鄭 義, 鄭靜薇, 包君麗, 林列坤, 杜 姍, 曾凡杞
1.中國(guó)科學(xué)院大學(xué)深圳醫(yī)院醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)中心,廣東 深圳 518106; 2.吉林大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院
丙型肝炎病毒(hepatitis C virus,HCV)是嚴(yán)重危害人類健康的病原體,全球HCV的感染率約3%,其中80%為慢性感染,常常導(dǎo)致脂肪肝、慢性肝炎、肝纖維化、肝硬化和肝癌[1]。盡管特異性抗HCV藥物已上市[2],但這些藥物存在嚴(yán)重的毒副作用和治療耐受的風(fēng)險(xiǎn)[3]。因此,對(duì)病毒和宿主之間相互作用的理解是發(fā)展更有效治療藥物或方法的前提。非結(jié)構(gòu)蛋白4B(non-structural protein 4B,NS4B)是HCV編碼的一個(gè)非結(jié)構(gòu)蛋白,高度疏水,具有多次跨膜的復(fù)雜拓?fù)浣Y(jié)構(gòu),能單獨(dú)誘導(dǎo)細(xì)胞產(chǎn)生“膜網(wǎng)”,為HCV復(fù)制的支架,成為HCV復(fù)制酶復(fù)合物的重要組織者。在病毒復(fù)制體(vRFs)中,NS4B除了錨定結(jié)合膜外,還與病毒編碼的其他蛋白和宿主細(xì)胞蛋白相互作用,以及誘導(dǎo)細(xì)胞脂質(zhì)的生物合成[4]。NS4B這些功能對(duì)HCV生命周期中的復(fù)制、組裝、致病性等產(chǎn)生重要影響,然而對(duì)其機(jī)制雖有涉及但遠(yuǎn)未知曉。我們前期分析了HCV不同基因型和亞型的NS4B序列,發(fā)現(xiàn)其C-末端(C terminal domain,CTD)存在Ⅰ類PBM(PDZ-binding motif)基序[5],并研究證明了該基序介導(dǎo)與細(xì)胞內(nèi)極性蛋白Scrib的相互作用,通過(guò)泛素-蛋白酶體途徑特異介導(dǎo)Scrib的降解,導(dǎo)致細(xì)胞轉(zhuǎn)化。此外,我們發(fā)現(xiàn)NS4B通過(guò)Scrib誘導(dǎo)細(xì)胞內(nèi)Merlin蛋白表達(dá)減少,引起Hippo信號(hào)途徑中Yes相關(guān)蛋白(Yes-associated protein,Yap)去磷酸化,去磷酸化的Yap轉(zhuǎn)位到核內(nèi),激活A(yù)KT,提高其致瘤性[5]。
表觀遺傳決定基因的表達(dá)水平,在個(gè)體的發(fā)育分化、細(xì)胞的命運(yùn)決定、對(duì)環(huán)境的應(yīng)激反應(yīng)等過(guò)程中起到?jīng)Q定性作用。研究[6]發(fā)現(xiàn),癌細(xì)胞常劫持各種已有的表觀遺傳機(jī)制,讓細(xì)胞產(chǎn)生更有利于癌變的各種表觀遺傳變化,從而促進(jìn)癌癥的發(fā)生、進(jìn)展、腫瘤轉(zhuǎn)移和抗藥性的產(chǎn)生。表觀遺傳包括染色質(zhì)重塑、DNA的甲基化、組蛋白修飾等。組蛋白修飾是表觀遺傳調(diào)控的核心手段,目前已經(jīng)發(fā)現(xiàn)至少8種不同的修飾類型,其中最為常見(jiàn)的4種修飾,即乙酰化、甲基化、磷酸化和泛素化均是可逆的。組蛋白修飾參與對(duì)染色質(zhì)功能的調(diào)控。在目前已知的甲基化位點(diǎn)中,6個(gè)位點(diǎn)的研究最為深入,它們分別是H3上的K4、K9、K27、K36和K79及H4K20。除了H3K79以外,其他位點(diǎn)均分布在組蛋白N端的尾巴上。相對(duì)于組蛋白乙?;揎棧谆揎椧獜?fù)雜得多。首先,甲基化修飾具有多種不同的功能,包括激活轉(zhuǎn)錄(如H3K4me3)、抑制轉(zhuǎn)錄(如H3K9me3)、DNA損傷應(yīng)答(如H4K20me3)、轉(zhuǎn)錄延伸(如H3K36me3)等。第二,甲基化修飾存在多個(gè)層次,在一個(gè)賴氨酸位點(diǎn)上可以發(fā)生單甲基化、二甲基化和三甲基化的修飾。不同層次的甲基化修飾具有不同的功能,例如H3K4me3分布在基因的轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn),而H3K4me則分布在基因的增強(qiáng)子上。組蛋白甲基化狀態(tài)通過(guò)賴氨酸甲基轉(zhuǎn)移酶—寫(xiě)作者(writers),和去甲基化酶—搽拭者(erasers)的協(xié)同作用動(dòng)態(tài)控制[6]。在本研究中,我們研究組蛋白修飾對(duì)HCV-NS4B致瘤性的影響,為HCV的治療提供靶標(biāo)。
1.1 質(zhì)粒構(gòu)建質(zhì)粒表達(dá)載體pCDNA3.1(-)NS4B、pEGFPC1-NS4B的構(gòu)建按常規(guī)方法進(jìn)行。質(zhì)粒pCDNA3.1(-)NS4B和pEGFPC1-NS4B由本實(shí)驗(yàn)室保存。用免疫熒光和Western blotting分析進(jìn)一步驗(yàn)證質(zhì)粒載體的構(gòu)建。KDM5C的siRNA序列參考文獻(xiàn)[7],其序列為:正鏈:5′-GTGACAGTAAACGGCACCT-3′,負(fù)鏈:5′-AGGTGCCGTTTACTGTCA-3′,siRNA-KDM5C和對(duì)照siRNA委托GenePharma公司合成(上海)。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng)和轉(zhuǎn)染HepG2細(xì)胞培養(yǎng)在25 mmol/L NaHCO3,10 μl/ml鏈霉素,100 μg/ml青霉素G和質(zhì)量濃度為100 g/L(V/V)胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基,于37 ℃,體積分?jǐn)?shù)為5%的 CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。HepG2以5×104個(gè)/ml接種到含有6孔細(xì)胞培養(yǎng)板,用脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染(Invitrogen)pCDNA3.1(-)、pCDNA3.1(-)NS4B或pEGFPC1-NS4B。
1.3 HCV-NS4B的檢測(cè)為了驗(yàn)證構(gòu)建的pCDNA3.1(-)NS4B和pEGFPC1-NS4B質(zhì)粒,用熒光顯微鏡和Western blotting分析證實(shí)。HepG2細(xì)胞以5×104個(gè)/ml接種到含有6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中培養(yǎng),細(xì)胞匯合達(dá)到90%后,用脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染(Invitrogen)轉(zhuǎn)染質(zhì)粒(0.1 μg/ml)。轉(zhuǎn)染后48 h在熒光顯微鏡觀察NS4B的表達(dá)。此外,轉(zhuǎn)染pCDNA3.1(-)NS4B質(zhì)粒的細(xì)胞用細(xì)胞裂解液(購(gòu)自Qiangen生物公司)裂解,裂解物冰浴30 min,12 000g,4 ℃離心15 min。SDS-PAGE分離蛋白,轉(zhuǎn)Immobilon膜。用抗NS4B單抗(購(gòu)自Santa Cruz公司)檢測(cè)HCV-NS4B的表達(dá)。
1.4 檢測(cè)NS4B對(duì)組蛋白修飾的影響為了研究NS4B對(duì)組蛋白甲基化和乙?;挠绊懀覀冇肏epG2細(xì)胞以5×104個(gè)/ml接種到含有6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中培養(yǎng),當(dāng)細(xì)胞匯合達(dá)到90%后,用脂質(zhì)體2000轉(zhuǎn)染(Invitrogen)轉(zhuǎn)染質(zhì)粒pCDNA3.1(-)NS4B或pCDNA3.1(-)(0.2 μg/ml)。72 h收獲細(xì)胞。用組蛋白提取試劑盒(EpiQiuikukn 總組蛋白提取試劑盒)提取組蛋白,Western blotting操作同上,一抗分別為抗H3K4me3、H3K36me3、H3K79me3、H3K14ac、H3K18ac、H4K8ac、抗丁酸抗體、抗?;贵w、抗H3抗體。這些抗體均購(gòu)自Abcam公司,二抗為兔抗小鼠的標(biāo)記HRP的IgG抗體(Santa Cruz公司)。
1.5 檢測(cè)賴氨酸去甲基化酶5(KDM5)的表達(dá)KDM5家族蛋白,包括KDM5A-D(也稱為JARID1A-D),是依賴Fe(Ⅱ)和α-酮戊二酸的雙氧酶,催化H3K4me3上甲基的除去。因KDM5D是Y染色體編碼的男性特異性組蛋白去甲基化酶5D,在本研究中,用Western blotting檢測(cè)KDM5A-C的表達(dá),方法同上,一抗KDM5A-C購(gòu)自Santa Cruz公司,二抗為兔抗小鼠的標(biāo)記HRP的IgG抗體。
1.6 細(xì)胞增殖實(shí)驗(yàn)為了評(píng)價(jià)HCV-NS4B和KDM5C對(duì)細(xì)胞增殖的影響,轉(zhuǎn)染前1 d將HepG2細(xì)胞按1×104個(gè)/孔接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板。將細(xì)胞分組,每組設(shè)48 h時(shí)間點(diǎn),每組的每個(gè)時(shí)間點(diǎn)設(shè)置3個(gè)復(fù)孔,按照表1所示組合轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染4 h后,將培養(yǎng)基換為含有質(zhì)量濃度為20 g/L胎牛血清的DMEM,于37 ℃,體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)染48 h向不同處理的細(xì)胞中加入20 μl 5 g/L MTT,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后吸棄培養(yǎng)基(注意不要吸走藍(lán)色結(jié)晶),每孔細(xì)胞加入200 μl DMSO,避光振蕩10 min后測(cè)定OD492 nm值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,計(jì)算細(xì)胞存活率,細(xì)胞存活率=實(shí)驗(yàn)組OD值/空白對(duì)照組OD值×100%,設(shè)定對(duì)照組存活率為100%。
表1 MTT實(shí)驗(yàn)中質(zhì)粒處理表
1.7 克隆形成實(shí)驗(yàn)為了研究KDM5C對(duì)HCV-NS4B致瘤性的影響,分成4組,即A組:pCDNA3.1(-)+對(duì)照siRNA組,B組:pNS4B+對(duì)照siRNA組,C組:pCDNA3.1(-)+siRNA-KDM5C組,D組:pNS4B+siRNA-KDM5C組。轉(zhuǎn)染方法同前,轉(zhuǎn)染后2 d,胰酶消化細(xì)胞后用DMEM培養(yǎng)基重懸,接著用0.3%低熔點(diǎn)瓊脂糖覆蓋在含DMEM培養(yǎng)基的0.6%瓊脂板上(20 mm),每個(gè)板含1 000個(gè)細(xì)胞。2周后,細(xì)胞用冰冷的甲醇和乙酸(3∶1,V/V)混合物固定15 min。然后用0.5%結(jié)晶紫染色。觀察克隆形成情況并拍照。計(jì)算克隆形成百分比,克隆形成百分比=實(shí)驗(yàn)組克隆數(shù)/對(duì)照組克隆數(shù)×100%,設(shè)定對(duì)照組為100%。
1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,多個(gè)樣本均數(shù)間的比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA)統(tǒng)計(jì),兩獨(dú)立樣本均數(shù)間比較采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 HCV-NS4B的鑒定對(duì)構(gòu)建的pCDNA3.1(-)NS4B通過(guò)限制性內(nèi)切酶雙酶切電泳鑒定,目標(biāo)帶的大小與預(yù)期的一致,DNA測(cè)序分析也證明構(gòu)建的質(zhì)粒是正確的,通過(guò)Western blotting分析均表明構(gòu)建的質(zhì)粒能在HepG2細(xì)胞中表達(dá)。此外,重組的pEGFPC1-NS4B質(zhì)粒在熒光顯微鏡下觀察到有表達(dá)。這些實(shí)驗(yàn)證實(shí)構(gòu)建的質(zhì)粒是正確的,并能在HepG2細(xì)胞中表達(dá)(見(jiàn)圖1)。
注:A:pEGFPC1-NS4B重組質(zhì)粒雙酶切鑒定結(jié)果(1:DNA marker,2:重組質(zhì)粒雙酶切,3:重組質(zhì)粒單酶切,4:重組質(zhì)粒未酶切);B:質(zhì)粒測(cè)序部分結(jié)果(上排為構(gòu)建完成質(zhì)粒測(cè)序結(jié)果,下排為HCV NS4B 3′端部分序列);C:空白質(zhì)粒和重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HepG2細(xì)胞的細(xì)胞免疫熒光結(jié)果(放大100倍);D:質(zhì)粒轉(zhuǎn)染后Western blotting分析NS4B的表達(dá)。
2.2 HCV-NS4B對(duì)組蛋白修飾的影響我們用pCDNA3.1(-)和pCDNA3.1(-)NS4B轉(zhuǎn)染HepG2細(xì)胞,用Western blotting分析幾種主要的組蛋白修飾。結(jié)果發(fā)現(xiàn):HCV-NS4B能誘導(dǎo)H3K4me3減少,H3K36me3增加,對(duì)H3K79me3影響不大,誘導(dǎo)H3K18ac和H4K8ac輕微增加,但對(duì)H3K14ac無(wú)影響。NS4B能誘導(dǎo)組蛋白丁酸化(butyration)、?;?propionylation)增加,誘導(dǎo)H4K12?;3K14巴豆?;黾?,但對(duì)H3K14?;挠绊懖幻黠@(見(jiàn)圖2)。
圖2 HCV-NS4B對(duì)組蛋白修飾的影響
2.3 HCV-NS4B對(duì)賴氨酸去甲基化酶5(KDM5)的影響因?yàn)镠CV-NS4B能誘導(dǎo)H3K4me3減少,H3K36me3增加,接著,我們研究NS4B對(duì)KDM5表達(dá)的影響。結(jié)果表明,NS4B能誘導(dǎo)KDM5C表達(dá)增加,但對(duì)KDM5A和KDM5B影響不明顯(見(jiàn)圖3)。
圖3 HCV-NS4B對(duì)KDM5表達(dá)的影響
2.4 HCV-NS4B和KDM5C對(duì)HCV-HepG2細(xì)胞增殖的影響不受控制的過(guò)度生長(zhǎng)和增殖是細(xì)胞癌變的標(biāo)志,我們?cè)贖epG2細(xì)胞中評(píng)價(jià)了KDM5C和HCV-NS4B對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)和增殖的能力以及它們之間的相互關(guān)系。HCV-NS4B的過(guò)表達(dá)顯著提升細(xì)胞的增殖,敲減KDM5C的則明顯抑制HepG2的增殖,且對(duì)HCV-NS4B過(guò)表達(dá)引起的細(xì)胞增殖起抑制作用(見(jiàn)圖4)。
注:1、2、3、4分別表示pCDNA3.1(-)(50 ng)+對(duì)照siRNA(0.5 mmol/L)組;pCDNA3.1(-)(50 ng)+KDM5C siRNA(0.5 mmol/L)組;pNS4B(50 ng)+對(duì)照siRNA(0.5 mmol/L)組和pNS4B(50 ng)+KDM5C siRNA(0.5 mmol/L)組。*P<0.05,**P<0.01。
2.5 KDM5C抑制劑對(duì)HCV-NS4B誘導(dǎo)的克隆形成的影響為了研究HCV-NS4B誘導(dǎo)KDM5C增加對(duì)NS4B致瘤性的影響,克隆形成實(shí)驗(yàn)分成4組,即:A組:pCDNA3.1(-)+對(duì)照siRNA組,B組:pNS4B+對(duì)照siRNA組,C組:pCDNA3.1(-)+siRNA-KDM5C組,D組:pNS4B+siRNA-KDM5C組??寺⌒纬蓪?shí)驗(yàn)表明,克隆形成百分比從大到小依次為pNS4B+對(duì)照siRNA組、pCDNA3.1(-)+對(duì)照siRNA組、pNS4B+siRNA-KDM5C組、pCDNA3.1(-)+siRNA-KDM5C組;與NS4B+對(duì)照siRNA組比較,pCDNA3.1(-)+對(duì)照siRNA組和pNS4B+siRNA-KDM5C組的克隆形成數(shù)量大大減少(P<0.01),但比pCDNA3.1(-)+siRNA-KDM5C組克隆形成數(shù)多(P>0.05)(見(jiàn)圖5)。這些結(jié)果表明,抑制KDM5C可以減少HCV-NS4B的可能致瘤性,但未完全根除,表明HCV-NS4B誘導(dǎo)的致瘤性還通過(guò)其他途徑。
注:A、B、C、D分別表示pCDNA3.1(-)+對(duì)照siRNA組;pNS4B+對(duì)照siRNA組;pCDNA3.1(-)+siRNA-KDM5C組和pNS4B+siRNA-KDM5C組。克隆形成百分比=實(shí)驗(yàn)組克隆數(shù)/對(duì)照組克隆數(shù)×100%。*P<0.05,**P<0.01。
HCV感染導(dǎo)致肝癌的致病機(jī)制有諸多探討,如HCV-core能與Snail和組蛋白去乙酰酶(HDACs)相互作用促進(jìn)肝癌轉(zhuǎn)移[8],HCV-core+1/ARF蛋白調(diào)節(jié)Cyclin D1/pRb途徑,促進(jìn)致癌[9]。HCV-core蛋白促進(jìn)Nm23-H1蛋白Sumoylation化后被降解以及轉(zhuǎn)錄失調(diào),促進(jìn)細(xì)胞遷移和侵襲[10]。NS4B也可通過(guò)不同機(jī)制致瘤。HCV-NS4B能不依賴共轉(zhuǎn)染的Ha-ras基因轉(zhuǎn)化NIH-3T3細(xì)胞,導(dǎo)致體內(nèi)腫瘤形成[11]。我們之前的研究表明,HCV-NS4B的C末端能與Scrib相互作用降解Scrib,通過(guò)Hippo-AKT途徑促進(jìn)腫瘤形成,并且HCV-NS4B誘導(dǎo)Snail表達(dá)升高促進(jìn)肝癌細(xì)胞轉(zhuǎn)移[12]。這些研究表明,HCV編碼的蛋白能引起細(xì)胞致瘤和促進(jìn)轉(zhuǎn)移[5,12]。但NS4B能否通過(guò)表觀遺傳的方式對(duì)其致瘤性產(chǎn)生影響尚無(wú)研究。
在本研究中,我們首先觀察到NS4B能夠誘導(dǎo)H3K4me3減少,H3K36me3增加,對(duì)H3K79me3影響不大,對(duì)H3K18ac和H4K8ac輕微增加,但對(duì)H3K14ac無(wú)影響。NS4B能誘導(dǎo)組蛋白丁酸化、酰化增加,誘導(dǎo)H4K12酰化、H3K14巴豆?;黾樱珜?duì)H3K14?;挠绊懖幻黠@。顯然,HCV-NS4B是能夠引起細(xì)胞表觀遺傳改變的,特別是H3K4me3的改變。組蛋白賴氨酸甲基化狀態(tài)與基因的表觀和轉(zhuǎn)錄狀態(tài)相聯(lián)系。轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)通過(guò)H3K4me3標(biāo)記,這有助于RNA聚合酶Ⅱ(polⅡ)轉(zhuǎn)錄復(fù)合物的進(jìn)入和裝備。相比較而言,H3K4me1修飾聯(lián)合?;腍3K427(H3K27ac)是預(yù)示活躍的增強(qiáng)子,能遠(yuǎn)距離調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄活性。已鑒定了能結(jié)合H3K4me3的各種不同蛋白復(fù)合物,但特異的H3K3me1結(jié)合物似乎很少。H3K4甲基化能通過(guò)組蛋白去甲基化酶KDM5/JARID1(K4me3/2到K4me1)、Lsd/KDM1(K4me2/1到K4me0)家族成員逆轉(zhuǎn)。全基因組研究揭示KDM5A(也稱為JARID1A/Rbp2)和KDM5B(也稱為JARID1B/Plu-1)位于基因啟動(dòng)子區(qū)。而Lsd1/KDM1A結(jié)合啟動(dòng)子和遠(yuǎn)端元件,Lsd2/KDM1B和H3K36甲基化共定位于轉(zhuǎn)錄基因內(nèi)部[13]。
由于HCV-NS4B能引起H3K4me3減少,KDM5主要功能是催化H3K4me3/2除去甲基,我們接著繼續(xù)研究NS4B對(duì)KDM5表達(dá)的影響。我們發(fā)現(xiàn)HCV-NS4B能夠誘導(dǎo)KDM5C表達(dá)增加,但KDM5A和KDM5B的表達(dá)影響不明顯。KDM5家族成員有不同的生物學(xué)功能。研究[13-14]顯示,KDM5A和KDM5B直接與癌癥相關(guān)。在小鼠模型中,失去KDM5A抑制腫瘤產(chǎn)生。胃癌高表達(dá)KDM5A,乳腺癌和前列腺癌高表達(dá)KDM5B。KDM5A和KDM5B涉及維持癌癥細(xì)胞群的慢生長(zhǎng)和藥物耐受。KDM5C(SMCX或JARIC1C)基因與幾種人類疾病相關(guān),如腎癌和X-連鎖的精神遲鈍。最近發(fā)現(xiàn),STING的表達(dá)被H3K4 KDM5B和KDM5C表觀遺傳抑制,被H3K4甲基轉(zhuǎn)移酶激活,證明一個(gè)新的免疫反應(yīng)的表觀調(diào)控途徑,表明KDM5是抗病原體和抗癌免疫治療的潛在靶標(biāo)[14]。
為了研究KDM5C在NS4B致瘤性方面的作用,我們首先用MTT證明了敲減KDM5C減弱HCV-NS4B對(duì)HepG2的細(xì)胞增殖能力,然后用克隆形成實(shí)驗(yàn)證明了敲減的KDM5C減少對(duì)NS4B轉(zhuǎn)染HepG2細(xì)胞的克隆形成數(shù),但少于無(wú)HCV-NS4B誘導(dǎo)的敲減KDM5C的HepG2的克隆形成數(shù)。這表明KDM5C影響NS4B的致瘤性,但不能排除有其他途徑參與[5,12]。其他致瘤病毒通過(guò)編碼蛋白影響KDM的表達(dá)或直接相互作用,調(diào)節(jié)宿主染色質(zhì)的重塑或組蛋白修飾,從而影響宿主抗病毒反應(yīng)或致病性。EBV原癌基因誘導(dǎo)H3K27me3去甲基化酶KDM6B/JMJD3表達(dá),有助于EBV-相關(guān)的惡性腫瘤的致病性[15]。在EBV感染的B細(xì)胞基因抑制期間EBNA3C直接招募RBPJ到染色質(zhì),并且EBNA3C與KDM2B相互作用抑制COBLL1和ADAM28-ADAMDEC1的表達(dá)[16]。HPV E7上調(diào)JARID1B的表達(dá),減少TLR9啟動(dòng)子處的H3K4me3,抑制免疫反應(yīng)。高危型HPVE6通過(guò)降解KDM5C激活EGFR和c-MET原癌基因的超級(jí)增強(qiáng)子[17]。
我們前期證明過(guò)HCV-NS4B具有抑制抗病毒反應(yīng)的作用[18],HCV-NS4B能抑制STING累積[19],使HCV感染細(xì)胞逃逸固有免疫反應(yīng)。我們初步推測(cè):HCV-NS4B誘導(dǎo)KDM5C表達(dá)增加,可能通過(guò)減少STING等基因啟動(dòng)子處的H3K4me3,減少干擾素-γ的表達(dá)。但本研究存在一些缺陷,HCV-NS4B通過(guò)KDM5C的表達(dá)增加,減少H3K4me3,是否影響某些抑癌基因的啟動(dòng)子或超級(jí)增強(qiáng)子,這需要深入研究。因此,KDM5C可能是抗HCV治療的一個(gè)潛在靶標(biāo)。