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越橘提取物中花色苷及游離花青素的測(cè)定

2021-09-03 09:54:50程益清
食品與藥品 2021年4期
關(guān)鍵詞:越橘矢車菊花色

毛 丹,馮 睿,程益清,胡 青,季 申

(上海市食品藥品檢驗(yàn)所 國家藥品監(jiān)督管理局中藥質(zhì)量控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海 201203)

越橘 (Vaccinium myrtillus),是一類生有漿果的多年生落葉或常綠灌木或小灌木樹種[1],為杜鵑花科越橘屬植物[2-4]。該屬植物全世界約有300多種,我國約有60余種。越橘主要生長于歐洲、俄羅斯、北美和阿爾卑斯山海拔 1500~2000 m處,其中歐洲越橘(Vaccinium myrtillusL.)因富含花色苷,具有較強(qiáng)的抗氧化能力,作為保健食品原料已被消費(fèi)者廣泛認(rèn)可[5]。越橘提取物是以歐洲越橘的新鮮果實(shí)為原料經(jīng)加工而制成的提取物[6],其功效顯著、應(yīng)用范圍廣、副作用低,近年已廣泛應(yīng)用于保健食品與藥品中[7]。

越橘提取物主要含花色苷活性成分,另外還含多糖、果膠、單寧等成分[8]?;ㄉ帐怯苫ㄇ嗨嘏c糖結(jié)合而成的一類物質(zhì)的統(tǒng)稱,因其基本骨架結(jié)構(gòu)(圖1)與2-苯色原酮結(jié)構(gòu)十分相似,故花色苷類化合物也統(tǒng)稱為黃酮類化合物。花青素是2-苯基苯并吡喃陽離子的多羥基和甲基衍生物,已有研究表明,越橘提取物中花青素主要為錦葵素、飛燕草素、矢車菊素、矮牽牛素、芍藥素5種[9]。因花青素中存在共軛雙鍵,能吸收可見光而呈現(xiàn)一定的顏色。其化學(xué)結(jié)構(gòu)中黃烊鹽陽離子缺乏電子,游離的花青素極不穩(wěn)定,越橘提取物中花青素主要為糖苷形式,所結(jié)合的糖主要是葡萄糖、阿拉伯糖和半乳糖。本研究測(cè)定了越橘提取物中游離花青素及花色苷的含量,以期達(dá)到工藝及質(zhì)量控制的目的。

圖1 花色苷基本骨架結(jié)構(gòu)

1 儀器與試藥

1.1 儀器

Agilent 1100高效液相色譜儀(美國安捷倫),配有紫外-可見光檢測(cè)器,ChemStation色譜工作站;Sartorius電子天平(梅特勒-托利多)。

1.2 試藥

矢車菊素-3-O-葡萄糖苷對(duì)照品(上海詩丹德標(biāo)準(zhǔn)技術(shù)服務(wù)有限公司);矢車菊素(歐洲藥典對(duì)照品);越橘提取物樣品(批號(hào):Q20200903-1,Q20200903-2,Q20200903-3,Q20200903-4,Q20200903-5,Q20200903-6,Q20200903-7,Q20200903-8,Q20200903-9,Q20200903-10,浙江天草生物科技股份有限公司);甲醇,乙腈為色譜純,水為超純水,其他試劑均為分析純。

2 方法與結(jié)果

2.1 游離花青素的測(cè)定

2.1.1 色譜條件 安捷倫Zorbax Extend-C18色譜柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流動(dòng)相A:甲酸-水(8.5:91.5,v/v),流動(dòng)相B:乙腈-甲醇-甲酸-水(22.5:22.5:8.5:41.5,v/v/v/v),按表1進(jìn)行梯度洗脫;流速1.0 ml/min,檢測(cè)波長535 nm;柱溫30 ℃;進(jìn)樣量10 μl。理論板數(shù)按矢車菊素計(jì)應(yīng)不低于5000,見圖2。

表1 梯度洗脫程序

圖2 HPLC圖譜

2.1.2 溶液的制備

2.1.2.1 對(duì)照品溶液的制備 精密稱取矢車菊素對(duì)照品(精確至0.01 mg),加2 %鹽酸甲醇溶液制成每1 ml含0.25 mg的溶液。精密量取2 ml上述溶液于100 ml量瓶中,加10 %磷酸水溶液稀釋并定容至刻度,搖勻,即得。

2.1.2.2 供試品溶液的制備 稱取試樣125 mg(精確至0.1 mg),置100 ml量瓶中,加2 %鹽酸甲醇溶液25 ml,超聲使溶解,再用10 %磷酸水溶液稀釋并定容至刻度,搖勻,即得。

2.1.3 線性關(guān)系考察 精密吸取矢車菊素對(duì)照品溶液(4.75 μg/ml)1,2,5,10 μl,矢車菊素對(duì)照品溶液(47.52 μg/ml)2,5,10 μl,注入液相色譜儀,記錄峰面積。以進(jìn)樣量(ng)為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線?;貧w曲線方程為Y=5.2407X+4.0747,r=1.0000。結(jié)果表明,矢車菊素在4.75~475.24 ng范圍內(nèi),進(jìn)樣量與峰面積線性關(guān)系均良好。

2.1.4 穩(wěn)定性試驗(yàn) 精密吸取同一供試品溶液,4 ℃時(shí)分別于0,4,12,18,28 h進(jìn)樣分析,記錄峰面積,計(jì)算RSD為0.7 %。表明供試品溶液保持其溫度為4 ℃時(shí)在0~28 h內(nèi)基本穩(wěn)定。

2.1.5 精密度試驗(yàn) 精密吸取矢車菊素對(duì)照品溶液(4.75 μg/ml)10 μl,連續(xù)進(jìn)樣6次,記錄峰面積,計(jì)算RSD為1.2 %。表明儀器精密度良好。

2.1.6 重復(fù)性試驗(yàn) 稱取同一樣品6份,按2.1.2.2項(xiàng)方法制備供試品溶液,進(jìn)樣分析,記錄色譜圖,測(cè)定矢車菊素的含量,計(jì)算RSD為0.7 %。表明方法的重復(fù)性良好。

2.1.7 加樣回收率試驗(yàn) 取已知含量的樣品,一式9份,以3份為一組,分別加入矢車菊素對(duì)照品溶液(濃度為475.24 μg/ml)適量,再按2.1.2.2項(xiàng)方法平行操作,進(jìn)樣分析,測(cè)定各自含量并計(jì)算加樣回收率。結(jié)果見表1。

表1 加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果(n=9)

2.1.8 定量限與檢出限 將矢車菊素對(duì)照品溶液(4.75 μg/ml)逐級(jí)稀釋,按2.1.1項(xiàng)下色譜條件進(jìn)樣,記錄色譜圖,直至信噪比為10:1和3:1,對(duì)應(yīng)濃度即分別為定量限和檢出限。游離花青素的定量限(以矢車菊素計(jì))為5.0 ng;檢出限(以矢車菊素計(jì))為1.5 ng。

2.1.9 樣品測(cè)定 取樣品,一式2份,按2.1.2.2項(xiàng)下供試品溶液的制備方法制備供試品溶液,另取2.1.2.1項(xiàng)下對(duì)照品溶液,分別精密吸取上述對(duì)照品溶液與供試品溶液各10 μl,采用外標(biāo)法計(jì)算校正因子進(jìn)行測(cè)定,平均測(cè)定結(jié)果見表2

表2 樣品中矢車菊素含量測(cè)定結(jié)果

2.2 花色苷的含量測(cè)定

2.2.1 色譜條件 同2.1.1項(xiàng)下色譜條件。理論板數(shù)按矢車菊素-3-O-葡萄糖苷計(jì)應(yīng)不低于5000,見圖1。

2.2.2 溶液的制備

2.2.2.1 對(duì)照品溶液的制備 精密稱取矢車菊素-3-O-葡萄糖苷標(biāo)準(zhǔn)品(精確至0.01 mg),加2 %鹽酸甲醇溶液制成每1 ml含0.25 mg的溶液。精密量取2 ml上述溶液于10 ml量瓶中,加10 %磷酸水溶液稀釋并定容至刻度,即得。

2.2.2.2 供試品溶液的制備 同2.1.2.2項(xiàng)下方法。

2.2.3 線性關(guān)系考察 精密吸取矢車菊素-3-O-葡萄糖苷對(duì)照品溶液(51.03 μg/ml)1,2,5,10 μl,矢車菊素-3-O-葡萄糖苷對(duì)照品溶液(510.32 μg/ml)2,5,10 μl,注入液相色譜儀,記錄峰面積。以進(jìn)樣量(ng)為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線?;貧w曲線方程為Y=2.3399X+8.331,r=1.0000。結(jié)果表明,矢車菊素-3-O-葡萄糖苷在51.03~5103.24 ng范圍內(nèi),進(jìn)樣量與峰面積線性關(guān)系均良好。

2.2.4 穩(wěn)定性試驗(yàn) 精密吸取同一供試品溶液,4 ℃下分別于0,4,12,18,28 h進(jìn)樣分析,記錄峰面積,計(jì)算RSD為0.3 %。表明供試品溶液保持其溫度為4 ℃時(shí)在0~28 h內(nèi)基本穩(wěn)定。

2.2.5 精密度試驗(yàn) 精密吸取矢車菊素-3-O-葡萄糖苷對(duì)照品溶液(51.03 μg/ml)10 μl,連續(xù)進(jìn)樣6次,記錄峰面積,計(jì)算RSD為0.2 %。表明儀器精密度良好。

2.2.6 重復(fù)性試驗(yàn) 稱取同一樣品6份,按2.1.2.2項(xiàng)方法制成供試品溶液,進(jìn)樣分析,記錄色譜圖,測(cè)定矢車菊素-3-O-葡萄糖苷的含量,計(jì)算RSD為0.3 %。表明方法的重復(fù)性良好。

2.2.7 加樣回收率試驗(yàn) 取已知含量的樣品,一式9份,以3份為一組,分別加入矢車菊素-3-O-葡萄糖苷對(duì)照品溶液(濃度為1.2758 mg/ml)適量,再按2.1.2.2項(xiàng)方法平行操作,進(jìn)樣分析,測(cè)定各自含量并計(jì)算加樣回收率。結(jié)果見表3。

表3 加樣回收率試驗(yàn)結(jié)果(n=9)

2.2.8 樣品測(cè)定 取樣品,一式2份,按2.1.2.2項(xiàng)下方法制備供試品溶液,另取2.2.2.1項(xiàng)下對(duì)照品溶液,分別精密吸取上述對(duì)照品溶液與供試品溶液各10 μl,采用外標(biāo)法計(jì)算校正因子進(jìn)行測(cè)定,平均測(cè)定結(jié)果見表4。

表4 樣品中矢車菊素-3-O-葡萄糖苷含量測(cè)定結(jié)果

3 討論

3.1 背景

越橘提取物是以歐洲越橘(Va c c i n i u m myrtillusL.)的新鮮冷凍果實(shí)為原料經(jīng)提取加工而成的提取物,主要含花色苷活性成分。越橘提取物在歐美日等發(fā)達(dá)國家市場(chǎng)很大,是歐洲藥典(EP)、美國藥典(USP)及英國藥典(BP)中收錄品種。我國醫(yī)藥保健品進(jìn)出口商會(huì)參考EP和USP,并結(jié)合國內(nèi)越橘提取物的特殊情況,制訂了越橘提取物國際商務(wù)標(biāo)準(zhǔn),用于指導(dǎo)越橘提取物的出口質(zhì)量控制。但越橘并不是傳統(tǒng)的中藥材,中國藥典中未收錄,也無相關(guān)的國家食品原料標(biāo)準(zhǔn)收錄。因此,為保障國家外貿(mào)經(jīng)濟(jì)運(yùn)行的安全和我國人民群眾的食品衛(wèi)生安全,加強(qiáng)標(biāo)準(zhǔn)建設(shè),促進(jìn)與國際標(biāo)準(zhǔn)對(duì)接,建立符合我國國情的越橘提取物國家質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)具有重要的現(xiàn)實(shí)意義。

3.2 越橘提取物制備工藝

越橘提取物中主要活性成分花色苷為水溶性物質(zhì),易溶于甲醇、乙醇、水或它們所組成的混合溶液,不溶于石油醚、乙醚等非極性溶劑。提取花色苷的方法主要有熱水提取法、醇提法、超臨界流體萃取等。其純化方法也有多種,如紙層析法、毛細(xì)管電泳法及較為經(jīng)典的柱層析法等。

USP、EP和BP中越橘提取物提取采用醇提或水提,純化可采用離子交換層析法。同時(shí)對(duì)我國越橘提取物的部分生產(chǎn)企業(yè)進(jìn)行了調(diào)研,結(jié)果表明,目前國內(nèi)在越橘提取物工業(yè)化生產(chǎn)中多采用醇提或水提法,而純化方法則多采用大孔樹脂精制方式。本實(shí)驗(yàn)收集的越橘提取物樣品均采用水提取大孔樹脂精制的制備工藝。

3.3 物質(zhì)基礎(chǔ)研究與分析

采用液相色譜-高分辨質(zhì)譜對(duì)越橘原料和越橘提取物進(jìn)行了物質(zhì)基礎(chǔ)研究,結(jié)果用于指導(dǎo)標(biāo)志性成分項(xiàng)目的建立。分別采用正離子及負(fù)離子模式對(duì)越橘對(duì)照提取物溶液及兩份供試品溶液掃描,結(jié)果其均在正離子模式下色譜峰信息量較多,故最終選擇正離子模式掃描。

根據(jù)越橘對(duì)照提取物品質(zhì)證書中所標(biāo)示的各花色苷或花青素色譜峰的精確分子量、保留時(shí)間及二級(jí)碎片確證,對(duì)比分析越橘原料及越橘提取物供試品溶液,結(jié)果越橘提取物中檢測(cè)到15種花色苷成分及5種游離花青素成分共20種化合物,而越橘原料中則僅檢測(cè)到15種花色苷成分。

越橘中花青素少以游離態(tài)的形式出現(xiàn),常與葡萄糖、阿拉伯糖、半乳糖等通過糖苷鍵形成花色苷。而越橘提取物主要保健功效為抗氧化、保護(hù)視力,起作用的活性成分為花色苷,故將15種花色苷設(shè)定為其標(biāo)志性成分項(xiàng)。另由越橘提取加工制成的越橘提取物在工藝制備或貯存中會(huì)有降解現(xiàn)象,故設(shè)定游離花青素作為理化指標(biāo)項(xiàng)進(jìn)行控制。

3.4 色譜柱和柱溫的選擇

本研究對(duì)比了Zorbax Extend-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)、Zorbax SB-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)、Kromasil 100-5-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)作為目標(biāo)物的預(yù)選分離柱,同時(shí)比較了3個(gè)不同柱溫(30,25,20 ℃)。結(jié)果表明,采用色譜柱Zorbax Extend-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)和柱溫30 ℃、色譜柱Zorbax SB-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)和柱溫25 ℃、色譜柱Kromasil 100-5-C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)和柱溫30 ℃,花色苷及游離花青素各目標(biāo)峰分離效果差別不大,均能滿足檢測(cè)要求。實(shí)驗(yàn)室可根據(jù)具體情況擇優(yōu)選取色譜柱及柱溫。

3.5 流動(dòng)相的選擇及洗脫方式的確定

本研究參考?xì)W洲藥典(EP 10.0)中越橘提取物的含量測(cè)定項(xiàng)下流動(dòng)相的選擇及洗脫方式,對(duì)于洗脫方式也嘗試了調(diào)整水相及有機(jī)相的不同比例,發(fā)現(xiàn)調(diào)整比例后花色苷及游離花青素各目標(biāo)峰的分離效果均不及原洗脫方式,故最終確定流動(dòng)相為A:甲酸+水(8.5:91.5,v/v),B:乙腈+甲醇+甲酸+水(22.5:22.5:8.5:41.5,v/v/v/v),洗脫方式同2.1.1項(xiàng)。

3.6 進(jìn)樣溶液溫度的選擇

本研究考察了供試品溶液的穩(wěn)定性,發(fā)現(xiàn)常溫放置1 h的供試品溶液就會(huì)出現(xiàn)花色苷成分含量降低,游離花青素含量增加的現(xiàn)象,故選擇冷藏(4 ℃)供試品溶液,24 h時(shí)內(nèi)各花色苷峰峰面積及游離花青素峰峰面積均基本穩(wěn)定。

本研究建立了HPLC法同時(shí)測(cè)定越橘提取物中花色苷類成分及游離花青素的含量,該方法簡便可行,精密度良好,準(zhǔn)確度高,可有效控制越橘提取物的質(zhì)量。

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