乙酸乙酯萃取后制得粗提物,并采用牛津杯擴(kuò)散法,以10種常見病原菌和5種臨床耐藥菌為靶標(biāo)檢測其發(fā)酵粗提物的抑菌活性,對有較好抑菌活性的內(nèi)生真菌進(jìn)行分子鑒定。結(jié)果表明:(1)從劍葉龍血樹莖、葉中共分離得到345株內(nèi)生真菌,294株對一種以上指示菌有抑制活性;(2)其中84株內(nèi)生真菌對5株臨床耐藥菌均有不同程度的抑制活性,占所分離菌株總數(shù)的24.35%,75%的內(nèi)生真菌對金黃色葡萄球菌有抑制活性。這說明劍葉龍血樹中存在多種有抑菌活性的內(nèi)生真菌,為劍葉龍血樹內(nèi)生菌抗菌活性成分挖掘及新型抗菌藥物篩選奠定了基礎(chǔ)。
關(guān)鍵詞: 劍葉龍血樹, 內(nèi)生真菌, 分離, 抗菌活性, 真菌鑒定
中圖分類號: Q939.9 ?文獻(xiàn)標(biāo)識碼: A ?文章編號: 1000-3142(2021)07-1126-09
Abstract: To explore the resource diversity and antimicrobial capability of endophytic fungi from the endangered Dracaena cochinchinensis, and mine novel antimicrobial secondary metabolites from talent strains, endophytic fungi were isolated from stem and leaf tissues of D. cochinchinensis. All isolated strains were cultured in liquid media for seven days, the culture media were extracted with ethyl acetate and then used to estimate the antimicrobial activities against 10 pathogenic bacteria and 5 drug-resistance pathogens by using the oxford-cup test. The results were as follows:(1)345 strains were isolated and 294 of which displayed antimicrobial activities against more than one pathogen;(2)Among them, 84 endophytes(accounted for 24.35%) displayed potent inhibition against 5 drug-resistance pathogens to very degrees and 75% endophytes displayed obvious inhibition against Staphylococcus aureus. Accordingly, 40 talent strains were selected and identified to 32 species by phylogenetic analysis based on ITS sequencing. This study indicated that diverse endophytic fungi with strong antimicrobial activities inhabiting in D. cochinchinensis, which could be potential for developing antimicrobial reagents.
Key words: Dracaena cochinchinensis, endophytic fungi, isolation, antimicrobial activities, fungal identification
抗菌藥物的出現(xiàn)給感染性疾病的治療帶來了很大改變,為挽救人類生命做出了很大貢獻(xiàn),但同時也加快了病原菌耐藥性形成的速度及多重耐藥菌的出現(xiàn)(Schmalstieg et al., 2012;Lewis,2012),如耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(MRSA)。目前,抗菌藥物開發(fā)上市的速度遠(yuǎn)遠(yuǎn)趕不上病原菌耐藥性發(fā)展的速度,這就使得尋找新作用機(jī)制或新活性的化合物來開發(fā)藥物成為迫切需要。從自然界尋找抗菌成分(尤其是抗耐藥菌成分),逐漸成為抗菌藥物研發(fā)的一個重要方面。而普通環(huán)境中的微生物作為樣本被反復(fù)研究和開發(fā),化合物挖掘重復(fù)率越來越高。因此,越來越多的研究者把目光投向了特殊環(huán)境微生物。
生活在健康的植物組織中,而不會引起宿主植物組織病害癥狀的真菌稱為內(nèi)生真菌,其廣泛存在于不同種類的植物組織內(nèi)(Tanaka et al., 2002)。植物內(nèi)生菌是重要的微生物資源,尤其是一些內(nèi)生真菌在進(jìn)化過程中能產(chǎn)生與宿主結(jié)構(gòu)相同或相似的活性代謝產(chǎn)物如鬼臼素、長春堿、紫杉醇和姜黃素等(Stierle et al., 1993;張玲琪等,2000;彭清忠等,2010;王婷等,2017),這就意味著從植物內(nèi)生真菌中挖掘到與宿主植物相同或相似化學(xué)成分的潛力極大。由于生存環(huán)境的特殊性,因此,使得植物內(nèi)生真菌具有產(chǎn)生結(jié)構(gòu)豐富多樣的活性代謝產(chǎn)物的能力。目前,已從植物內(nèi)生真菌的代謝產(chǎn)物中分離得到生物堿類、甾體類、黃酮類、多肽類、萜類、環(huán)肽類等多種類型的化合物,這些不同類型的化合物具有抗菌、抗腫瘤、抗病毒及酶抑制等多種生物活性(肖支葉等,2018)。由于這些化合物具有開發(fā)成抗菌藥物的潛力,因此廣泛從內(nèi)生真菌中分離和篩選具有抗菌活性的化合物,可以為新型抗菌藥物的研發(fā)提供前期實驗基礎(chǔ),進(jìn)而改善日益嚴(yán)重的病原菌耐藥性問題。
劍葉龍血樹(Dracaena cochinchinensis)系百合科(Liliaceae)龍血樹屬(Dracaena Vand. ex L.)常綠喬木,在我國主要分布于云南、廣西。劍葉龍血樹樹脂是提取中藥要藥“龍血竭”的原料,在活血化瘀、斂瘡止血等方面具有較強(qiáng)的療效,藥效主要成分為龍血素A和龍血素B(蔡希陶和許再富,1979)。由于劍葉龍血樹生長環(huán)境惡劣,生長緩慢且產(chǎn)量較低,采集龍血竭入藥使得野生資源面臨著枯竭的威脅,現(xiàn)已被列為國家二級保護(hù)植物。為合理利用劍葉龍血樹資源,雖然近年來對劍葉龍血樹主成分的抗氧化活性、結(jié)血誘導(dǎo)劑的篩選、疏松愈傷組織誘導(dǎo)等方面進(jìn)行了研究(周艷林等,2015;韋瑩等,2016;陳乾平等,2018),但對劍葉龍血樹內(nèi)生真菌抗菌活性的研究卻鮮有報道。本研究針對此現(xiàn)象進(jìn)行了以下研究:對劍葉龍血樹內(nèi)生真菌進(jìn)行了分離及其抑菌活性研究,以期獲得具有抗菌活性的特異性菌株;為下一步從抑菌活性菌株中挖掘活性成分奠定基礎(chǔ);為劍葉龍血樹的綜合利用、新藥開發(fā)提供前期實驗研究基礎(chǔ);也為解決傳統(tǒng)民族藥用植物資源緊缺提供新的思路。
1 材料與方法
1.1 材料、儀器和試劑
1.1.1 藥材 劍葉龍血樹莖、葉于2016年1月采自云南省西雙版納勐臘縣勐侖鎮(zhèn)(樣品編號為B)、云南省熱帶作物科學(xué)研究所-西雙版納熱帶花卉園(樣品編號RJ為莖、RY為葉),采集時,戴上無菌手套用無菌工具將劍葉龍血樹健康的莖、葉采集后放入無菌的容器內(nèi),4 ℃保存?zhèn)溆?。材料由曹旸博士提供和鑒定。
1.1.2 儀器和試劑 儀器:GR-200 分析天平,廣州艾欣科學(xué)儀器有限公司;ES-315 高壓蒸汽滅菌鍋,TOMY 公司;恒溫培養(yǎng)箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;LRH-250 生化培養(yǎng)箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;N-1100 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,上海愛朗儀器有限公司;SW-CJ-2FD 潔凈工作臺,AIRTECH 公司;電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱,上海一恒科技有限公司;培養(yǎng)基配料等常用試劑耗材均購自雅云生物科技有限公司。試劑:蒸餾水,無水乙醇、甲醇、冰乙酸、乙酸乙酯、丙酮等均為分析純,通用引物ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。其他:柱式真菌基因組 DNA 抽提試劑盒從生工生物工程(上海)股份有限公司購買。
1.1.3 指示菌 大腸桿菌(Escherichia coli ATCC 25922)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus ATCC 25923)、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis ATCC 6633)、銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa PA01)、鼠傷寒沙門氏菌(Salmonella typhimurium χ 8956)、肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumonia ATCC 13883)、白色葡萄球菌(Staphylococcus albus 1029)、恥垢分枝桿菌(Mycobacterium smegmatis 1037)、鮑曼不動桿菌(Acinetobacter baumanii ATCC 19606)、糞腸球菌(Enterococcus faecalis ATCC 29212)、3株耐甲氧西林金黃色葡萄球菌(MRSA 1-3)、2株白色念珠菌的臨床耐藥菌(Drug-resistant Candida albicans 1-2)。以上供試菌株均由課題組前期研究保存。
1.1.4 培養(yǎng)基 病原細(xì)菌培養(yǎng)基 LB:胰蛋白胨10 g,酵母提取物5 g,氯化鈉10 g,瓊脂15 g,水1 L,pH 7.2~7.6。
真菌培養(yǎng)基 (1)沙保氏培養(yǎng)基:蛋白胨10 g,葡萄糖40 g,瓊脂15 g,水1 L,pH 6.0;(2)PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g (煮沸20 min 后過濾,棄渣取汁),葡萄糖20 g,瓊脂15 g,水1 L,pH 6.0~7.0;(3)PDB培養(yǎng)基:馬鈴薯200 g (煮沸20 min 后過濾,棄渣取汁),葡萄糖20 g,水1 L,pH 6.0~7.0。
1.2 方法
1.2.1 內(nèi)生真菌的分離與純化 將植物樣本在流水洗凈后,選擇沒有破損的葉片和莖,切成2 cm左右的小塊(段、片),在50%乙醇中浸泡1 min 后置于75%乙醇中1 min;根使用0.10% HgCl2處理11 min,莖使用0.10% HgCl2處理7 min,葉使用2%的NaClO處理5 min 進(jìn)行表面消毒,無菌水沖洗3~5次。將材料切成0.5 cm 左右的小塊并將切口面接入PDA培養(yǎng)基,28 ℃恒溫培養(yǎng),待組織邊緣長出真菌菌絲,挑取菌絲接種于PDA培養(yǎng)基上,28 ℃恒溫培養(yǎng)進(jìn)行反復(fù)純化后,根據(jù)菌落形態(tài)、菌絲長勢及產(chǎn)色素情況進(jìn)行菌株去重復(fù)。同時,取最后一次洗滌植物材料的無菌水0.2 mL涂布PDA培養(yǎng)基,相同條件培養(yǎng)一周觀察無菌絲生長證明表面消毒成功,所分離菌株為植物內(nèi)生菌(楊明俊等,2014;侯曉群等,2015)。將純化去重復(fù)所得菌株每株接種3~5只PDA斜面,4 ℃保存,詳細(xì)記錄每株菌的分離源及其在固體和液體培養(yǎng)基中的形態(tài)、顏色和長勢等信息,建立劍葉龍血樹內(nèi)生真菌菌種庫。
1.2.2 優(yōu)勢菌株的篩選 內(nèi)生真菌在PDB培養(yǎng)基中培養(yǎng)7 d,采用牛津杯擴(kuò)散法對發(fā)酵粗提物進(jìn)行體外抑菌活性檢測,并結(jié)合TLC結(jié)果及產(chǎn)量,篩選出優(yōu)勢菌株。
菌株發(fā)酵及提?。禾羧〗?jīng)活化的內(nèi)生真菌菌絲或孢子接種于100 mL PDB液體培養(yǎng)基中,28 ℃,200 r·min-1恒溫振蕩培養(yǎng)7 d,記錄真菌的長勢、形態(tài)、顏色等特征,加入等體積的乙酸乙酯浸泡過夜后超聲提取3次,提取液減壓濃縮回收溶劑,用有機(jī)溶劑將樣品轉(zhuǎn)移至棕色樣品瓶保存,溶劑揮干后稱取質(zhì)量。
抑菌活性檢測:病原細(xì)菌接種至液體LB培養(yǎng)基,37 ℃、200 r·min-1黑暗培養(yǎng)12 h,白色念珠菌接種至液體沙保氏培養(yǎng)基28 ℃、200 r·min-1黑暗培養(yǎng)24 h,用液體培養(yǎng)基將各菌液分別稀釋至1×106~1×107cfu·mL-1備用。
采用牛津杯擴(kuò)散法(邵穎等,2012)對各菌株的發(fā)酵粗提物進(jìn)行抑菌實驗,將稀釋后的指示菌菌液均勻涂布在固體培養(yǎng)基上。用丙酮溶解粗提物至質(zhì)量濃度為20 mg·mL-1,分別取50 μL進(jìn)行活性檢測,以50 μL丙酮做空白對照,以等體積的抗生素做陽性對照(病原細(xì)菌以5 μg萬古霉素為陽性對照,白色念珠菌以20 μg 兩性霉素B為陽性對照)。白色念珠菌28 ℃培養(yǎng),其余病原細(xì)菌于37 ℃培養(yǎng),恒溫培養(yǎng)12 h后測量抑菌圈直徑。
1.2.3化學(xué)多樣性檢測 采用薄層層析色譜法檢測內(nèi)生真菌化學(xué)多樣性。取一定量樣品加入適量的甲醇溶液,制備成5 mg·mL-1的樣品,超聲振蕩30 min后,用0.45 μm濾膜濾過。用微量點樣器吸取適量樣品,于GF254硅膠板(5 cm × 10 cm)上點樣后,以氯仿∶甲醇=10∶1為展開劑展開,當(dāng)所有樣品展開高度達(dá)到4 cm時,將薄層板移出晾干,觀察、標(biāo)記色譜結(jié)果。以各種顯色條件下條帶/斑點數(shù)較多,顯色特異的樣品對應(yīng)的菌株記為化學(xué)多樣性好的菌株。
1.2.4 優(yōu)勢菌株的分子鑒定 挑選抑制活性強(qiáng)且化學(xué)多樣性豐富的菌株培養(yǎng)3 d后,刮取菌絲50~100 mg,采用柱式真菌基因組DNA提取試劑盒提取真菌總DNA,用真菌通用引物ITS1(5′-TCCGTAGGTGAACCTGCGG-3′)和ITS4(5′-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3′)進(jìn)行ITS區(qū)域擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系50 μL:TSINGKE Master Mix 25 μL,ITS1 1 μL,ITS4 1 μL,DNA 2 μL,ddH2O 21 μL。反應(yīng)程序:94 ℃預(yù)變性3 min,進(jìn)入循環(huán),94 ℃變性1 min,55 ℃復(fù)性45 s,72 ℃延伸1 min,共35個循環(huán),72 ℃延伸 8 min(侯曉強(qiáng)等,2015)。擴(kuò)增產(chǎn)物送至生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
根據(jù)測序結(jié)果,進(jìn)行NCBI/BLAST比對,搜索同源序列,選出與該序列相關(guān)性較高的核酸序列,進(jìn)行多序列比對分析,采用MEGA 6.0(NJ法)構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(楊明俊等,2014)。
2 結(jié)果與分析
2.1 劍葉龍血樹內(nèi)生真菌的分離
從三份劍葉龍血樹植物樣品中共分離得到345株內(nèi)生真菌。其中勐侖鎮(zhèn)采集的葉片材料分離得到152株,編號為B1-152,占總數(shù)的44.05%;從熱帶花卉園采集的莖中分離得到100株,編號為RJ1-100,占總數(shù)的28.99%,葉中分離得到93株,編號為RY1-93,占總數(shù)的26.96%??梢姶鏊巹θ~龍血樹中蘊藏著豐富的內(nèi)生真菌資源。
2.2 優(yōu)勢菌株的篩選
對分離自劍葉龍血樹的345株內(nèi)生真菌進(jìn)行抗病原細(xì)菌、抗病原真菌、化學(xué)多樣性及產(chǎn)量研究,擬篩選出兼具多種抗菌活性,且化學(xué)多樣性豐富、產(chǎn)量較高的優(yōu)勢菌株。篩選結(jié)果表明,分離自云南省西雙版納勐臘縣勐侖鎮(zhèn)劍葉龍血樹的菌株(樣品編號為B),其發(fā)酵產(chǎn)物在各種顯色條件下條帶/斑點數(shù)最多,預(yù)示著有豐富的代謝產(chǎn)物,且有109株菌(71.71%)對一種以上指示菌有抑制活性;分離自云南省熱帶作物科學(xué)研究所-西雙版納熱帶花卉園的劍葉龍血樹莖部的菌株(樣品編號為RJ)抗菌活性最好,抗菌譜最廣,所有菌株對至少一種指示菌有抑制活性;分離自云南省熱帶作物科學(xué)研究所-西雙版納熱帶花卉園的劍葉龍血樹葉部的菌株(樣品編號為RY)產(chǎn)量最高,抗菌活性較好,有80株菌(86.02%)對一種以上指示菌有抑制活性。在所有分離到的內(nèi)生真菌中,對金黃色葡萄球菌和恥垢分支桿菌有抑制效果的內(nèi)生真菌數(shù)量最多,分別占總數(shù)的75.5%和62.61%。不同來源的內(nèi)生真菌對15株病原指示菌的抑制活性如表1所示。
結(jié)合內(nèi)生真菌發(fā)酵粗提物體外抑菌活性和TLC檢測結(jié)果,篩選到多株活性強(qiáng)且化學(xué)多樣性豐富的優(yōu)勢菌株,綜合結(jié)果較好的前10株菌的發(fā)酵提取物對15株病原菌的體外抑菌活性結(jié)果見表2。圖1為部分菌株對大腸桿菌、恥垢分支桿菌、MRSA 1和MRSA 2抑制作用效果。圖2為優(yōu)勢菌株的發(fā)酵粗提物的TLC檢測結(jié)果,從上到下依次為紫外254 nm、365 nm、碘、硫酸乙醇下顯色,各份樣品在在各種顯色條件下條帶/斑點數(shù)較多,顯色特異,初步判斷其化學(xué)多樣性豐富,具有挖掘新穎化合物的潛力。
2.3 優(yōu)勢菌株的分子鑒定
結(jié)合體外抑菌活性評價、TLC篩選和代謝產(chǎn)物產(chǎn)量,選擇抑菌譜廣、活性較強(qiáng)、化學(xué)多樣性豐富且產(chǎn)量高的40株內(nèi)生真菌進(jìn)行ITS分子鑒定。測序結(jié)果提交至GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行BLAST相似性比較。比對結(jié)果顯示這些菌株分屬于柱銹菌屬(Diaporthe)、鐮刀菌屬(Fusarium)、擬盤多毛孢屬(Pestalotiopsis)、輪層炭殼菌屬(Daldinia)、帚梗柱孢屬(Cylindrocladium)、炭角菌屬(Xylaria)、炭疽菌屬(Colletotrichum)、擬莖點霉屬(Phomopsis)、叢赤殼屬(Nectria)、黑孢屬(Nigrospora)、黑團(tuán)孢屬(Periconia)、枝孢屬(Cladosporium)、暗球腔菌屬(Phaeosphaeria)、Acrocalymma 14個屬的30個種以及糞殼菌綱(Sordariomycetes)和格孢腔菌目(Pleosporales)的2個物種。菌株B-132、RY-44、RJ-34、B-150、B-76、RJ-44、B-143、RY-15分別與GenBank數(shù)據(jù)庫中標(biāo)準(zhǔn)菌株Cladosporium sp. (JQ388271)、Xylaria sp. (JQ341078)、Acrocalymma sp. (KU747920)、Phaeosphaeria papaya (KT224848)、Nigrospora sp. (FJ527872)、Sordariomycetes sp. (HQ130707)、Periconia sp. (MK367489)、Pestalotiopsis sp. (MH445915)相似性為100%,其余菌株與其最相近菌株的相似性在95%~99%之間。在40株活性菌株中,鐮刀菌屬6株、輪層炭殼菌屬5株、炭疽菌屬5株和柱銹菌屬5株,4個屬物種超過所選物種50%,為劍葉龍血樹活性內(nèi)生真菌的優(yōu)勢種群(表3,圖3)。
3 討論與結(jié)論
本實驗獲得的40株優(yōu)勢菌株經(jīng)ITS分子類鑒定,歸于32個物種,其中部分活性內(nèi)生真菌的親緣菌屬已有抗菌、抗腫瘤等活性化合物的報道,如與B-152同屬的黃花蒿內(nèi)生真菌Colletotrichum sp.產(chǎn)生的colletotricacid對真菌具有很強(qiáng)的抑制作用(Lu et al., 2000);與RJ-27同屬的紅樹尖瓣海蓮內(nèi)生真菌(Phomopsis longicolla HL-2232)能產(chǎn)生具有抗菌活性的生物堿類化合物 2-(2′S-羥丙基)-5-甲基-7-羥基對氧萘酮(宋鑫明等,2015);本實驗所獲優(yōu)勢菌屬鐮刀菌屬真菌能產(chǎn)生多種具有抗菌活性的次生代謝產(chǎn)物類型(Kyekyeku et al., 2017;Liu et al., 2019)。由此可見,劍葉龍血樹抑菌活性內(nèi)生真菌具有產(chǎn)生多種抑菌活性物質(zhì)的潛力,值得進(jìn)行下一步活性代謝產(chǎn)物挖掘。同時,我們還從劍葉龍血樹中分離到Acrocalymma sp.(RJ-34),該菌株對15株病原指示菌均有較好的抑制活性,對3株MRSA的抑菌效果較為突出,且化學(xué)多樣性豐富,但這個屬物種迄今均未有次生代謝產(chǎn)物研究報道,可以大膽推測從中發(fā)現(xiàn)新穎抗菌活性成分的幾率較大,并將其列為優(yōu)先進(jìn)行活性代謝產(chǎn)物挖掘的對象。
研究表明,一些內(nèi)生真菌在與宿主植物協(xié)同進(jìn)化過程中,能產(chǎn)生與宿主植物相同或相似的活性代謝產(chǎn)物,因此,在化學(xué)多樣性檢測實驗中,加入了“龍血竭”的主要成分龍血素A和龍血素B作為對照,期望能找到這樣的特異性菌株,為劍葉龍血樹資源的保護(hù)提供新的途徑。但是未能找到,可能的原因有以下兩點:其一,發(fā)酵液中的目的產(chǎn)物量少,未能檢測出來,在今后的實驗中可以加大發(fā)酵量,并采用更加靈敏的檢測手段(如高效液相);其二,內(nèi)生真菌的分離和培養(yǎng)通常采用PDA培養(yǎng)基,28 ℃培養(yǎng),而有些內(nèi)生真菌并不適合在此條件下培養(yǎng)而導(dǎo)致沒有被分離出來,即使采用多種培養(yǎng)基對植物組織進(jìn)行培養(yǎng)也并不能保證植物組織內(nèi)的內(nèi)生真菌被全部分離出來,所以最重要的還是要建立與宿主植物內(nèi)環(huán)境類似的生態(tài)模型,才能真實反映植物內(nèi)生菌的生物學(xué)特征。
綜上所述,劍葉龍血樹中廣泛分布具有抗菌活性的菌株,篩選出的優(yōu)勢菌株具有較好的抑菌活性、產(chǎn)量高、化學(xué)多樣性豐富,且菌種穩(wěn)定易培養(yǎng),具有巨大的開發(fā)潛能,部分菌株活性代謝產(chǎn)物的挖掘工作正在積極進(jìn)行中。
參考文獻(xiàn):
CAI XT, XU ZF, 1979. Study on the plant resources of Dracaena draconis in China [J]. Acta Bot Yunnan, 1(2): 1-10. [蔡希陶, 許再富, 1979. 國產(chǎn)血竭植物資源研究 [J]. 云南植物研究, 1(2): 1-10.]
CHEN QP, TANG CF, LONG HR, et al., 2018. Determination of Loureirin A and Loureirin B inartificially induced dragons blood of Dracaena cochinchinensis [J]. Contemp Chem Ind, 47(2): 434-436. [陳乾平, 唐春風(fēng), 龍海榮, 等, 2018. 劍葉龍血樹化學(xué)誘導(dǎo)結(jié)血物中龍血素A、龍血素B的測定及誘導(dǎo)劑效果評價 [J]. 當(dāng)代化工, 47(2): 434-436.]
HOU XQ, REN XY, FU YJ, et al., 2015. Study on antimicrobial activity and classification of endophytic fungi from Glehnia littoralis [J]. Chin Trad Herbal Drug, 46(19): 2932-2936. [侯曉強(qiáng), 任秀艷, 付亞娟, 等, 2015. 北沙參內(nèi)生真菌的抑菌活性與分類研究 [J]. 中草藥, 46(19): 2932-2936.]
KYEKYEKU JP, KUSARI S, ADOSRAKU RK, et al., 2017. Antibacterial secondary metabolites from an endophytic fungus, Fusarium solani JK10 [J]. Fitoterapia, 4(7): 108-114.
LEWIS W, 2012. Antibiotics: recover the lost art of drug discovery [J]. Nature, 485(7399): 439-440.
LIU XB, ZHENG N, LIANG LQ, et al., 2019. Secondary??metabolites from the endophytic fungus Fusarium equiseti and their antibacterial activities [J]. Chem Nat Compd, 55(6): 1141-1143.
LU H, ZOU WX, MENG JC, et al., 2000. New bioactive metabolites produced by Colletotrichum sp., an endophytic fungus in Artemisia annua [J]. Plant Sci, 151(1): 67-73.
PENG QZ, CHEN L, YI LB, et al., 2010. Transformation of curcumin by endophytic fungus Diaporthe sp. isolated from Curcuma longa [J]. Lett Biotechnol, 21(2): 196-199. [彭清忠, 陳玲, 易浪波, 等, 2010. 內(nèi)生真菌對姜黃素的微生物轉(zhuǎn)化 [J]. 生物技術(shù)通訊, 21(2): 196-199.]
SCHMALSTIEG AM, SRIVASTAVA S, BELKAYA S, et al.,2012. The antibiotic resistance arrow of time: Efflux pump induction is a general first step in the evolution of mycobacterial drug resistance [J]. Antimicrob Agents Chemother, 56(9): 4806-4815.
SHAO Y, CHEN HW, CHAI WB, et al., 2012. Isolation and purification of antibacterial components in fermentation broth of Paecilomyces militaris [J]. Food Sci, 33(23): 116-120. [邵穎, 陳宏偉, 柴文波, 等, 2012. 蛹擬青霉發(fā)酵液中抑菌活性成分的分離純化 [J]. 食品科學(xué), 33(23): 116-120.]
SONG XM, ZHOU XM, LI XB, et al., 2015. Secondary metabolites of a Bruguiera sexangula var. rhynchopetala derived fungus Phomopsis longicolla HL-2232 [J]. Chin J Org Chem, 35(10): 2102-2107. [宋鑫明, 周學(xué)明, 李小寶, 等, 2015. 紅樹尖瓣海蓮內(nèi)生真菌Phomopsis longicolla HL-2232 次級代謝產(chǎn)物研究 [J]. 有機(jī)化學(xué), 35(10): 2102-2107.]
STIERLE A, STROBEL GA, STIERLE D, 1993. Taxol and taxane production by Taxomyces andreanae, an endophytic fungus of Pacific yew [J]. Sci, 260(5105): 214-216.
TANAKA M, YOSHIMURA M, SUTO M, et al., 2002. Production of lepidimoide by an endophytic fungus from polysaccharide extracted from Abelmoschus sp.: Identification of the product and the organism producing it [J]. J Biosci Bioeng, 93(6): 531-536.
WANG T, MA YX, YE YH, et al., 2017. Screening and identification of endophytic fungi producing podophyllotoxin compounds in Sinopodophyllum hexandrum stems [J]. Chin J Exp Trad Med Formul, 23(2): 27-31. [王婷, 馬越興, 葉耀輝, 等, 2017. 桃兒七莖部產(chǎn)鬼臼毒素類成分的內(nèi)生真菌篩選及鑒定 [J]. 中國實驗方劑學(xué)雜志, 23(2): 27-31.]
WEI Y, HUANG BY, MIAO JH, et al., 2016. Study on the loose callus induction technology of Dracaena cochinchinensis (Lour) S. C. Chen [J]. Seed, 35(8): 80-82. [韋瑩, 黃寶優(yōu), 繆劍華, 等, 2016. 劍葉龍血樹疏松愈傷組織誘導(dǎo)技術(shù)研究 [J]. 種子, 35(8): 80-82.]
XIAO ZY, HUA M, YUAN XL, et al., 2018. Activity inhibition of human pathogenic bacteria by secondary metabolites from Malania oleifera endophytic fungi [J]. Guihaia, 38(7): 903-910. [肖支葉, 華梅, 原曉龍, 等, 2018. 蒜頭果內(nèi)生真菌次生代謝產(chǎn)物抑制人類致病菌活性的研究 [J]. 廣西植物, 38(7): 903-910.]
YANG MJ, LI J, XUE HY, et al., 2014. Isolation of endophyte fungi in Narcissus tazetta var. chinensis and their antimicrobial and antitumor activities [J]. Chin Trad Herb Drug, 45(6): 819-824. [楊明俊, 李娟, 薛鴻燕, 等, 2014. 水仙內(nèi)生真菌的分離及抑菌和抗腫瘤活性研究 [J]. 中草藥, 45(6): 819-824.]
ZHANG LQ, GUO B, LI HY, et al., 2000. Preliminary study on the isolation of endophytic fungus of Catharanthus roseus and its fermentation to produce products of therapeutic value [J]. Chin Trad Herbal Drug, 31(11): 805-807. [張玲琪, 郭波, 李海燕, 等, 2000. 長春花內(nèi)生真菌的分離及其發(fā)酵產(chǎn)生藥用成分的初步研究 [J]. 中草藥, 31(11): 805-807.]
ZHOU YL, MIN JG, ZOU Z, et al., 2015. Evaluation on anti-oxidant capacity of Dracaena cochinchinensis by HPLC-DPPH and analysis on structure-activity relationship [J]. Chin Trad Herbal Drug, 46(12): 1797-1799. [周艷林, 閔建國, 鄒準(zhǔn), 等, 2015. HPLC-DDPH評價劍葉龍血樹中抗氧化活性成分及構(gòu)效關(guān)系 [J]. 中草藥, 46(12): 1797-1799.]
(責(zé)任編輯 周翠鳴)