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單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序及其在乳腺癌中的應(yīng)用

2021-03-28 23:08韓香臣李小光
中國癌癥雜志 2021年11期
關(guān)鍵詞:單細(xì)胞異質(zhì)性淋巴細(xì)胞

韓香臣,李小光,胡 欣

復(fù)旦大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院乳腺外科,復(fù)旦大學(xué)上海醫(yī)學(xué)院腫瘤學(xué)系,上海 200032

單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序是一項(xiàng)能在單細(xì)胞水平上進(jìn)行無偏倚、高通量、高分辨率全轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析的新技術(shù)[1]。針對(duì)腫瘤組織等異質(zhì)性高的樣本,傳統(tǒng)的高通量測(cè)序技術(shù)只能提供樣本中所有細(xì)胞轉(zhuǎn)錄水平的平均值,但單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序可以精準(zhǔn)描繪樣本中每個(gè)細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄組特征。單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)可以幫助我們了解組織學(xué)意義相同細(xì)胞的差異,進(jìn)一步探究細(xì)胞類型已知的細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組特征或發(fā)現(xiàn)新的細(xì)胞類型[2]。

國家癌癥中心2019年統(tǒng)計(jì)數(shù)據(jù)顯示,乳腺癌占全部女性癌癥的17.1%,位于中國女性癌癥發(fā)病率首位,嚴(yán)重威脅中國女性健康[3]。有研究[4]表明,乳腺癌是一種高度異質(zhì)性的腫瘤,傳統(tǒng)的高通量測(cè)序技術(shù)不足以解決腫瘤異質(zhì)性等難題。將單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)應(yīng)用于乳腺癌,不僅可以解決腫瘤異質(zhì)性問題,還能為闡明腫瘤微環(huán)境、轉(zhuǎn)移播散、治療耐藥等問題提供新思路。

1 單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)概述

近10年來,得益于新技術(shù)的出現(xiàn)與實(shí)驗(yàn)方法的改進(jìn),單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序的規(guī)模呈指數(shù)增長,費(fèi)用不斷降低[5]。2009年,Tang等[6]運(yùn)用單細(xì)胞全轉(zhuǎn)錄組擴(kuò)增技術(shù),將卵細(xì)胞中的mRNA無偏倚地反轉(zhuǎn)錄成長達(dá)3 kb的cDNA,基于二代測(cè)序SOLiD平臺(tái),首次獲得了單細(xì)胞水平的轉(zhuǎn)錄組圖譜,描繪了卵細(xì)胞中5 270個(gè)基因的轉(zhuǎn)錄本信息。然而,該技術(shù)只能描繪單個(gè)細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄組特征,應(yīng)用范圍有限。2011年,Islam等[7]研發(fā)了單細(xì)胞標(biāo)記反轉(zhuǎn)錄(single-cell tagged reverse transcription,STRT)技術(shù),先將細(xì)胞分離到96孔板中,再利用鏈轉(zhuǎn)化原理給每孔中的細(xì)胞加入孔特異性條形碼,因此STRT技術(shù)可描繪上百個(gè)細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄組圖譜。

近年來,得益于微流控、隨機(jī)捕獲和原位標(biāo)記等技術(shù)的出現(xiàn),單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)得以自動(dòng)化和商業(yè)化。以集成射流回路(integrated fluidic circuit,IFC)芯片[8]為例,IFC芯片可以連續(xù)地、精準(zhǔn)地將極小體積的液體轉(zhuǎn)移至反應(yīng)室中。將細(xì)胞捕獲至IFC芯片各反應(yīng)室后,后續(xù)的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序?qū)嶒?yàn)步驟都可以在IFC芯片中完成。聯(lián)合IFC芯片技術(shù),CEL-seq、SMART-seq等單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)得以自動(dòng)化,并可檢測(cè)成百上千個(gè)細(xì)胞。Drop-seq技術(shù)[9-10]則是將細(xì)胞捕獲至油滴中,后續(xù)的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序?qū)嶒?yàn)步驟則在各個(gè)油滴中完成。兩股液流,一股包含單細(xì)胞懸液,另一股包含細(xì)胞裂解液、反轉(zhuǎn)錄試劑和帶有poly(T)反轉(zhuǎn)錄引物的磁珠,匯聚后被油滴捕獲。

目前,完整的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序?qū)嶒?yàn)可分為單細(xì)胞捕獲、單細(xì)胞RNA測(cè)序、數(shù)據(jù)處理和數(shù)據(jù)分析4個(gè)部分[11]。首先,腫瘤組織等樣本被制備成單細(xì)胞懸液,并被捕獲到液滴或芯片反應(yīng)室中,細(xì)胞裂解并釋放RNA。其中,帶有poly(A)尾的mRNA會(huì)與帶有唯一分子標(biāo)識(shí)符和細(xì)胞特異性標(biāo)簽的poly(T)引物結(jié)合。在經(jīng)歷反轉(zhuǎn)錄、第二鏈合成、cDNA擴(kuò)增、片段化、加測(cè)序接頭后,得到可用于高通量測(cè)序的文庫。基于細(xì)胞特異性標(biāo)簽,測(cè)序數(shù)據(jù)被拆解,并被映射到相應(yīng)的基因組上,構(gòu)建單細(xì)胞基因表達(dá)矩陣,該矩陣可應(yīng)用于下游分析[12]。

2 單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)分析

單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)下游分析可分為細(xì)胞水平分析和基因水平分析兩大部分。細(xì)胞水平分析集中于聚類分析和軌跡推斷,基因水平分析則集中于尋找差異表達(dá)基因、基因富集分析和基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)[13]。

2.1 聚類分析

聚類分析是單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)分析的第一步,可用于區(qū)分細(xì)胞類別[14]。運(yùn)用機(jī)器學(xué)習(xí)中的聚類分析方法,將基因表達(dá)譜相似的細(xì)胞歸為一類,每個(gè)類別的標(biāo)記基因還可用于描述類別特征或推斷細(xì)胞類型。目前,K均值聚類算法等無監(jiān)督聚類分析是主流分析方法,數(shù)據(jù)經(jīng)t-分布隨機(jī)鄰域嵌入(t-distributed stochastic neighbor embedding,t-SNE)[15]、主成分分析(principle component analysis,PCA)[16]、統(tǒng)一流形逼近與投影(uniform manifold approximation and projection,UMAP)[17]等算法降維和可視化后,得到的圖形中每個(gè)點(diǎn)代表一個(gè)細(xì)胞,鄰近的細(xì)胞則可認(rèn)為是同一類細(xì)胞。Peng等[18]對(duì)腫瘤患者的57 350個(gè)細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,后續(xù)的聚類分析將這些細(xì)胞分為10個(gè)類別,并結(jié)合常見的細(xì)胞類型標(biāo)記基因,將這些細(xì)胞注釋為巨噬細(xì)胞、T淋巴細(xì)胞、B淋巴細(xì)胞和成纖維細(xì)胞等。

2.2 軌跡推斷

組織異質(zhì)性的發(fā)生、發(fā)展過程是動(dòng)態(tài)的,而軌跡推斷則是通過尋找使相鄰細(xì)胞間轉(zhuǎn)錄組差異最小的路徑,重建這個(gè)動(dòng)態(tài)過程[19]。Chen等[20]對(duì)來自腫瘤患者的48 584個(gè)細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,利用Monocle算法[21],推斷腫瘤浸潤T淋巴細(xì)胞的分化軌跡:CD4+T淋巴細(xì)胞始于CD4+初始T淋巴細(xì)胞并向CD4+活化T淋巴細(xì)胞或失能T淋巴細(xì)胞兩個(gè)方向分化;CD8+T淋巴細(xì)胞則始于CD8+T淋巴細(xì)胞并向CD8+細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞或失能T淋巴細(xì)胞兩個(gè)方向分化。雖然軌跡推斷在單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)分析中廣泛應(yīng)用,但應(yīng)注意細(xì)胞軌跡推斷的結(jié)果并不一定能代表真實(shí)的生物學(xué)進(jìn)程[22]。

2.3 基因集分析

分析單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)時(shí),可以找到許多差異表達(dá)基因,但其數(shù)量過多,反而阻礙我們解讀測(cè)序數(shù)據(jù)的生物學(xué)意義。因此,可以基于這些基因的共同特征,將多個(gè)差異表達(dá)基因以基因集為單位分析,如基因集變異分析(gene set variation analysis,GSVA)、基因集富集分析(gene set enrichment analysis,GSEA)、京都基因與基因組百科全書(Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes,KEGG)通路分析、基因本體(gene ontology,GO)分析等[23]。Azizi等[24]對(duì)乳腺癌患者的47 016個(gè)免疫細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,并對(duì)差異表達(dá)基因中的環(huán)境刺激應(yīng)答相關(guān)基因富集分析,結(jié)果顯示,不同類型CD4+記憶T淋巴細(xì)胞對(duì)Ⅰ、Ⅱ型干擾素、缺氧、失能的應(yīng)答模式不同,而不同類型CD4+調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞對(duì)抗炎、耗竭、缺氧的應(yīng)答模式相同。

2.4 基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)

通過識(shí)別基因共表達(dá)模式可推斷基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò),如SCENIC算法通過識(shí)別與轉(zhuǎn)錄因子共表達(dá)的基因以推斷基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)[25]。Chen等[20]對(duì)來自鼻咽癌患者的40 000個(gè)免疫細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,基因調(diào)控網(wǎng)絡(luò)分析提示,EOMES、RUNX3、XBP1等轉(zhuǎn)錄因子在自然殺傷(natural killer,NK)細(xì)胞和CD8+細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞中表達(dá)均上調(diào),提示這些轉(zhuǎn)錄因子可能參與調(diào)節(jié)細(xì)胞毒作用,后續(xù)實(shí)驗(yàn)也證實(shí),下調(diào)NK細(xì)胞和CD8+T淋巴細(xì)胞中EOMES、RUNX3、XBP1的表達(dá)會(huì)降低顆粒酶B和穿孔素等細(xì)胞毒作用效應(yīng)分子的表達(dá)。

3 單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)在乳腺癌中的應(yīng)用

乳腺癌是一類異質(zhì)性高的腫瘤,將單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)應(yīng)用于乳腺癌研究,可以從全新的角度揭示乳腺腫瘤異質(zhì)性、腫瘤微環(huán)境、轉(zhuǎn)移播散及治療耐藥等問題。

3.1 腫瘤異質(zhì)性

盡管目前對(duì)乳腺腫瘤異質(zhì)性已有初步了解,基于轉(zhuǎn)錄組測(cè)序的分子分型和基于基因組測(cè)序的基因檢測(cè)被廣泛應(yīng)用于指導(dǎo)乳腺癌個(gè)體化治療[26-27],但還遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠。在腫瘤增殖過程中,腫瘤細(xì)胞可表現(xiàn)出不同表型:干性、上皮-間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)、侵襲、遷移、免疫浸潤、凋亡及缺氧等,這些表型在腫瘤侵襲、轉(zhuǎn)移播散、治療耐藥過程中發(fā)揮重要作用[28]。然而,傳統(tǒng)的高通量測(cè)序無法保留這些腫瘤內(nèi)異質(zhì)性信息,單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序則可解決腫瘤異質(zhì)性這一難題。Chung等[29]對(duì)不同分子分型乳腺癌患者的共515個(gè)細(xì)胞進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,數(shù)據(jù)表明,同一患者的腫瘤細(xì)胞基因表達(dá)譜相似性很低,在不同患者間,腫瘤細(xì)胞在干性、EMT、血管形成等方面都表現(xiàn)出高度異質(zhì)性。

3.2 腫瘤微環(huán)境

腫瘤微環(huán)境主要由基質(zhì)細(xì)胞和免疫細(xì)胞組成,研究[30-32]表明,腫瘤相關(guān)成纖維細(xì)胞(carcinoma associated fibroblast,CAF)、腫瘤內(nèi)皮細(xì)胞(tumor endothelial cell,TEC)、腫瘤浸潤免疫細(xì)胞等微環(huán)境組分與腫瘤生長、血管形成及腫瘤免疫調(diào)節(jié)等生物過程有關(guān),因此,精準(zhǔn)描繪腫瘤微環(huán)境可以幫助我們尋找治療靶點(diǎn)和預(yù)后標(biāo)志物。Azizi等[24]分析了8例乳腺癌患者的腫瘤組織、正常組織、淋巴結(jié)及血液中的免疫細(xì)胞,單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)顯示,來自不同部位的免疫細(xì)胞表型有明顯差異,提示血液中免疫細(xì)胞的生物標(biāo)志物不一定能反映腫瘤浸潤免疫細(xì)胞表型;且大部分腫瘤浸潤T淋巴細(xì)胞的活化、終末分化、缺氧相關(guān)的信號(hào)呈不斷變化的趨勢(shì)。Lu等[33]分析了新輔助化療前后患者的腫瘤浸潤B淋巴細(xì)胞,單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)顯示,可誘導(dǎo)共刺激分子配體(inducible costimulator ligand,ICOSL)+B淋巴細(xì)胞在新輔助治療后明顯增多,臨床隊(duì)列的免疫組織化學(xué)和預(yù)后數(shù)據(jù)也證實(shí),ICOSL+B淋巴細(xì)胞在化療后明顯增多,且ICOSL+B淋巴細(xì)胞數(shù)目與臨床療效呈正相關(guān),后續(xù)機(jī)制研究發(fā)現(xiàn),ICOSL+B淋巴細(xì)胞可激發(fā)T淋巴細(xì)胞抗腫瘤免疫,增強(qiáng)腫瘤對(duì)化療的敏感性,提示ICOSL+B淋巴細(xì)胞可作為預(yù)后標(biāo)志物。

3.3 腫瘤轉(zhuǎn)移

腫瘤轉(zhuǎn)移是乳腺癌患者死亡的首要原因,未轉(zhuǎn)移患者的5年生存率高達(dá)98%,而轉(zhuǎn)移患者的5年生存率僅為27%[34],且約30%的初治未轉(zhuǎn)移乳腺癌最終進(jìn)展為轉(zhuǎn)移性乳腺癌[35]。單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序可解析原發(fā)灶和轉(zhuǎn)移灶的腫瘤異質(zhì)性和免疫微環(huán)境,幫助我們研究腫瘤轉(zhuǎn)移機(jī)制。目前腫瘤轉(zhuǎn)移的主流猜想是:少數(shù)有“干細(xì)胞”能力的腫瘤細(xì)胞播種到遠(yuǎn)處導(dǎo)致腫瘤轉(zhuǎn)移。Lawson等[36]對(duì)乳腺癌人源腫瘤異種移植模型的原發(fā)灶和轉(zhuǎn)移灶進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,數(shù)據(jù)表明,低腫瘤負(fù)荷小鼠轉(zhuǎn)移灶的腫瘤細(xì)胞基因表達(dá)譜和干細(xì)胞相似,高表達(dá)干性、EMT、促生存和休眠相關(guān)基因;而高腫瘤負(fù)荷小鼠轉(zhuǎn)移灶的腫瘤細(xì)胞基因表達(dá)譜和原發(fā)灶的腫瘤細(xì)胞相似,異質(zhì)性高并高表達(dá)分化相關(guān)基因,提示少數(shù)干細(xì)胞樣腫瘤細(xì)胞啟動(dòng)腫瘤轉(zhuǎn)移。

3.4 治療耐藥

化療、內(nèi)分泌治療、靶向治療、免疫治療耐藥的出現(xiàn)是乳腺癌治療的難題,許多患者最初對(duì)藥物敏感但后續(xù)對(duì)藥物抵抗,導(dǎo)致腫瘤進(jìn)展。聯(lián)合治療前后的單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序數(shù)據(jù)和臨床預(yù)后數(shù)據(jù),可以研究腫瘤耐藥機(jī)制,并尋找合適的預(yù)后標(biāo)志物。Kim等[37]對(duì)三陰性乳腺癌患者新輔助化療前后的腫瘤組織進(jìn)行單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序,GSVA顯示,化療抵抗患者AKT1、CDH1、缺氧、EMT、血管形成等信號(hào)在化療后明顯上調(diào),臨床隊(duì)列數(shù)據(jù)證實(shí),化療后AKT1和缺氧信號(hào)上調(diào)患者預(yù)后更差,提示AKT1和缺氧信號(hào)可作為預(yù)后標(biāo)志物。

4 結(jié)語

單細(xì)胞轉(zhuǎn)錄組測(cè)序技術(shù)是一項(xiàng)有應(yīng)用前景的高通量、高分辨率測(cè)序技術(shù),可以幫助我們探索乳腺癌的腫瘤異質(zhì)性、免疫微環(huán)境、復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移及治療耐藥等問題。雖然現(xiàn)在該技術(shù)仍有許多局限性:只能檢測(cè)活細(xì)胞樣本、細(xì)胞數(shù)目要求高、費(fèi)用較高,但是可以提高細(xì)胞捕獲效率以減少細(xì)胞投入量,改進(jìn)實(shí)驗(yàn)方法以適用于多種樣本,研發(fā)分析方法以挖掘更多信息,甚至可以與單細(xì)胞多組學(xué)數(shù)據(jù)聯(lián)合分析,多角度揭示乳腺癌的生物學(xué)過程。

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