劉利平，孫 宇，帥紀(jì)晨，馬云馳，張志才，毛 超，孫 玲**

（1.江蘇大學(xué)食品與生物工程學(xué)院，江蘇鎮(zhèn)江212013；2.江蘇大學(xué)食品物理加工研究院，江蘇鎮(zhèn)江212013）

榆黃蘑（Pleurotus citrinopileatus Sing.）隸屬于擔(dān)子菌綱 （Basidiomycetes） 傘菌目 （Agaricales） 側(cè)耳科 （Pleurotaceae） 側(cè)耳屬 （Pleurotus）[1]。作為一種珍稀的食用菌，榆黃蘑因其較高的營養(yǎng)價值和特有的風(fēng)味而受到廣大消費(fèi)者的青睞[2]。榆黃蘑含有豐富的活性物質(zhì)，如多糖、黃酮、蛋白質(zhì)、維生素等，具有抗腫瘤、抗氧化、免疫調(diào)節(jié)、抗衰老等藥用功能[3－6]。榆黃蘑的生產(chǎn)技術(shù)主要包括子實(shí)體栽培技術(shù)和可生產(chǎn)菌絲體的液體發(fā)酵技術(shù)。與子實(shí)體栽培技術(shù)相比，液體發(fā)酵培養(yǎng)技術(shù)具有培育周期短、生產(chǎn)量高、菌齡統(tǒng)一、雜菌少、便于擴(kuò)大培養(yǎng)等優(yōu)點(diǎn)[7－8]。李云等[9]研究表明，通過液體發(fā)酵獲得的菌絲體中含有多種有效營養(yǎng)成分，與長期培養(yǎng)后的子實(shí)體中所含有效成分含量相似。越來越多的研究表明采用液體發(fā)酵培養(yǎng)菌絲體代替子實(shí)體栽培可獲得豐富的榆黃蘑代謝產(chǎn)物[10]。在液體發(fā)酵過程中，培養(yǎng)基初始碳源、氮源種類的選擇均會對食用菌的生長以及代謝物的產(chǎn)量造成一定影響[11－12]。楊宇童等[11]研究了榆黃蘑菌種液體發(fā)酵培養(yǎng)基中不同碳源、氮源對其菌絲干重的影響，王偉等[12]以菌絲體生物量為指標(biāo)研究了榆黃蘑液體發(fā)酵的最適培養(yǎng)基。但尚未見有關(guān)榆黃蘑液體發(fā)酵培養(yǎng)基對其代謝物影響的相關(guān)研究。

通過分析榆黃蘑菌絲體中的代謝物種類，為榆黃蘑的開發(fā)與應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。以榆黃蘑液體發(fā)酵菌絲體生物量與代謝物的產(chǎn)量為指標(biāo)，探究不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體生長與代謝的影響，優(yōu)化液體發(fā)酵培養(yǎng)基的碳源、氮源。

1 材料與方法

1.1 主要材料

榆黃蘑試驗(yàn)菌種，由江蘇大學(xué)食品與生物工程學(xué)院張志才老師贈送。

1.2 主要試劑

4’,6－二脒基－2－苯基吲哚 （DAPI） 染色液，美國Amresco公司；核糖醇，美國Sigma公司；飽和脂肪酸甲酯，德國Dr.Ehrenstorfer公司；P0010S BCA蛋白濃度檢測試劑盒，碧云天生物技術(shù)有限公司；其余試劑均為分析純，購自上海國藥集團(tuán)。

1.3 主要儀器與設(shè)備

Ti－S型倒置熒光顯微鏡，日本Nikon公司；NLCD500光學(xué)顯微鏡，江南永新公司；7890B氣相色譜，美國Agilent公司；PEGASUS HT質(zhì)譜儀，美國LECO公司；DB－5MS色譜柱，美國Agilent公司。

1.4 試驗(yàn)條件

1.4.1 培養(yǎng)基的配制與菌種培養(yǎng)

PDA固體培養(yǎng)基：馬鈴薯200 g·L－1、葡萄糖20 g·L－1、瓊脂粉 20 g·L－1、VB10.01 g·L－1；種子培養(yǎng)基：馬鈴薯 200 g·L－1、葡萄糖 20 g·L－1、VB10.01 g·L－1；發(fā)酵培養(yǎng)基碳源篩選：酵母粉 5 g·L－1、KH2PO41.50 g·L－1、MgSO40.75 g·L－1、VB10.01 g·L－1，不同碳源：玉米粉、可溶性淀粉、蔗糖、葡萄糖、葡萄糖+蔗糖，添加量30 g·L－1；發(fā)酵培養(yǎng)基氮源篩選：葡萄糖30 g·L－1、KH2PO41.50 g·L－1、MgSO40.75 g·L－1、VB10.01 g·L－1，不同氮源：黃豆粉、蛋白胨、酵母粉、尿素、硫酸銨，添加量 5 g·L－1[13]。

菌種活化：將榆黃蘑菌種接種于PDA固體培養(yǎng)基上，28℃恒溫培養(yǎng)6 d～8 d。

種子液培養(yǎng)：用接種鏟從活化后的平板上切取0.5 cm×0.5 cm的菌體，接入100 mL種子培養(yǎng)基中，于 28℃、150 r·min－1條件下恒溫培養(yǎng) 6 d。

液態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)：以接種量10%，將培養(yǎng)完成的種子液接入100 mL液體發(fā)酵培養(yǎng)基中，于28℃、150 r·min－1條件下恒溫培養(yǎng) 6 d。

插片培養(yǎng)：于PDA固體培養(yǎng)基接種后，方向45°傾斜插入滅菌后的玻片，28℃培養(yǎng)3 d～4 d。

1.4.2 顯微鏡觀察菌絲體微觀形態(tài)

1）光學(xué)顯微鏡觀察

利用光學(xué)顯微鏡觀察榆黃蘑菌絲體形態(tài)，將插片培養(yǎng)獲得的新鮮菌絲體用無菌水固定后，于100倍與400倍物鏡下采集圖像并保存。

2）倒置熒光顯微鏡觀察

將插片培養(yǎng)獲得的榆黃蘑菌絲體與DAPI染料結(jié)合，染色方法為：將1 mg·mL－1的DAPI染色液配置為1 μg·mL－1的工作液，在附著菌絲體的載片上滴加適量DAPI工作液（完全覆蓋住菌絲體），避光室溫孵育10 min后，流水沖去染液，用濾紙吸取載片上的多余水分，采用倒置熒光顯微鏡對菌絲體進(jìn)行微觀形態(tài)觀察。

1.4.3 氣相色譜－飛行時間質(zhì)譜 （GC－TOF－MS） 非靶標(biāo)代謝組學(xué)檢測

1） 代謝物提取

取濕重為60 mg的最優(yōu)培養(yǎng)基獲得的榆黃蘑菌絲體樣品于2 mL離心管中，先后加入0.48 mL提取液 （甲醇∶水為3∶1，v/v） 和20 μL核糖醇，混合均勻后加入瓷珠，于45 Hz研磨儀處理4 min，超聲冰水浴處理5 min。破碎后的樣品在4℃，12 000 r·min－1條件下離心15 min，取0.35 mL上清液于2 mL進(jìn)樣瓶（甲烷硅基化），并在真空濃縮器中干燥提取物。在干燥后的代謝物中加入40 μL甲氧胺鹽試劑（甲氧胺鹽酸鹽，溶于吡啶20 mg·mL－1），輕輕混勻后，于 80℃孵育 30 min；然后迅速加入60 μL BSTFA（含有1%TCMS），將混合物于 70℃孵育1.5 h后，上機(jī)檢測[14]。

2） 上機(jī)檢測

使用Agilent 7890氣相色譜－飛行時間質(zhì)譜聯(lián)用儀，并配有Agilent DB－5MS毛細(xì)管柱（30 m×250 μm ×0.25 μm） 進(jìn)行 GC－TOF－MS 分析檢測[14]，具體條件見表1。

表1 儀器參數(shù)Tab.1 Instrument parameters

3） 質(zhì)譜數(shù)據(jù)處理

使用ChromaTOF軟件 （V 4.3x，LECO） 對質(zhì)譜數(shù)據(jù)進(jìn)行峰提取、基線矯正、解卷積、峰積分、峰對齊等分析。通過LECO－Fiehn Rtx5數(shù)據(jù)庫對物質(zhì)進(jìn)行定性分析，包括質(zhì)譜匹配及保留時間指數(shù)匹配。

1.4.4 菌絲體生物量的測定

將榆黃蘑液體發(fā)酵培養(yǎng)液于4℃、4 000 r·min－1條件下離心10 min，棄上清，并用蒸餾水沖洗2次～3次去除菌絲體表面黏附的培養(yǎng)基。經(jīng)真空冷凍干燥48 h后，稱量獲得的菌絲體干重，即為榆黃蘑菌絲體生物量[15]。

1.4.5 不同代謝物含量與產(chǎn)量測定

1） 多糖含量與產(chǎn)量的測定

稱取0.10 g榆黃蘑菌絲體凍干粉末于離心管中，加 3 mL 蒸餾水，95°C 水浴 2 h，10 000 r·min－1離心15 min取上清。將沉淀重復(fù)上述操作，合并2次提取液。于上清液中加入3倍體積95%乙醇，4℃靜置過夜后離心棄上清。用乙醇清洗沉淀3次，棄上清，50℃水浴揮干殘留乙醇。在沉淀中加入10 mL蒸餾水復(fù)溶，得到菌絲粗多糖水溶液[16]。取0.2 mL粗多糖水溶液，測定樣品中多糖含量。參考張赫男[16]的方法，以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品，采用苯酚－硫酸比色法，用紫外分光光度計測定葡萄糖的含量?；貧w方程的線性范圍為 0～0.15 mg，R2=0.999 4，回歸方程為：

多糖產(chǎn)量（Y1，mg·L－1）的計算公式為：

式中：X1為多糖含量（mg·g－1）；C1為菌絲體生物量（g·L－1）。

2）蛋白含量與產(chǎn)量的測定

準(zhǔn)確稱取0.10 g榆黃蘑菌絲體凍干粉末于試管中，加入 2.5 mL 的 1 mol·L－1NaOH 溶液，90 W 超聲冰水浴30 min破碎細(xì)胞，10 000 r·min－1離心15 min取上清，蒸餾水定容至50 mL。測定樣品中的蛋白質(zhì)含量（mg·g－1）。使用BCA蛋白濃度測定試劑盒，以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)品，采用酶標(biāo)儀測定蛋白質(zhì)的含量。回歸方程的線性范圍為 0～0.5 mg·mL－1，R2=0.998 4，回歸方程為：

蛋白質(zhì)產(chǎn)量（Y2，mg·L－1）的計算公式為：

式中：X2為蛋白質(zhì)含量（mg·g－1）；C2為菌絲體生物量（g·L－1）。

3）黃酮含量的測定

稱取0.10 g菌絲體凍干粉末于離心管中，按質(zhì)量體積比為1∶40的比例加入70%乙醇。將樣品于70℃下水浴浸提 2 h，10 000 r·min－1離心 15 min；沉淀再用75℃水浴提取2 h，離心取上清后合并2次提取液，并用70%的乙醇補(bǔ)至10 mL[17]。取0.3 mL提取液，測定樣品中黃酮含量。參考Jia等[18]的方法，以蘆丁作為標(biāo)準(zhǔn)品，采用硝酸鋁－亞硝酸鈉比色法，用紫外分光光度計測定蘆丁的含量?；貧w方程的線性范圍為 0～0.06 mg·mL－1，R2=0.996 4，回歸方程為：

黃酮產(chǎn)量（Y3，mg·L－1）的計算公式為：

式中：X3為黃酮含量（mg·g－1）；C3為菌絲體生物量（g·L－1）。

1.4.6 數(shù)據(jù)處理與分析

試驗(yàn)重復(fù)3次，使用SPSS軟件進(jìn)行單因素方差分析，顯著性水平P設(shè)為0.05，使用Origin軟件繪制圖形。

2 結(jié)果與分析

2.1 榆黃蘑菌絲體微觀形態(tài)觀察

在PDA固體培養(yǎng)基上培養(yǎng)時，不同食用菌的菌絲培養(yǎng)特征可表現(xiàn)出細(xì)微的差別，可以據(jù)此初步判斷常見食用菌的歸屬。榆黃蘑菌絲體微觀形態(tài)觀察見圖1。

圖1 榆黃蘑菌絲體微觀形態(tài)觀察Fig.1 Observation on the microscopic morphology of Pleurotus citrinopileatus mycelium

由圖1可知，榆黃蘑菌絲為白色，似蛛網(wǎng)狀，氣生菌絲十分旺盛。通過平面固體培養(yǎng)時，菌絲可向四周伸長，整個生長系統(tǒng)類似松柏樹的樹枝，最終形成圓形菌落。光學(xué)顯微鏡可進(jìn)一步觀察榆黃蘑菌絲體結(jié)構(gòu)，其結(jié)構(gòu)為管狀細(xì)胞連接而成的絲狀物，菌絲有間隔，有分支，多條分支相互纏繞，菌絲分枝生長是絲狀真菌菌絲生長蔓延的重要前提。

與普通光學(xué)顯微鏡相比，熒光倒置顯微鏡能更加清晰的觀察到榆黃蘑菌絲體的形態(tài)結(jié)構(gòu)與細(xì)胞核分布。熒光倒置顯微鏡觀察榆黃蘑菌絲體見圖2。

圖2 熒光倒置顯微鏡觀察榆黃蘑菌絲體Fig.2 Fluorescence inverted microscope observation of Pleurotus citrinopileatus mycelium

由圖2可知，當(dāng)放大倍數(shù)為50倍與100倍時，可觀察到錯綜復(fù)雜的菌絲相互纏繞，一條菌絲可形成多條分支。當(dāng)放大倍數(shù)為200倍與400倍時，可觀察到的深色光點(diǎn)為其細(xì)胞核所在位置。因此，采用DAPI染色法觀察菌絲體形態(tài)，菌絲形態(tài)與分支更為明顯，細(xì)胞核的位置也更加清晰，為榆黃蘑的細(xì)胞學(xué)分析提供參考。

2.2 GC-TOF-MS非靶標(biāo)榆黃蘑菌絲體代謝物定性分析

采用GC-TOF-MS非靶標(biāo)代謝組學(xué)鑒定榆黃蘑菌絲體中代謝物的種類。樣品的總離子流圖見圖3。

圖3 榆黃蘑菌絲體GC-TOF-MS總離子流圖Fig.3 GC-TOF-MS total ion current diagram of Pleurotus citrinopileatus mycelium

由圖3可知，樣本的儀器分析信號強(qiáng)，峰容量大，單個峰分離較好且保留時間重現(xiàn)性好，儀器的穩(wěn)定性高。榆黃蘑菌絲體中所含主要代謝物見表2。

由表2可知，榆黃蘑菌絲體中含有豐富的代謝物，主要包括6種脂肪酸類物質(zhì)、16種氨基酸類物質(zhì)、24種糖類物質(zhì)、8種糖醇類物質(zhì)、4種糖酸類物質(zhì)、3種黃酮類物質(zhì)、3種維生素、7種有機(jī)酸以及2種風(fēng)味物質(zhì)。其中，氨基酸與糖類物質(zhì)最為豐富，包括4種必需氨基酸，12種非必需氨基酸，以及多種單糖、二糖與多糖類物質(zhì)。這些代謝物質(zhì)的鑒定表明榆黃蘑具有較高的營養(yǎng)價值和藥用價值，為榆黃蘑的應(yīng)用奠定了重要的理論基礎(chǔ)。

表2 榆黃蘑菌絲體中所含主要代謝物Tab.2 Main metabolites contained in the mycelium of Pleurotus citrinopileatus

2.3 不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體生物量的影響

2.3.1 不同碳源對榆黃蘑菌絲體生物量的影響

碳源是菌絲體細(xì)胞必不可少的營養(yǎng)物質(zhì)，是微生物菌絲體生長發(fā)育活動的主要能量來源。在液體發(fā)酵過程中，培養(yǎng)基初始碳源種類的選擇會對食用菌的生長產(chǎn)生一定的影響。不同碳源對榆黃蘑液體發(fā)酵的菌絲球形態(tài)的影響見圖4。

圖4 不同碳源對榆黃蘑菌絲體形態(tài)的影響Fig.4 Effects of different carbon sources on the mycelium morphology of Pleurotus citrinopileatus

由圖4可知，不同碳源對榆黃蘑液體發(fā)酵的菌絲體大小、顏色、質(zhì)地等均有一定影響。其中以可溶性淀粉作為碳源時，菌絲球顏色為淡黃色，大小均勻，形態(tài)較小，表面粘度較低，菌絲球質(zhì)地偏硬。而以葡萄糖為碳源時，顏色偏黃，形態(tài)較小，但表面粘度較高，菌絲球較為綿軟。楊靜靜等[19]研究表明，菌體形態(tài)對絲狀真菌的生長以及代謝產(chǎn)物影響較大。不同碳源對榆黃蘑液體發(fā)酵的菌絲體生物量的影響見圖5。

圖5 不同碳源對液體發(fā)酵菌絲體生物量的影響Fig.5 Effects of different carbon sources on the mycelium biomass of Pleurotus citrinopileatus

由圖5可知，與其他碳源相比，以葡萄糖作為碳源時，菌絲體生物量最大，為 11.22 g·L－1（P＜0.05）?？赡苁怯捎谄咸烟亲鳛樘荚磿r細(xì)胞無適應(yīng)期，更有利于細(xì)胞代謝產(chǎn)能，促進(jìn)細(xì)胞迅速生長，因此在發(fā)酵過程中更有利于細(xì)胞生長[20]。綜合考慮，本試驗(yàn)選用葡萄糖作為榆黃蘑生產(chǎn)菌絲最適碳源。

2.3.2 不同氮源對榆黃蘑菌絲體生物量的影響

氮源是菌絲體細(xì)胞生長或者代謝產(chǎn)物合成中較為重要的營養(yǎng)物質(zhì)，同時也是菌絲體細(xì)胞中蛋白質(zhì)、核酸和酶的主要構(gòu)成元素，對于細(xì)胞結(jié)構(gòu)的組成具有非常重要的作用[21]。食用菌對不同氮源的利用能力不同[22]，不同氮源對榆黃蘑液體發(fā)酵的菌絲球形態(tài)的影響見圖6。

由圖6可知，不同氮源對榆黃蘑的菌絲體大小、顏色等有一定影響。以硫酸銨、尿素作為氮源時，菌絲球基本不生長。以黃豆粉作為氮源時，菌絲球形態(tài)較大，顏色較白。以酵母粉作為氮源時，菌絲球形態(tài)較小，顏色較黃。不同氮源對榆黃蘑液體發(fā)酵的菌絲體生物量的影響見圖7。

由圖7可知，與其他氮源相比，以黃豆粉作為氮源時榆黃蘑菌絲體生物量最大，為 12.52 g·L－1（P＜0.05）?？赡苁怯捎邳S豆粉是一種混合物質(zhì)，含有多種氮源，為榆黃蘑的生長發(fā)育提供了較多種類的營養(yǎng)物質(zhì)。以硫酸銨、尿素為氮源獲得的榆黃蘑菌絲體生物量較低，表明這兩類氮源不能用于培養(yǎng)榆黃蘑。綜合考慮，本試驗(yàn)選用黃豆粉作為榆黃蘑生產(chǎn)菌絲的最適氮源。

圖7 不同種類氮源對榆黃蘑菌絲體生物量的影響Fig.7 Effects of different nitrogen sources on the mycelium biomass of Pleurotus citrinopileatus Sing

綜上所述，培養(yǎng)榆黃蘑液體發(fā)酵的最佳碳源為葡萄糖，最佳氮源為黃豆粉。在最優(yōu)條件下，液體發(fā)酵榆黃蘑菌絲體生物量為 13.90 g·L－1。

2.4 不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體內(nèi)多糖的影響

在液體發(fā)酵過程中，不同的發(fā)酵基質(zhì)會對食用菌自身生長和代謝產(chǎn)物的合成產(chǎn)生影響[23－24]。多糖是榆黃蘑中的主要活性成分，具有極高的藥用價值[5]。不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體多糖含量與產(chǎn)量的影響見圖8。

圖8 不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體多糖含量與產(chǎn)量的影響Fig.8 Effects of different carbon and nitrogen sources on mycelium polysaccharide content and production of Pleurotus citrinopileatus

由圖8可知，與其他碳源相比，以蔗糖為碳源獲得的榆黃蘑菌絲體中多糖含量最高，為33.45 mg·g－1（P＜0.05），但其多糖產(chǎn)量最低，為 268.17 mg·L－1（P＜0.05），可能是由于菌絲體生物量較低。說明胞內(nèi)多糖產(chǎn)量與含量并不一定呈正相關(guān)，還與菌絲體生物量有關(guān)。綜合比較多糖含量與產(chǎn)量，以葡萄糖和蔗糖為混合碳源時，最有利于多糖的產(chǎn)生，多糖含量為為 32.80 mg·g－1、多糖產(chǎn)量為 338.15 mg·L－1。與其他氮源相比，以黃豆粉為氮源獲得的菌絲體多糖含量與產(chǎn)量均達(dá)到最高，分別為30.34 mg·g－1、370.98 mg·L－1（P＜0.05）?？赡苁怯捎邳S豆粉作為一種混合氮源，可為榆黃蘑菌絲體多糖的產(chǎn)生提供更為豐富的營養(yǎng)物質(zhì)。

綜合考慮，葡萄糖和蔗糖、黃豆粉是最適于多糖產(chǎn)生的碳源與氮源。

2.5 不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體內(nèi)蛋白的影響

食用菌含有豐富的蛋白質(zhì),是優(yōu)質(zhì)蛋白的良好來源[25]。不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體蛋白含量與產(chǎn)量的影響見圖9。

圖9 不同碳源、氮源對榆黃蘑菌絲體蛋白含量與產(chǎn)量的影響Fig.9 Effects of different carbon and nitrogen sources on mycelium protein content and production of Pleurotus citrinopileatus

由圖9可知，與其他碳源相比，以葡萄糖為碳源獲得的榆黃蘑菌絲體中，蛋白含量與產(chǎn)量均達(dá)到最高，分別為 125.60 mg·g－1、1 410.23 mg·L－1（P＜0.05）。以蛋白胨為氮源獲得的菌絲體蛋白含量最高，為 146.78 mg·g－1（P＜0.05），但其菌絲體生物量最低，因此蛋白產(chǎn)量也最低 793.83 mg·L－1（P＜0.05）。以黃豆粉為氮源獲得的菌絲體蛋白產(chǎn)量最高，達(dá)到 1 701.60 mg·L－1（P＜0.05），相較蛋白胨，提高了 114.35% （P＜0.05）。因此，不同碳氮源培養(yǎng)基對菌絲體中蛋白質(zhì)的含量有一定的影響，可能是因?yàn)橛茳S蘑對不同碳氮源的吸收利用程度不同[26]，導(dǎo)致其合成蛋白質(zhì)的能力也不相同。綜合考慮，葡萄糖、黃豆粉為最適于蛋白產(chǎn)生的碳源與氮源。

2.6 最優(yōu)條件下榆黃蘑菌絲體內(nèi)代謝物含量與產(chǎn)量

以菌絲體生物量以及代謝物的含量與產(chǎn)量為指標(biāo)，綜合考慮，選擇葡萄糖與黃豆粉作為榆黃蘑液體發(fā)酵最優(yōu)的碳源、氮源。在此條件下，測定得到榆黃蘑中多糖、蛋白以及黃酮的含量與產(chǎn)量，見表3。

由表3可知，榆黃蘑發(fā)酵菌絲體中含有豐富的多糖與蛋白質(zhì)，胞內(nèi)多糖和蛋白質(zhì)產(chǎn)量分別可達(dá)到429.18 mg·L－1與 2 007.52 mg·L－1，同時菌絲體內(nèi)還含有少量黃酮類化合物。

表3 最優(yōu)條件下榆黃蘑菌絲體內(nèi)代謝物含量與產(chǎn)量Tab.3 Metabolites contents and productions in the Pleurotus citrinopileatus mycelium under the optimal condition

3 結(jié)論

對榆黃蘑菌絲體微觀形態(tài)觀察發(fā)現(xiàn)，榆黃蘑菌絲體為白色，分支較多，相互纏繞，可作為形態(tài)鑒定依據(jù)。GC－TOF－MS非靶標(biāo)代謝組學(xué)的結(jié)果表明，在榆黃蘑菌絲體中含有脂肪酸、氨基酸、維生素等豐富的營養(yǎng)物質(zhì)以及多糖、黃酮等重要的藥用成分，表明榆黃蘑具有較高的營養(yǎng)價值和藥用價值。分別以榆黃蘑菌絲體的生物量、多糖含量及蛋白含量為指標(biāo)，得到最適發(fā)酵碳源、氮源為葡萄糖與黃豆粉，最優(yōu)條件下獲得的榆黃蘑菌絲體生物量為 13.90 g·L－1，菌絲體中多糖產(chǎn)量為429.18 mg·L－1，蛋白產(chǎn)量為 2 007.52 mg·L－1，黃酮產(chǎn)量為 40.84 mg·L－1。