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低頻耳針電刺激降低內(nèi)臟敏感性的機(jī)制探討

2021-03-22 06:04徐萬里周靜珠趙瑞瑞孫魯寧王永慶薛明新張朝暉
關(guān)鍵詞:下丘腦內(nèi)臟耳穴

徐萬里,周 帥,周靜珠,趙瑞瑞,孫魯寧,王永慶,薛明新,陳 歡*,張朝暉*

1南京醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院針灸科,江蘇 南京 210029;2南京中醫(yī)藥大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院,江蘇 南京 210029;3南京醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院藥學(xué)部,江蘇 南京 210029

腸易激綜合征(irritable bowel syndrome,IBS)是臨床最常見的功能性腸病,以腹痛、內(nèi)臟高敏感、腸動力異常以及排便習(xí)慣改變等一系列癥狀為主要表現(xiàn)[1]。近來研究認(rèn)為IBS發(fā)病以“腦?腸交互異常”為基礎(chǔ),嬰幼時期經(jīng)歷的負(fù)性事件尤其是心理應(yīng)激會極大地改變下丘腦?垂體?腎上腺軸(hypothalamo?pituitary?adrenal axis,HPA 軸)對應(yīng)激的負(fù)反饋調(diào)節(jié)功能,從而導(dǎo)致腸道免疫、動力以及疼痛感覺異常,產(chǎn)生相應(yīng)癥狀[2]。

由前體肽核組蛋白2(nucleobindin?2,NUCB2)衍生而來的nesfatin?1 表達(dá)異常升高是應(yīng)激導(dǎo)致的機(jī)體重要變化之一。Nesfain?1 促進(jìn)下丘腦釋放HPA軸關(guān)鍵調(diào)節(jié)因子促皮質(zhì)素釋放因子(corticotro?pin releasing factor,CRF),并通過其受體1,2(corti?cotropin releasing factor receptor1/2,CRF1/2R)信號通路介導(dǎo)IBS 的內(nèi)臟高敏反應(yīng)[3],HPA 軸激活最終誘使胃腸道5?羥色胺(5?hydroxytryptamine,5?HT)系統(tǒng)應(yīng)答,5?HT 在胃腸道中含量占機(jī)體總量的95%,是胃腸重要的神經(jīng)遞質(zhì)之一。5?HT4 型受體(5?HT4R)在腸道各級神經(jīng)元和腸細(xì)胞廣泛分布,具有促腸動力和保護(hù)腸黏膜的作用[4],其表達(dá)異常直接導(dǎo)致腸動力、感覺調(diào)節(jié)障礙。

耳針作為針灸重要分支,具有顯著的調(diào)節(jié)中樞/外周神經(jīng)系統(tǒng)的作用,并可通過神經(jīng)?內(nèi)分泌途徑改善相應(yīng)組織器官功能[5-6],本文通過建立母嬰分離結(jié)合醋酸灌腸誘導(dǎo)內(nèi)臟高敏感大鼠模型,觀察低頻耳電針后大鼠內(nèi)臟痛閾的改變,下丘腦CRF、CRF1R、CRF2R、nesfatin?1 及結(jié)腸5?HT4R 的mRNA 表達(dá),初步探究耳針降低內(nèi)臟高敏感的機(jī)制。

1 材料和方法

1.1 材料

8只SD孕大鼠由南京大學(xué)模式動物中心提供,單籠飼養(yǎng)于南京醫(yī)科大學(xué)SPF 級實驗動物中心,室溫22~24 ℃,濕度50%,光照周期12 h/12 h,自由進(jìn)食。新生雄性乳大鼠隨機(jī)分為空白組(10 只)與模型準(zhǔn)備組(30只)。評價造模成功后,采用SAS 軟件產(chǎn)生隨機(jī)數(shù)字法將模型準(zhǔn)備組大鼠分為3 組,每組10只。模型組:模型大鼠不予干預(yù);耳針1組:模型大鼠取雙耳“胃”穴(雙側(cè)耳甲區(qū)中央)針刺+電刺激[7];耳針2 組:模型大鼠取雙耳“非穴區(qū)”(耳垂區(qū)中央)針刺+電刺激。所有實驗操作遵循《動物實驗的倫理準(zhǔn)則與指南》并在獲得南京醫(yī)科大學(xué)倫理委員會審批(IACUC?1905023)后開始實驗。

PrimeScript?RT reagent Kit with gDNA Eraser 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(RR047A)、RNAiso Plus TRIzol(9108,TaKaRa 公司,日本);實時熒光定量PCR 儀(Stepone plus,Applied Biosystems 公司,美國),分光光度計(Nano drop 2000,Thermo Fisher 公司,美國)。多道生理采集系統(tǒng)(BL420,成都泰盟),麻醉機(jī)(ABS?100,上海玉研儀器),電針儀(CMNS6?2 型,無錫佳健醫(yī)療),顯微鏡(H550S,尼康,日本)。

1.2 方法

1.2.1 內(nèi)臟高敏感大鼠模型造模

采用“母嬰分離結(jié)合醋酸灌腸”的造模方法[8]。新生雄性乳大鼠出生后2~21 d 行母嬰分離,每天3 h;并于出生后第8~21 天,給予0.5%醋酸灌腸,建立慢性結(jié)腸高敏感模型,空白組給予相同體積生理鹽水。飼養(yǎng)至6 周,通過結(jié)直腸擴(kuò)張(colorectal dis?tension,CRD)刺激,記錄腹外斜肌肌電活動(electro?myographic,EMG),驗證內(nèi)臟高敏感模型是否建立。

1.2.2 耳針電刺激

第9 周開始,每日上午8~12 點進(jìn)行實驗操作。耳針1組、耳針2組大鼠2.0%~2.5%異氟烷吸入30 s后,采用固定裝置固定大鼠,分別取相應(yīng)部位針刺并連接電針儀(CMNS6?2型,無錫佳健醫(yī)療),雙極電針,大鼠恢復(fù)至清醒狀態(tài)后予以電針刺激,兩組電針參數(shù)與干預(yù)時間相同:頻率2 Hz,強(qiáng)度(3.0±0.5)mA,連續(xù)波,持續(xù)30 min,每天1次,治療5次/周,共治療2周。

1.2.3 腹外斜肌肌電測定

實驗前1 周大鼠雙側(cè)腹外斜肌處埋植電極,導(dǎo)線留置于大鼠背部。測試前禁食24 h,固定大鼠。電極導(dǎo)線經(jīng)切口引出連接BL?420 生物機(jī)能實驗系統(tǒng)。導(dǎo)尿管經(jīng)液體石蠟潤滑后插入大鼠直腸約4 cm。待大鼠安靜后開始記錄,測試參數(shù):標(biāo)準(zhǔn)電壓2 mV/cm,時間常數(shù)2 s,高頻濾波30 Hz。向?qū)蚬芮蚰页錃猓謩e予20、40、60、80 mmHg 壓力觀察EMG 變化。通過BL?420 配套計算機(jī)軟件截取20、40、60、80 mmHg 壓力4 個時段中1 min 內(nèi)波形EMG,配套軟件計算該時間段曲線下面積(area un?der curve,AUC,單位:μV·s),并計算與靜息狀態(tài)1 min內(nèi)AUC的差值。

1.2.4 遠(yuǎn)端結(jié)腸組織HE染色

3%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉(4 mg/100 g)后處死,迅速開顱、開腹,冰上快速取下丘腦、結(jié)腸組織,固定于4%多聚甲醛24 h 以上,依次梯度乙醇進(jìn)行脫水。將浸好蠟的組織于包埋機(jī)內(nèi)進(jìn)行包埋。修塊,切片,脫蠟至水、染色、沖洗伊紅染色、乙醇脫水封片。顯微鏡鏡檢,圖像采集分析。

1.2.5 實時熒光定量PCR(Real?time PCR)

同上操作,快速取下丘腦、結(jié)腸組織,置于液氮和-80 ℃冰箱備用。TRIzol 試劑盒提取下丘腦內(nèi)總RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA。引物序列如表1。反應(yīng)體系:反應(yīng)液10 μL,5×Primescript Buffer 4 μL,5×Primescript RT Enzyme Mix 1 μL,RT Primer Mix 4 μL,DEPC 水1 μL。反應(yīng)條件:95.0 ℃10 min;95.0 ℃5 s,60.0 ℃1 min,40個周期;95.0 ℃15 s 熔解曲線。根據(jù)real?time PCR原始檢測結(jié)果,按照2-△△Ct相對定量計算公式,計算目的基因相對定量結(jié)果。

1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

采用SPSS22.0 軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計分析。數(shù)據(jù)均以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,符合正態(tài)分布和方差齊性的兩組計量資料比較采用獨立樣本t檢驗,多組計量資料比較采用單因素方差分析。組間兩兩比較采用LSD 法。P<0.05 表示有顯著統(tǒng)計學(xué)差異。

2 結(jié)果

2.1 內(nèi)臟高敏感模型大鼠建立

腹外斜肌EMG 顯示,結(jié)直腸內(nèi)置球囊壓力為20 mmHg時,與空白組相比,模型組AUC差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);在40、60、80 mmHg壓力時,模型組AUC較空白組明顯升高(P均<0.05,圖1),提示IBS內(nèi)臟高敏感模型造模成功。

表1 qPCR引物序列Table 1 Primer sequences of qPCR

空白組與模型組大鼠結(jié)腸HE 染色后鏡下觀察,結(jié)腸組織結(jié)構(gòu)正常,未見炎細(xì)胞浸潤,腸黏膜未見增厚,固有層未見分離,腸絨毛形態(tài)結(jié)構(gòu)正常,未見脫落(圖2)。

2.2 低頻耳針電刺激對內(nèi)臟高敏感的作用

結(jié)直腸球囊壓力為20 mmHg時,與模型組AUC比較,耳針1 組AUC 顯著減少(P<0.05);耳針2 組AUC有下降趨勢,但無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。

在40 mmHg 及60 mmHg 壓力時,與模型組比較,耳針1 組、耳針2 組AUC 均明顯減少(均P<0.05)。在壓力為80 mmHg時,耳針1組AUC較模型組顯著下降(P<0.05),耳針2 組有下降趨勢,但無統(tǒng)計學(xué)差異(圖3)。腹外斜肌EMG 結(jié)果提示,耳針1 組與耳針2 組均有緩解模型大鼠內(nèi)臟高敏感性的效應(yīng),且耳針1組效應(yīng)更加顯著。

圖1 不同結(jié)直腸壓力下腹外斜肌肌電AUCFigure 1 AUC of external oblique under different colorec?tal pressure

圖2 結(jié)腸HE染色Figure 2 HE staining of colon tissue

2.3 低頻耳針電刺激后下丘腦基因表達(dá)變化

下丘腦組織CRF mRNA 的表達(dá)比較,模型組比空白組顯著增加(P<0.05),耳針1 組與耳針2 組較模型組顯著減少(P<0.05)。nesfatin?1 mRNA 的表達(dá)在模型組及耳針2 組較空白組明顯上升(P<0.05),耳針1 組較模型組、耳針2 組顯著下降(P<0.05)。CRF1R mRNA 的表達(dá)在模型組較空白組明顯上升(P<0.05),耳針1組較模型組顯著下降(P<0.05)。CRF2R mRNA 與nesfatin?1mRNA 的表達(dá)相似,模型組及耳針2 組較空白組明顯上升(P<0.05),耳針1 組較模型組、耳針2 組顯著下降(P<0.05,圖4)。提示耳針對下丘腦CRF、CRF1R,CRF2R、nesfatin?1的表達(dá)具有調(diào)控作用。

圖3 干預(yù)后不同結(jié)直腸壓力下腹外斜肌肌電AUC比較Figure 3 Comparison of AUC of external oblique under different colorectal pressure after intervention

2.4 低頻耳針電刺激后大鼠遠(yuǎn)端結(jié)腸5?HT4R 的mRNA表達(dá)

圖4 下丘腦CRF、nesfatin?1、CRF1R、CRF2R的mRNA相對表達(dá)Figure 4 Relative mRNA expression of hypothalamic CRF,nesfatin?1,CRF1R,and CRF2R

與空白組比較,模型組5?HT4R的mRNA表達(dá)下降,但差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P=0.067);與模型組相比,耳針2組及耳針1組5?HT4R的mRNA表達(dá)均顯著升高(圖5)。提示耳針1組、耳針2組干預(yù)均會上調(diào)5?HT4R mRNA的表達(dá),其中耳針1組的效果更強(qiáng)。

3 討論

耳穴治療功能性胃腸病具有悠久的歷史[9?10],早期學(xué)者提出的“耳?迷走反射”理論闡釋了耳穴可通過中樞神經(jīng)系統(tǒng)對五臟六腑的作用機(jī)制,亦為《靈樞·口問》所記載的“耳者,宗脈之所聚也”這一理論提供科學(xué)依據(jù)[11]。近來,較多學(xué)者關(guān)注耳穴與腦(心理)相關(guān)疾病的研究,從腦功能改變、HPA軸、分子等不同層次闡述了耳穴通過“耳?腦”途徑的調(diào)節(jié)機(jī)制[12-13]。

本研究采用母嬰分離結(jié)合醋酸灌腸的方法[8]建立內(nèi)臟高敏感大鼠模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn),低頻電針耳穴“胃”穴可顯著降低內(nèi)臟高敏感大鼠直腸在不同球囊壓力刺激下的腹外斜肌EMG改變,提示低頻電針耳穴可緩解內(nèi)臟高敏感模型大鼠的腹部癥狀。此外,內(nèi)臟高敏感大鼠遠(yuǎn)端結(jié)腸組織未出現(xiàn)顯著的炎性改變,表明該模型主要以功能改變?yōu)橹鳌?/p>

圖5 遠(yuǎn)端結(jié)腸5?HT4R mRNA相對表達(dá)量Figure 5 Relative mRNA expression of 5?HT4R in colon tissue

CRF 是下丘腦在應(yīng)激狀態(tài)下釋放的神經(jīng)內(nèi)分泌調(diào)節(jié)因子,通過激活其G 蛋白偶聯(lián)受體CRF1R、CRF2R 對靶細(xì)胞發(fā)揮作用。外源性腦室注射CRF及應(yīng)激引起的CRF 升高均能誘發(fā)腸動力異常和內(nèi)臟高敏感,使大鼠產(chǎn)生腹痛、腹瀉、焦慮/抑郁等類IBS 癥狀[14]。Nesfatin?1 在下丘腦中與CRF 共表達(dá),與壓力刺激密切相關(guān)。提高側(cè)腦室nesfatin?1 濃度可顯著增加下丘腦CRF 神經(jīng)元c?Fos 的表達(dá)以及CRF 神經(jīng)元胞漿Ca2+濃度,提高神經(jīng)元活性[15]。此外,IBS 大鼠側(cè)腦室注射nesfatin?1 抗體可顯著減輕內(nèi)臟高敏感[3]。本研究觀察到內(nèi)臟高敏感模型大鼠下丘腦中CRF、CRF1R、CRF2R 及nesfatin?1 的mRNA 表達(dá)均異常升高,提示下丘腦nesfatin?1 與CRF 系統(tǒng)對IBS 大鼠的內(nèi)臟超敏存在關(guān)聯(lián),與早前的研究結(jié)果一致。本研究發(fā)現(xiàn)低頻電針耳穴“胃”可降低模型大鼠下丘腦CRF、CRF1R、CRF2R及nes?fatin?1 mRNA 的高表達(dá)狀態(tài),這可能是耳穴刺激能抑制腸道高敏感的中樞機(jī)制之一。然而,CRF 系統(tǒng)與nesfatin?1 在IBS 中的相互作用,以及耳穴刺激對兩者的調(diào)節(jié)機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。

5?HT是胃腸道中的重要動力分子和神經(jīng)遞質(zhì),其受下丘腦CRF的調(diào)節(jié)而合成釋放,與特異性受體結(jié)合發(fā)揮作用[14,16],廣泛表達(dá)于突觸前腸神經(jīng)元上的5?HT4R,主要參與腸道運動與感覺的調(diào)節(jié),對腸神經(jīng)元具有保護(hù)作用[17]。研究發(fā)現(xiàn),5?HT4R可激活腸黏膜5?HT的釋放、促使杯狀細(xì)胞分泌黏液和腸上皮細(xì)胞分泌氯離子,對抗內(nèi)臟痛[17?18]。臨床研究發(fā)現(xiàn),5?HT4R 的部分激動劑替加色羅可以顯著改善內(nèi)臟高敏感患者的直腸壓力敏感度和內(nèi)臟高敏感[19]。因此,5?HT4R成為臨床上治療IBS內(nèi)臟痛的靶點。本研究發(fā)現(xiàn),模型組遠(yuǎn)端結(jié)腸5?HT4R 的mRNA 表達(dá)較空白組有下降趨勢(P=0.067),耳針1組與耳針2組均能夠顯著提高模型大鼠結(jié)腸5?HT4R的mRNA 表達(dá),且耳針1 組較耳針2 組有更強(qiáng)的趨勢。提示耳穴“胃”電刺激具有更好的修復(fù)與改善內(nèi)臟高敏感的效應(yīng)[20]。

此外,發(fā)現(xiàn)耳針1 組在緩解腹痛以及對下丘腦相關(guān)神經(jīng)肽調(diào)控,均明顯強(qiáng)于耳針2 組,表明耳穴“胃”具有顯著的特異性。這可能與不同穴區(qū)所處部位的迷走神經(jīng)分布差異有關(guān),迷走神經(jīng)?下丘腦支配心臟、胃腸等內(nèi)臟器官的運動與感覺,研究顯示刺激迷走神經(jīng)可激活丘腦室旁核、下丘腦室旁核谷氨酸能神經(jīng)元[21],電針或可通過該途徑鎮(zhèn)痛[22],推測這或許也是本研究中耳穴“胃”電刺激鎮(zhèn)痛的機(jī)制之一。此外,發(fā)現(xiàn)耳穴電針調(diào)節(jié)胃腸功能障礙還存在其他神經(jīng)?體液機(jī)制,如本項研究中觀察到電針耳穴“胃”提高腸道5?HT4R mRNA表達(dá),以及本課題組前期研究結(jié)果顯示電針耳穴“胃”可促進(jìn)糖尿病大鼠胃Cajal細(xì)胞的修復(fù)[23],均提示耳針對胃腸功能的調(diào)節(jié)并非單一途徑。

中醫(yī)認(rèn)為IBS雖然病位在腸腑,但與心、腦、肝、脾密切相關(guān),現(xiàn)代醫(yī)學(xué)研究也表明IBS 很大程度上受社會心理因素影響,可見心神失調(diào)是IBS 發(fā)病的關(guān)鍵因素。耳針具有顯著寧心安神功效,臨床上運用于治療失眠、抑郁常獲顯著療效[24]。本研究結(jié)果也證實了耳針調(diào)節(jié)腦功能作為其修復(fù)內(nèi)臟高敏感的重要途徑。

總之,本研究同時從下丘腦與外周遠(yuǎn)端結(jié)腸兩個層面觀察低頻耳電針緩解內(nèi)臟高敏感性的效應(yīng),初步探討了耳針治療IBS 腸腦共病的生物學(xué)機(jī)制,為今后耳穴治療相關(guān)疾病提供新依據(jù)。

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