国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

甘藍(lán)蔗糖磷酸合酶家族的鑒定和表達(dá)分析

2021-09-11 00:58:39山溪秦文斌張振超姚悅梅戴忠良饒斌
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2021年16期
關(guān)鍵詞:低溫脅迫甘藍(lán)

山溪 秦文斌 張振超 姚悅梅 戴忠良 饒斌

摘要:蔗糖磷酸合酶(SPS)是調(diào)節(jié)植物蔗糖生物合成的關(guān)鍵酶。SPS由不同的基因編碼組成,具有不同的表達(dá)模式和功能差異。利用擬南芥SPS蛋白保守結(jié)構(gòu)域在甘藍(lán)全基因組共鑒定到6個甘藍(lán)SPS家族成員。進(jìn)化分析結(jié)果表明甘藍(lán)SPS基因分為3個亞族。6個BoSPSs家族成員被定位在甘藍(lán)的5條染色體上。啟動子順式作用元件分析結(jié)果表明,BoSPSs含有許多與激素、逆境和光響應(yīng)相關(guān)的順式作用元件。RNA-Seq結(jié)果表明,BoSPSA1a在各個組織中均具有較高的表達(dá)量,BoSPSB除了在芽中表達(dá)量較高,在其他各個器官/組織中表達(dá)量均較低;冷敏甘藍(lán)(CS-D9)和耐冷甘藍(lán)(CT-923)中BoSPSA1b低溫處理后均上調(diào)表達(dá),且不同時間點(diǎn)耐冷甘藍(lán)中的表達(dá)量均明顯高于冷敏甘藍(lán)。本研究結(jié)果有助于了解甘藍(lán)SPS家族的信息,增加了對這些基因在甘藍(lán)生長發(fā)育過程中及低溫脅迫中所起的作用的理解。

關(guān)鍵詞:蔗糖磷酸合酶;甘藍(lán);低溫脅迫;BoSPSs基因;基因表達(dá)分析

中圖分類號:S188+.3 文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A 文章編號:1002-1302(2021)16-0053-07

高等植物中,蔗糖是生命周期的基本要素,它主要由光合作用源組織產(chǎn)生,并被運(yùn)輸?shù)轿战M織,然后作為各種代謝途徑的碳源和能量源[1]。蔗糖可用于維持細(xì)胞代謝、細(xì)胞壁的生物合成、呼吸作用,或轉(zhuǎn)化為淀粉供以后使用。參與蔗糖合成的重要酶是蔗糖合酶和蔗糖磷酸合酶(sucrose phosphate synthase,SPS),其中SPS催化果糖-6-磷酸和二磷酸尿苷葡糖合成蔗糖-6-磷酸,這是調(diào)控植物蔗糖合成的重要步驟。SPS被認(rèn)為是調(diào)控源葉和蔗糖庫中蔗糖合成或積累的控制因子。SPS通過調(diào)節(jié)碳在淀粉和碳水化合物積累之間的分配,從而在碳水化合物代謝中發(fā)揮重要的作用[2-4]。已有研究表明,植物中有多種SPS的亞型,它們的表達(dá)隨著發(fā)育、組織類型和環(huán)境信號的不同而呈現(xiàn)出差異性[5]。SPS受3種不同的機(jī)制調(diào)控:(1)基因表達(dá)[6];(2)葡萄糖-6-磷酸(激活劑)和無機(jī)磷酸鹽(抑制劑)的變構(gòu)調(diào)控[7];(3)可逆磷酸化共價(jià)修飾[6]。SPS在適應(yīng)寒冷和干旱的器官/組織、黃化子葉、發(fā)芽的種子中受到調(diào)節(jié)[6]。在煙草的雙雜交篩選中,發(fā)現(xiàn)2個14-3-3蛋白亞型與SPS相互作用,此外,缺失分析結(jié)果表明,SPS蛋白親和力的差異是由14-3-3s的可變C末端介導(dǎo)的[4]。

SPS作為糖基轉(zhuǎn)移酶超家族成員,有多種亞型存在[8-9]。目前,植物中發(fā)現(xiàn)有A、B、C、D等 4個SPS亞家族[10]。擬南芥中A家族有2個成員(AtSPSA1和AtSPSA2),AtSPSA1在光合作用合成蔗糖中有重要作用[11],AtSPSA2主要參與花粉發(fā)育后期的蔗糖代謝[12]。煙草中C家族僅在源葉中表達(dá),A和B家族在多個組織中均表達(dá)[4]。甘蔗和小麥中4個家族在不同組織中均具有差異性表達(dá),甘蔗中B家族在幼葉和老葉中高表達(dá)[9]。

甘藍(lán)屬于十字花科蕓薹屬,營養(yǎng)豐富,適應(yīng)性和抗逆性均較強(qiáng),在我國年種植面積約90萬hm2,在蔬菜供應(yīng)中有重要地位[13]。本研究利用生物信息學(xué)分析,分離鑒定了甘藍(lán)基因組中的SPS基因家族成員,并從全基因組水平上分析SPS基因結(jié)構(gòu)、啟動子順式作用元件及其在染色體上的分布,探究BoSPS基因在響應(yīng)低溫中的作用。以期為進(jìn)一步研究甘藍(lán)SPS基因的功能和甘藍(lán)蔗糖水平改良奠定基礎(chǔ)。

1 材料與方法

1.1 甘藍(lán)SPS基因家族成員的鑒定

擬南芥的SPS基因來源于TAIR數(shù)據(jù)庫(https://www.arabidopsis.org/),白菜和甘藍(lán)的基因組序列來源于BRAD數(shù)據(jù)庫(http://brassicadb.org/brad/)[14-16],通過Pfam 33.1數(shù)據(jù)庫(http://pfam.xfam.org/)獲取SPS含有的蔗糖合成酶(Sucrose-synth,PF00862)、糖基轉(zhuǎn)移酶(Glycos-transf-1,PF00534)和蔗糖-6-磷酸水解酶(S6PP,PF05116)結(jié)構(gòu)域的隱馬爾科夫模型(HMM),利用hmmer(http://www.hmmer.org/)軟件在全基因組數(shù)據(jù)庫中搜索同時含有這3個結(jié)構(gòu)域的序列,并將此蛋白序列作為候選BoSPS序列。通過Pfam數(shù)據(jù)庫(http://pfam.xfam.org/)、SMART(http://smart.embl-heidelberg.de)和NCBI batch CD-search(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/bwrpsb/bwrpsb.cgi)檢測所有候選SPS蛋白序列的保守結(jié)構(gòu)域,將同時含有3個結(jié)構(gòu)域的蛋白序列作為甘藍(lán)SPS基因家族序列[17],剔除不含以上結(jié)構(gòu)域或結(jié)構(gòu)域不完整的序列。甘藍(lán)BoSPSs基因根據(jù)其與AtSPSs序列的同源性及共線性關(guān)系添加后綴(a、b、……等)來命名。

1.2 甘藍(lán)SPS蛋白序列特征預(yù)測和保守基序分析

使用ExPaSy在線工具(https://web.expasy.org/protparam/)對獲得的甘藍(lán)SPS蛋白質(zhì)序列進(jìn)行氨基酸數(shù)、分子量、理論等電點(diǎn)、脂肪族氨基酸數(shù)量和蛋白質(zhì)疏水性進(jìn)行分析[18]。使用CELLO v.2.5(http://cello.life.nctu.edu.tw/)和Cell-PLoc 2.0(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/Cell-PLoc-2/)對甘藍(lán)SPS蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測。使用模體分析工具M(jìn)EME(http://meme-suite. org/)對甘藍(lán)SPS蛋白進(jìn)行保守基序分析,其中最適基序?qū)挾仍O(shè)置為6~50,最大基序設(shè)置為15,其他為默認(rèn)參數(shù)。

1.3 甘藍(lán)SPS基因系統(tǒng)進(jìn)化分析和內(nèi)含子/外顯子結(jié)構(gòu)分析

根據(jù)擬南芥中SPS基因亞家族的劃分,使用MEGA 6.0軟件,將擬南芥、白菜和甘藍(lán)的16個SPS蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,采用鄰接法(Neighbor-joining),設(shè)置Bootstrap值為1 000,其他為默認(rèn)參數(shù)。使用基因結(jié)構(gòu)圖繪制工具GSDS 2.0(http://gsds.gao-lab.org/),根據(jù)BoSPSs基因的編碼(CDS)序列及其相對應(yīng)的DNA序列,繪制BoSPSs基因外顯子/內(nèi)含子結(jié)構(gòu)圖。

1.4 甘藍(lán)SPS基因染色體定位和共線性分析

根據(jù)BoSPSs基因在染色體上的位置分布信息,使用MapChart 軟件繪制BoSPSs基因的染色體定位圖譜。利用BRAD數(shù)據(jù)庫分析甘藍(lán)與擬南芥、甘藍(lán)與白菜之間的直系和旁系同源基因關(guān)系,利用TBtools[19]繪制共線性圖。

1.5 甘藍(lán)SPS基因啟動子區(qū)域順式作用元件分析

利用New PLACE在線軟件(https://sogo.dna.affrc.go.jp/)分析BoSPSs起始密碼子上游2 000 bp序列中激素響應(yīng)元件(ABRE、ERE、P-Box、TCA-Element、TGA-Element、TGACG-Motif)、脅迫響應(yīng)元件(LTR、MBS、STRE、TC-Rich Repeats)和光響應(yīng)元件(MRE、G-Box、GT1-Motif)等順式作用元件。

1.6 甘藍(lán)SPS基因在不同器官/組織表達(dá)特性以及低溫脅迫下的表達(dá)譜分析

根據(jù)甘藍(lán)在不同組織/器官(愈傷組織、根、莖、芽、葉、花和角果)的RNA-Seq數(shù)據(jù)(SRA accession:GSE42891),本研究通過RPKM (reads per kilobases per million reads) 值來表示甘藍(lán)SPS基因在不同器官/組織中的表達(dá)豐度,并繪制BoSPS的表達(dá)圖。

冷敏甘藍(lán)(CS-D9)和耐冷甘藍(lán)(CT-923)的幼苗長到5張真葉時,轉(zhuǎn)移至4 ℃的春化室進(jìn)行低溫處理(T),對照(CK)的幼苗仍處于正常生長條件(白天25 ℃/夜晚18 ℃,光照14 h/黑暗10 h),分別對處理6、24 h的幼苗葉片進(jìn)行取樣,葉片剪碎后存儲在-80 ℃冰箱中用于RNA-Seq分析。根據(jù)BoSPSs基因的FPKM值繪制其低溫表達(dá)圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 甘藍(lán)SPS基因家族成員的篩選及系統(tǒng)進(jìn)化分析

在甘藍(lán)基因組中篩選到6個BoSPS基因(表1),分別命名為BoSPSA1a、BoSPSA1b、BoSPSA2、BoSPSA3、BoSPSB、BoSPSC。這6個BoSPS蛋白序列中均含有蔗糖合成酶結(jié)構(gòu)域、糖基轉(zhuǎn)移酶結(jié)構(gòu)域和蔗糖-6-磷酸水解酶結(jié)構(gòu)域。這6個BoSPS蛋白序列的長度從872個氨基酸(BoSPSA1b)到1 065個氨基酸(BoSPSB),相對分子質(zhì)量從97.11 ku(BoSPSA1b)到119.58 ku(BoSPSB),理論等電點(diǎn)從5.55(BoSPSA1b)到6.33(BoSPSA3),BoSPSs蛋白的理論等電點(diǎn)均在7以下,呈酸性形式存在。

BoSPS蛋白的亞細(xì)胞定位預(yù)測結(jié)果如表2所示,CELLO在線工具預(yù)測BoSPS蛋白均位于細(xì)胞質(zhì)中,但是Cell-PLoc在線工具的預(yù)測結(jié)果表明BoSPS蛋白均位于葉綠體中。

將擬南芥、白菜和甘藍(lán)的16個SPS蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,系統(tǒng)發(fā)育分析結(jié)果(圖1)表明,根據(jù)聚類將這些SPS蛋白成員分為3個不同的進(jìn)化枝。其中,進(jìn)化枝A包括BoSPSA1a、BoSPSA1b、BoSPSA2和BoSPSA3,進(jìn)化枝B只有BoSPSB,進(jìn)化枝C只有BoSPSC。

2.2 甘藍(lán)SPS基因的染色體定位、基因結(jié)構(gòu)和蛋白基序分析

6個BoSPSs基因分別被定位在5條染色體上(圖2),其中,BoSPSA1b和BoSPSC錨定在染色體C02上,BoSPSA2定位在染色體C03,BoSPSB分布在染色體C05上,BoSPSA3定位在染色體C07,而BoSPSA1a在染色體C09上。根據(jù)甘藍(lán)、白菜和擬南芥的共線性關(guān)系(圖3),與擬南芥SPS基因相比,甘藍(lán)和白菜中的SPS基因均沒有丟失,在蕓薹屬特有的全基因組三倍化事件過程中均被保存了下來。且BoSPSA3和BrSPSA3在進(jìn)化過程中特異性地存在于甘藍(lán)和白菜中。其中甘藍(lán)中的BoSPSA1a和BoSPSA1b,白菜中的BrSPSA1a和BrSPSA1b分別保留了雙拷貝,而甘藍(lán)中的BoSPSB和BoSPSC,白菜中的BrSPSB和BrSPSC均是單拷貝。

通過比較BoSPSs基因的CDS序列及其相應(yīng)的基因組DNA序列,確定了BoSPSs的基因結(jié)構(gòu)(圖4),6個BoSPSs均含有11~13個外顯子,除了BoSPSB,其他5個BoSPSs均含有13個外顯子。BoSPSB在內(nèi)含子丟失上存在差異,導(dǎo)致了其與其他BoSPSs在基因結(jié)構(gòu)上的差異性。

使用MEME在線分析工具在BoSPS蛋白中預(yù)測出15個保守元件。結(jié)果(圖5)顯示,BoSPSA1b中無motif9和motif15;而僅BoSPSB具有motif11。其他BoSPSs在蛋白基序中均具有類似的結(jié)構(gòu)。

2.3 甘藍(lán)SPS基因啟動子順式作用元件分析

甘藍(lán)SPS啟動子序列中有許多與激素、逆境和光響應(yīng)相關(guān)的順式作用元件。通過PlantCARE數(shù)據(jù)庫預(yù)測了BoSPSs成員中激素響應(yīng)元件(ABRE、ERE、P-Box、TCA-Element、TGA-Element、TGACG-Motif)、脅迫響應(yīng)元件(LTR、MBS、STRE、TC-Rich Repeats)和光響應(yīng)元件(MRE、G-Box、GT1-Motif)等13個順式作用元件。由表3可知,這些順式作用元件在6個BoSPSs啟動子序列中具有差異性分布,其中6個BoSPSs啟動子區(qū)域均含有脫落酸響應(yīng)元件(ABRE)。

2.4 甘藍(lán)SPS基因轉(zhuǎn)錄組表達(dá)特性分析

甘藍(lán)SPS基因組織/器官的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)結(jié)果(圖6)顯示,相比于其他器官/組織,BoSPSA1a和BoSPSC在花中的表達(dá)量比較高,二者高水平的表達(dá)量在甘藍(lán)開花期間能夠確保甘藍(lán)花中蔗糖的穩(wěn)定合成;BoSPSA1a和BoSPSC在愈傷組織中的表達(dá)量比較高。甘藍(lán)6個BoSPSs成員中,BoSPSA1a在花中的表達(dá)量最高;而BoSPSB在各個組織中的表達(dá)量均比較低,但在芽中表達(dá)量較高。BoSPSA1a在各個組織中的表達(dá)量均比較高。

由圖7可知,低溫處理6 h時,與對照相比,CS-D9 處理中BoSPSA1a、BoSPSA1b、BoSPSA2均明顯上調(diào)表達(dá),而BoSPSB則明顯下調(diào)表達(dá);CT-923中BoSPSA1b、BoSPSA2、BoSPSA3均明顯上調(diào)表達(dá),而BoSPSB、BoSPSC則明顯下調(diào)表達(dá)。低溫處理24 h時,與對照相比,CS-D9中BoSPSA1a、BoSPSA1b、BoSPSA2 BoSPSB均明顯上調(diào)表達(dá),而BoSPSA3 BoSPSC則明顯下調(diào)表達(dá);CT-923中BoSPSA1a、BoSPSA1b BoSPSA2均明顯上調(diào)表達(dá),而BoSPSC則明顯下調(diào)表達(dá)。

3 討論與結(jié)論

隨著越來越多植物基因組測序的完成,更多的SPS基因家族成員得到了分離鑒定[20-21]。大多數(shù)植物中編碼SPS的基因?yàn)?~5個[22-23],擬南芥中發(fā)現(xiàn)了4個,而白菜中有6個,玉米和大豆中發(fā)現(xiàn)了7個SPS基因[10,20],陸地棉中發(fā)現(xiàn)了10個[24]。本研究在甘藍(lán)全基因組水平上分離鑒定出6個BoSPSs基因,我們發(fā)現(xiàn)擬南芥、甘藍(lán)和白菜中SPS基因的數(shù)量是不同的,擬南芥中有4個AtSPS基因,白菜中有6個BrSPS基因。其中,BoSPSs和BrSPSs均多于AtSPSs,但又不是理論上的3倍數(shù)量關(guān)系,這可能是蕓薹屬植株所特有的全基因組三倍化事件,以及后來發(fā)生的偏性基因丟失事件造成的[14],而蔗糖物種中Ka/Ks的分子進(jìn)化分析結(jié)果表明,多倍性降低了SPS基因的選擇壓力[25]。在擬南芥、甘藍(lán)和白菜的共線性分析中,我們發(fā)現(xiàn)甘藍(lán)與擬南芥發(fā)生分化之后,BoSPSAs保留了雙拷貝,BoSPSB和BoSPSC均保留了單拷貝。通過基因結(jié)構(gòu)和蛋白基序分析,我們發(fā)現(xiàn)甘藍(lán)中各SPS基因均具有較大的差異,而外顯子結(jié)構(gòu)的差異在基因家族的進(jìn)化中起著重要作用[26]。

Crof等對已知的SPS基因進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析,將其分為4個不同的亞家族,其中,雙子葉植物中有3個亞家族,分別為A、B、C亞族,而D亞族是單子葉植物所獨(dú)有的[9]。本研究中BoSPSs可分為3個亞家族,BoSPSA1a、BoSPSA1b、BoSPSA2、BoSPSA3屬于A族,這是雙子葉植物和單子葉植物中SPS最大也是最重要的一個亞家族。許多植物中,A亞族的SPS基因在各檢測器官/組織中均具有較高的表達(dá)量。張莉等在對甘藍(lán)型油菜的研究中發(fā)現(xiàn) BnSPSA1-2、BnSPSA1-3、BnSPSC-1和BnSPSC-2在葉片中表達(dá)量較高[27]。本研究中也發(fā)現(xiàn)BoSPSAs在7個器官/組織中(愈傷組織、根、莖、葉、芽、花和角果)均具有較高的表達(dá)量。

SPS基因的表達(dá)模式和生物功能在不同植物不同亞家族中存在差異性[28]。水稻的OsSPS1屬于B亞族,僅在葉片的葉肉細(xì)胞、未成熟花序中表達(dá)[29-30],甘蔗中SofSPSB(B族)在葉片中的表達(dá)量可以忽略不計(jì),說明SofSPSB不參與蔗糖的合成[28]。本研究中,甘藍(lán)BoSPSA1a在花中的表達(dá)量比較高,可能參與花中蔗糖的合成。據(jù)推測,SPSC在煙草中參與夜間代謝階段的蔗糖合成[31];而蘋果中MdSPS6參與葉片和果實(shí)發(fā)育后期的蔗糖合成[32]。玉米中的ZmSPS1、ZmSPS6和ZmSPS7在葉片中高表達(dá),ZmSPS2在葉片和花粉中都有高表達(dá),而ZmSPS3、ZmSPS4和ZmSPS5在所有組織中均表現(xiàn)出較低的組成表達(dá),為維持不同組織對蔗糖的基本需求提供了依據(jù)[5]。甘蔗中D家族基因具有構(gòu)成性表達(dá),并在甘蔗中蔗糖合成發(fā)揮基本的功能。甘藍(lán)BoSPSA1a和BoSPSA3在各個組織中均具有較高的表達(dá)水平,而同一亞族的BoSPSA1b在根中表達(dá)量很低。BoSPSC在角果和花中表達(dá)量比較高,說明它可能在種子發(fā)育時期與甘藍(lán)產(chǎn)量的積累相關(guān)。在CS-D9和CT-923中,低溫處理時,參與蔗糖合成的主要是進(jìn)化枝A中的BoSPSs基因(除了BoSPSA3),均是上調(diào)表達(dá),其中CT-923比CS-D9中BoSPSs基因的表達(dá)上調(diào)幅度更大。低溫處理24 h時,BoSPSC基因的表達(dá)量明顯下調(diào)。甘藍(lán)SPS的活性與蔗糖的合成速率有關(guān),這些結(jié)果表明,在低溫脅迫下,耐冷甘藍(lán)中的BoSPSs能促進(jìn)蔗糖的合成,增強(qiáng)甘藍(lán)的低溫耐性。

在甘藍(lán)全基因組中,通過分離鑒定得到6個BoSPSs,根據(jù)系統(tǒng)發(fā)育分析將BoSPSs分為3個亞族。該家族成員啟動子區(qū)域的順式作用元件與激素、逆境、光響應(yīng)相關(guān),基因的表達(dá)也具有明顯的組織特異性,BoSPSA1a在各個組織中的表達(dá)量均較高,BoSPSB除了在芽中表達(dá)量較高,在其他各個組織/器官中表達(dá)量均較低。低溫脅迫下,BoSPSA1a、BoSPSA1b和BoSPSA2的表達(dá)量均上調(diào)。推測這些BoSPSs基因可能在甘藍(lán)低溫響應(yīng)中發(fā)揮了重要的作用。

參考文獻(xiàn):

[1]白蓓蓓,陳業(yè)淵,王 鵬. 植物蔗糖合酶家族基因鑒定及序列和進(jìn)化分析[J]. 分子植物育種,2018,16(7):2175-2179.

[2]Baxter C J,F(xiàn)oyer C H,Turner J,et al. Elevated sucrose-phosphate synthase activity in transgenic tobacco sustains photosynthesis in older leaves and alters development[J]. Journal of Experimental Botany,2003,54(389):1813-1820.

[3]Lunn J E. Sucrose-phosphatase gene families in plants[J]. Gene,2003,303:187-196.

[4]Chen S,Hajirezaei M,Bornke F. Differential expression of sucrose-phosphate synthase isoenzymes in tobacco reflects their functional specialization during dark-governed starch mobilization in source leaves[J]. Plant Physiology,2005,139(3):1163-1174.

[5]Lutfiyya L L,Xu N,Dordine R L,et al. Phylogenetic and expression analysis of sucrose phosphate synthase isozymes in plants[J]. Journal of Plant Physiology,2007,164(7):923-933.

[6]Huber S C,Huber J L. Role and regulation of sucrose-phosphate synthase in higher plants[J]. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology,1996,47:431-444.

[7]Doehlert D C,Huber S C. The role of sulhydyl groups in the regulation of spinach leaf sucrose phosphate synthase [J]. Biochimica Biophysica Acta,1985,93:353-355.

[8]Chen S,Hajirezaei M,Peisker M,et al. Decreased sucrose-6-phosphate phosphatase level in transgenic tobacco inhibits photosynthesis,alters carbohydrate partitioning,and reduces growth[J]. Planta,2005,221(4):479-492.

[9]Grof C P L,So C,Perroux J M,et al. Research note:the five families of sucrose-phosphate synthase genes in Saccharum spp. are differentially expressed in leaves and stem[J]. Functional Plant Biology,2006,33(6):605-610.

[10]Castleden C K,Aoki N,Gillespie V J,et al. Evolution and function of the sucrose-phosphate synthase gene families in wheat and other grasses[J]. Plant Physiology,2004,135(3):1753-1764.

[11]Sun J,Zhang J,Larue C T,et al. Decrease in leaf sucrose synthesis leads to increased leaf starch turnover and decreased RuBP regeneration-limited photosynthesis but not Rubisco-limited photosynthesis in Arabidopsis null mutants of SPSA1[J]. Plant,Cell & Environment,2011,34(4):592-604.

[12]Jiang J,Zhang Z,Cao J. Pollen wall development:the associated enzymes and metabolic pathways[J]. Plant Biology,2013,15(2):249-263.

[13]楊麗梅,方智遠(yuǎn),莊 木,等. “十二五”我國甘藍(lán)遺傳育種研究進(jìn)展中國蔬菜[J]. 中國蔬菜,2016(11):1-6.

[14]Wang X W,Wang H,Wang J,et al. The genome of the mesopolyploid crop species Brassica rapa[J]. Nature Genetics,2011,43(10):1035-1039.

[15]Liu S Y,Liu Y M,Yang X H,et al. The Brassica oleracea genome reveals the asymmetrical evolution of polyploid genomes[J]. Nature Communications,2014,5:3930.

[16]Cai X,Wu J,Liang J L,et al. Improved Brassica oleracea JZS assembly reveals significant changing of LTR-RT dynamics in different morphotypes[J]. Theoretical and Applied Genetics,2020,133(7):3187-3199.

[17]強(qiáng) 毅.植物蔗糖磷酸合成酶的生物信息學(xué)分析[J]. 現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2007,7(4):557-560,570.

[18]Artimo P,Jonnalagedda M,Arnold K A,et al. ExPASy:SIB bioinformatics resource portal[J]. Nucleic Acids Research,2012,40(1):W597-W603.

[19]Chen C J,Xia R,Chen H,et al. TBtools,a toolkit for biologists integrating various HTS-data handling tools with a user-friendly interface [J]. BioRxiv,2018:289660.

[20]Jiang S Y,Chi Y H,Wang J Z,et al. Sucrose metabolism gene families and their biological functions[J]. Scientific Reports,2015,5:17583.

[21]呂佳紅,王英珍,程 瑞,等. 梨蔗糖合成相關(guān)酶SUS和SPS基因家族的鑒定與表達(dá)分析[J]. 園藝學(xué)報(bào),2018,45(3):421-435.

[22]Wang D,Zhao J,Hu B,et al. Identification and expression profile analysis of the sucrose phosphate synthase gene family in Litchi chinensis Sonn[J]. PeerJ,2018,6:e4379.

[23]魏清江,馬張正,勒 思,等. 柑橘磷酸蔗糖合酶基因CsSPS的鑒定和表達(dá)[J]. 園藝學(xué)報(bào),2020,47(2):334-344.

[24]晁毛妮,胡海燕,付麗娜,等. 陸地棉蔗糖磷酸合成酶基因家族的鑒定及表達(dá)分析[J]. 棉花學(xué)報(bào),2020,32(1):30-41.

[25]Ma P,Zhang X,Chen L,et al. Comparative analysis of sucrose phosphate synthase (SPS) gene family between Saccharum officinarum and Saccharum spontaneum[J]. BMC Plant Biology,2020,20(1):422.

[26]Xu G X,Guo C C,Shan H Y,et al. Divergence of duplicate genes in exon-intron structure[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2012,109(4):1187-1192.

[27]張 莉,薦紅舉,楊 博,等. 甘藍(lán)型油菜蔗糖磷酸合酶(SPS)基因家族成員鑒定及表達(dá)分析[J]. 作物學(xué)報(bào),2018,44(2):197-207.

[28]Huang D L,Qin C X,Gui Y Y,et al. Role of the SPS gene families in the regulation of sucrose accumulation in sugarcane[J]. Sugar Tech,2017,19(2):117-124.

[29]Chavez A T,Valdez J J,Martinez M,et al. Tissue-specific and developmental pattern of expression of the rice sps1 gene [J]. Plant Physiology,2000,124:641-653.

[30]Okamura M,Aoki N,Hirose T,et al. Tissue specificity and diurnal change in gene expression of the sucrose phosphate synthase gene family in rice[J]. Plant Science,2011,181(2):159-166.

[31]Gibon Y,Blaesing O E,Hannemann J,et al. A robot-based platform to measure multiple enzyme activities in Arabidopsis using a set of cycling assays:comparison of changes of enzyme activities and transcript levels during diurnal cycles and in prolonged darkness[J]. The Plant Cell,2004,16(12):3304-3325.

[32]李會霞,祝令成,張 釗,等. 蘋果中磷酸蔗糖合酶家族基因的表達(dá)特性及其與蔗糖含量的關(guān)系[J]. 西北植物學(xué)報(bào),2017,37(5):872-878.

猜你喜歡
低溫脅迫甘藍(lán)
甘藍(lán)家族中的“顏值擔(dān)當(dāng)”——羽衣甘藍(lán)
變色的紫甘藍(lán)
甘藍(lán)高產(chǎn)栽培技術(shù)要點(diǎn)
根據(jù)萌發(fā)率和出苗率篩選高粱種子萌發(fā)期耐低溫材料
遮陽網(wǎng)覆蓋對枇杷幼果抗寒性影響機(jī)理初探
耐熱早秋甘藍(lán)潤夏一號栽培技術(shù)
長江蔬菜(2016年10期)2016-12-01 03:05:34
紫甘藍(lán)
轉(zhuǎn)ICE1基因水稻耐冷性與膜脂過氧化和抗氧化酶活性的關(guān)系
江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué)(2015年8期)2015-09-10 14:49:14
小麥抗低溫脅迫復(fù)配植物生長調(diào)節(jié)劑研發(fā)
仁布县| 崇左市| 库尔勒市| 读书| 定安县| 石渠县| 什邡市| 天台县| 安达市| 米泉市| 商丘市| 壶关县| 兴海县| 汉川市| 柯坪县| 嘉定区| 新丰县| 玛曲县| 密云县| 德阳市| 雅江县| 克什克腾旗| 通山县| 广宁县| 张家界市| 阳信县| 咸丰县| 望城县| 灵石县| 玛沁县| 云阳县| 都昌县| 集贤县| 德江县| 丹棱县| 海林市| 湖南省| 横山县| 朔州市| 阿坝| 岚皋县|