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費城染色體樣急性淋巴細(xì)胞白血病的研究進(jìn)展

2020-12-25 09:30:13糜堅青
關(guān)鍵詞:重排激酶白血病

李 超,糜堅青,王 瑾

上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬瑞金醫(yī)院血液內(nèi)科,上海 200025

急性淋巴細(xì)胞白血?。╝cute lymphoblastic leukemia,ALL),是骨髓及血液中原始/幼稚淋巴細(xì)胞惡性單克隆增殖而導(dǎo)致的疾病,由一系列細(xì)胞遺傳學(xué)或分子生物學(xué)異常通過影響編碼調(diào)節(jié)淋巴發(fā)育的轉(zhuǎn)錄因子、腫瘤抑制因子、調(diào)節(jié)細(xì)胞周期的蛋白質(zhì)和表觀遺傳修飾物等機制導(dǎo)致發(fā)病。世界衛(wèi)生組織(World Health Organization,WHO)根據(jù)不同的細(xì)胞遺傳學(xué)和分子生物學(xué)異常,把ALL 分為不同的類型[1]。近10 年來,在ALL 中新發(fā)現(xiàn)了1 組費城染色體(Ph/BCR-ABL1)陰性的患者,其白血病細(xì)胞的基因表達(dá)譜與Ph/BCR-ABL1陽性ALL 極為相似,因此被命名為BCR-ABL1-like ALL[2-3]。相關(guān)研究表明,BCR-ABL1-like ALL 與持續(xù)存在的疾病微小殘留病灶(minimal residual disease,MRD)及高復(fù)發(fā)率相關(guān),通常預(yù)后較差。這類白血病具有高比例的Ikaros 家族鋅指蛋白1(Ikaros zinc finger protein 1,IKZF1)基因缺失,且大多含有細(xì)胞因子受體樣因子2(cytokine receptor like factor 2,CRLF2)、Janus 激酶-信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄激活因子(Janus kinase-signal transduction and transcriptional activators,JAK-STAT)通路、ABL 族激酶及RAS 通路等的異常,這些異??勺鳛橹委煹臐撛诎悬c,為尋求更加有效的治療方案提供方向[2-5]。 在2016 年WHO 分型中,BCR-ABL1-like B 淋巴母細(xì)胞白血病/淋巴瘤被新增為ALL 的一項暫定分類[1]。近年來,BCR-ABL1-like ALL 成為國內(nèi)外的研究熱點,本文從定義、診斷、臨床特征、分子生物學(xué)特點、治療5 個方面闡述BCR-ABL1-like ALL 的研究現(xiàn)狀。

1 定義

2009 年1 月,美國St. Jude 醫(yī)院的Mullighan 等[2]及COG 研究組報道了IKZF1基因缺失與ALL 的預(yù)后密切相關(guān)。該研究除外了BCR-ABL1陽性、低二倍體、嬰兒ALL及對誘導(dǎo)治療無反應(yīng)的患者,共選取221 名兒童高危B 細(xì)胞性ALL(B-ALL)患者作為試驗隊列,通過分析其中基因DNA 拷貝數(shù)異常與預(yù)后的關(guān)系,最終確定包括IKZF1、EBF1和PAX5等20 種基因的拷貝數(shù)與預(yù)后相關(guān),識別出一群預(yù)后不良的患者,其中IKZF1基因異常出現(xiàn)頻率最高且與預(yù)后的關(guān)系最為密切。他們進(jìn)一步比較了21 位BCRABL1陽性患者和這群預(yù)后不良的BCR-ABL1陰性患者的基因表達(dá)譜,發(fā)現(xiàn)其基因表達(dá)譜高度相似。這是國際上首次報道的BCR-ABL1-like ALL 基因表達(dá)譜的特征。

荷蘭Den Boer 等為進(jìn)一步改善兒童ALL 的預(yù)后分層方法,對190 名兒童ALL 患者進(jìn)行了基因譜篩查,并且將結(jié)果在另外107 名兒童ALL 患者中進(jìn)行驗證。他們使用了110 個探針在入組患者中篩查已知的ALL 相關(guān)分子生物學(xué)異常,其中涵蓋了在超二倍體、MLL重排、TCF3(E2A) 重 排、ETV6-RUNX 1陽 性、BCR-ABL1陽 性 和T-ALL 這6 個ALL 亞型中已報道的最常見基因異常。最后,他們發(fā)現(xiàn)了有30 名不屬于上述6 種亞型的B-ALL 患者與Ph/BCR-ABL1陽性ALL 患者有著極其類似的基因表達(dá)譜,他們把這一組患者的疾病命名為BCR-ABL1-like ALL[6]。這是國際上首次報道命名BCR-ABL1-like ALL 這一亞型[3]。

2 診斷

越來越多的證據(jù)表明,在Ph/BCR-ABL1陰性的ALL中,確實存在一組基因表達(dá)譜與Ph/BCR-ABL1陽性ALL高度相似的亞型,其發(fā)病通常與IKZF1、CRLF2、JAKSTAT 通路、ABL 族酪氨酸激酶及RAS 通路等基因的異常相關(guān)[4-5,7-8]。然而目前尚無一種統(tǒng)一的方法來診斷BCRABL1-like ALL。BCR-ABL1-like ALL 是由一類特征性的基因表達(dá)譜所定義的,因為不同研究組所采用的檢測方法不同,所以各自確定的BCR-ABL1-like ALL 也不盡相同[2-3,6]。例如,在首先發(fā)現(xiàn)BCR-ABL1-like ALL 的2 個研究中,其使用的檢測方法并不相同,因而識別出的患者就存在差異。Boer 等[6]為了比較上述2 篇文獻(xiàn)中用來識別BCR-ABL1-like ALL 的方法間的差異,他們使用這2 種方法在2 個研究組的患者樣本中分別進(jìn)行檢測。在DCOG/COALL 組146 名患者中,荷蘭研究組使用的方法(層次聚類法,hierarchical clustering,簡稱HC 法)可識別出79 例BCR-ABL1-like ALL;同組患者中使用美國研究組的方法(芯片預(yù)測分析法,prediction analysis of microarray,簡稱PAM 法)只識別出33 例,其中25 例與HC 法的檢測結(jié)果重疊。而在COG P9906 組的143 例患者中,HC 法識別出43 例,PAM 法識別出40 例,其中25 例重疊。他們認(rèn)為這種差異一方面是由于2 種方法最初建立時的檢測目的不同,另一方面也與2 組患者的種族構(gòu)成不同相關(guān)。

目前,用來檢測BCR-ABL1-like ALL 的方法多樣,根據(jù)患者白血病細(xì)胞的基因表達(dá)譜(gene expression profiling,GEP)診斷BCR-ABL1-like ALL 是最可靠準(zhǔn)確的方法,可通過二代測序、全基因組測序或全轉(zhuǎn)錄組測序等方法全面分析GEP 是否符合BCR-ABL1-like ALL;亦可根據(jù)已知的BCR-ABL1-like ALL 的GEP 特點設(shè)計低密度表達(dá)譜芯片(low-density array,LDA)用以篩查患者。然而以上方法不但需要生物信息學(xué)技術(shù)的支持,而且經(jīng)濟(jì)花費高、技術(shù)難度大、檢測耗時長,并且不同的研究組對于BCR-ABL1-like ALL 的GEP 特點有著不同的定義,導(dǎo)致在臨床推廣應(yīng)用時存在困難。因此,在無條件進(jìn)行全面的GEP 檢測分析的情況下,不少中心使用熒光原位雜交(fluorescence in situ hybridization,F(xiàn)ISH)、聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)、反轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(reverse transcription polymerase chain reaction,RT-PCR) 等方法幫助臨床診斷。利用特異性探針,針對BCR-ABL1-like ALL 中常見的基因異常進(jìn)行檢測,包括CRLF2、JAK2、EPOR、ABL1、ABL2和PDGFRB等基因的重排和突變等異常。這種方法的優(yōu)點為快速方便、技術(shù)成熟,可以針對性地檢測,能夠?qū)ふ姨禺愋灾委煱悬c,有助于靶向藥物的選擇。但是其缺點是檢測范圍受限,無法發(fā)現(xiàn)新的融合基因伴侶和基因異常[4-5,9-11]。綜上,盡管檢測方法多樣,但尚無確切統(tǒng)一的診斷標(biāo)準(zhǔn)來定義BCR-ABL1-like ALL,且各種診斷方法的敏感性與準(zhǔn)確性尚需驗證,這是BCR-ABL1-like ALL 診療中所面臨的一大挑戰(zhàn)。

3 臨床特征

BCR-ABL1-like ALL 的發(fā)病率在不同性別、年齡、種族的人群中各不相同,男女患者比例約為2:1[5]。Ph/BCRABL1陽性ALL 的發(fā)病率隨年齡增長而增高,但BCRABL1-like ALL 的發(fā)病率和年齡的關(guān)系與其不同。在兒童ALL 中,BCR-ABL1-like ALL 占10%~15%;在青少年及年輕成人患者中比例最高,為25%~42%;40 歲以上發(fā)病率隨年齡增長而下降,為10%~35%[4-5,7-8,12]。有研究[5]表明,西班牙裔人群BCR-ABL1-like ALL 的發(fā)病率更高,尤其是CRLF2過表達(dá)出現(xiàn)的頻率明顯高于其他人群,這在一定程度上與西班牙裔人群的GATA3(rs3824662)突變頻率較高有關(guān)。該突變是BCR-ABL1-like ALL 發(fā)病的危險因素,同時這種種系GATA3單核苷酸多態(tài)性也與誘導(dǎo)緩解后持續(xù)存在的MRD 和復(fù)發(fā)風(fēng)險增加有關(guān)[13]。BCR-ABL1-like ALL 通常具有較高的初發(fā)外周血白細(xì)胞計數(shù)[ (17 ~109) ×109/L][4-5]。

研究顯示,BCR-ABL1-like ALL 只在B-ALL 中出現(xiàn),且BCR-ABL1-like ALL 的患者往往不會同時含有t(1;19)/TCF3-PBX1、t(4;11)/KMT2A-AFF1、t(12;21)/ETV6-RUNX1等細(xì)胞遺傳學(xué)及分子生物學(xué)異常。在BCR-ABL1-like ALL 中,最常見的基因異常有IKZF1缺失及CRLF2過表達(dá)等。文獻(xiàn)報道,在Ph 陰性ALL 中,IKZF1的功能缺失異構(gòu)體IK6及CRLF2過表達(dá)均與不良預(yù)后相關(guān)[14]。在成年患者中,IKZF1的無功能異構(gòu)體IK6陽性的患者相較于IKZF1野生型的患者具有更加不良的中位無復(fù)發(fā)生存期(relapse-free survival,RFS),CRLF2高表達(dá)患者的中位RFS 同樣低于CRLF2低表達(dá)的患者[14]。

ALL 是一種對化學(xué)治療(化療)敏感的疾病,誘導(dǎo)治療的總體完全緩解(complete remission,CR)率在90%左右。然而與其他的ALL 亞型相比,BCR-ABL1-like ALL誘導(dǎo)治療結(jié)束后的緩解率相當(dāng),但是通常會有持續(xù)陽性的MRD,復(fù)發(fā)率較高,預(yù)后不良[5]。一項成人ALL 研究[5]顯示,56 例BCR-ABL1-like ALL 患者的中位生存率(overall survival,OS)僅28.8 個月,5 年總OS 顯著低于85 例非MLL 重排、非BCR-ABL1-like ALL 患者,其中達(dá)到緩解的50 例BCR-ABL1-like ALL 患者中位緩解持續(xù)時間僅為18.9 個月,共33 人復(fù)發(fā)。進(jìn)一步研究[5]顯示,CRLF2過表達(dá)的BCR-ABL1-like ALL 與非CRLF2過表達(dá)組相比,其CR 率及MRD 未見明顯差異,然而CRLF2過表達(dá)組的中位OS、中位無事件生存期及中位緩解持續(xù)時間明顯低于非CRLF2過表達(dá)組,即CRLF過表達(dá)的BCRABL1-like ALL 更容易復(fù)發(fā)、預(yù)后更差。

4 分子生物學(xué)特點

BCR-ABL1-like ALL 發(fā)病機制和分子生物學(xué)異常異質(zhì)性極高,往往涉及不同的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路和靶點,常見高比例的IKZF1基因缺失及通常具有影響細(xì)胞因子受體和(或)激酶相關(guān)信號通路的基因異常(不包括BCR-ABL1融合基因)等??墒褂枚縋CR 或微芯片基因測序等方法檢測基因重排所致融合基因,使用單核苷酸多態(tài)性微芯片測序等方法檢測基因突變。根據(jù)這些基因異常可以將BCR-ABL1-like ALL 再進(jìn)一步細(xì)分為不同的組別,包括IKZF1基因異常、CRLF2過表達(dá)組、JAK-STAT 信號通路基因異常組、ABL族融合基因組、RAS 信號通路基因異常組、其他激酶異常組及未發(fā)現(xiàn)激酶相關(guān)基因異常組。這些基因異常對于BCR-ABL1-like ALL 的診斷、預(yù)后判斷及治療方案選擇都有著重要的意義,因此對BCR-ABL1-like ALL 分子生物學(xué)的深入研究非常重要。

4.1 IKZF1 基因異常

在BCR-ABL1-like ALL 患者中,約70%有IKZF1基因異常[4-5]。IKZF1 是IKAROS 轉(zhuǎn)錄因子家族中5 個鋅指蛋白之一,在淋巴發(fā)育中起到重要的作用,主要通過核小體重構(gòu)和去乙酰化酶復(fù)合物聯(lián)合調(diào)控基因表達(dá)[15-16]。它共包含8 個外顯子,不同部位外顯子基因缺失構(gòu)成了相應(yīng)的7 個IKZF1 異構(gòu)體(IK2 ~I(xiàn)K8)。其中,外顯子4 ~7 的缺失使蛋白的DNA 結(jié)合域完全缺失,導(dǎo)致蛋白功能喪失,該無功能異構(gòu)體稱為IK6[16]。有研究[14]證實,在Ph 陰性ALL 中,IK6 與不良預(yù)后關(guān)系密切。在B 細(xì)胞中,IKZF1缺失產(chǎn)生的生物學(xué)效應(yīng)與IL1R-JAK-STAT 通路的激活有協(xié)同作用。IKAROS 具有抑制CRLF2表達(dá)的作用,其缺失可導(dǎo)致CRLF2過表達(dá)[17]。在小鼠實驗中,CTNND1、EMP1、IFITM3等被IKAROS 抑制的基因的過表達(dá)與B-ALL 的不良預(yù)后相關(guān),表明在B-ALL 中,IKZF1基因異??蓪?dǎo)致其下游基因異常表達(dá),促進(jìn)腫瘤增殖或?qū)е录膊熌退帲瑥亩沟妙A(yù)后不良[18]。

4.2 CRLF2 過表達(dá)

導(dǎo)致CRLF2過表達(dá)的CRLF2重排或突變是BCRABL1-like ALL 中最常見的基因異常之一,該類型BCRABL1-like ALL 占全部的40%~60%[4-5]。CRLF2基因位于性染色體擬常染色體區(qū)Xp22.3/Yp11.3 位點,其編碼的CRLF2,又稱胸腺間質(zhì)淋巴細(xì)胞受體(thymic stromal lymphopoetin receptor,TSLPR)。CRLF2 與IL-7RA 聚 合形成的異源二聚體是胸腺間質(zhì)淋巴細(xì)胞生成因子(thymic stromal lymphopoietin,TSLP)的功能性受體,當(dāng)該二聚體與TSLP 結(jié)合后可激活下游信號通路,介導(dǎo)淋巴細(xì)胞生成、過敏反應(yīng)、炎癥反應(yīng)等一系列過程[19]。多數(shù)文獻(xiàn)報道可直接檢測是否存在CRLF2基因重排或突變,也有美國MD Anderson 癌癥中心的Konoplev 等[20]報道亦可使用流式細(xì)胞技術(shù)檢測白血病細(xì)胞表面TSLPR,從蛋白水平快速、廉價、可靠地檢測是否存在CRLF2過表達(dá)。

目前研究[21-22]發(fā)現(xiàn),導(dǎo)致CRLF2過表達(dá)的機制主要有3 種:①CRLF2易位至免疫球蛋白重鏈轉(zhuǎn)錄增強子(14q32.3),形 成IGH@-CRLF2重 排,在IGH增 強子的驅(qū)動下,CRLF2過表達(dá)。②性染色體偽常染色體區(qū)(Xp22.23 或Yp11.32)內(nèi)的間隙片段缺失,導(dǎo)致位于 Xp22.33 或Yp11.3 的P2RY8基因的第一個非編碼區(qū)外顯子與CRLF2的第一個外顯子融合, 從而形成P2RY8-CRLF2融合基因,P2RY8啟動子的驅(qū)動導(dǎo)致了CRLF2過表達(dá)。③CRLF2F232C 點突變,較為少見,可促使下游信號通路異常活化。CRLF2過表達(dá)后可異常激活JAK-STAT、PI3K/mTOR 等通路,進(jìn)而促使白血病的發(fā)生[19]。同時,研究發(fā)現(xiàn),CRLF2重排與IKZF1基因缺失和JAK-STAT 信號通路相關(guān)基因異常均關(guān)系密切,在CRLF2過表達(dá)的BCRABL1-like ALL 中約有84%同時含有IKZF1基因缺失,約有半數(shù)同時伴有JAK激活的基因突變[4-5,20-21,23-24]。

4.3 JAK-STAT 通路相關(guān)基因異常

在BCR-ABL1-like ALL 患者中,另有25% 的患者有JAK-STAT 通路相關(guān)基因異常[4-5],是繼CRLF2過表達(dá)BCR-ABL1-like ALL 后,較為常見的亞組。其中以JAK2和EPOR基因重排最為多見,具有重要的臨床價值。JAK2 是一種在多種細(xì)胞因子受體信號通路中必需的非受體酪氨酸激酶蛋白,在正常造血中起到重要作用。JAK2重排表達(dá)的融合蛋白可以持續(xù)磷酸化并激活STATs,導(dǎo)致JAK-STAT 信號通路的失調(diào),促使白血病的發(fā)生[25],在BCR-ABL1-like ALL 患者中約占7.5%[4]。另外,研究[4-5]報道,分別在3.9%的兒童及年輕人和5.2%的成人BCR-ABL1-like ALL 病例中發(fā)現(xiàn)EPOR基因重排,常見的EPOR相關(guān)融合基因有EPOR-IGH、EPOR-IGK、EPORLAIRl和EPOR-THADA等[26]。EPOR基因表達(dá)促紅細(xì)胞生成素受體,通過JAK2 和STAT5 調(diào)控紅細(xì)胞生成,在紅細(xì)胞的生長發(fā)育中起到不可或缺的作用,正常B 細(xì)胞中的EPOR基因不表達(dá)[27]。當(dāng)EPOR基因發(fā)生重排,表達(dá)C 端截短型EPOR,其保留了JAK-STAT 信號通路活化必需的磷酸化位點,同時丟失了EPOR 負(fù)性調(diào)節(jié)相關(guān)的結(jié)構(gòu)域,從而導(dǎo)致EPOR表達(dá)的失調(diào),異常激活JAK-STAT 通路,進(jìn)而導(dǎo)致白血病的發(fā)生[26]。

除上述基因外,在BCR-ABL1-like ALL 中還見到另一些基因的突變導(dǎo)致了JAK-STAT 信號通路的異常,包括其他JAK家族成員(JAK1/JAK3)、細(xì)胞因子受體IL7R及JAK2負(fù)調(diào)控因子LNK等的基因突變,占全部BCR-ABL1-like ALL 的7%~12%[5]。

值得注意的是,在一些JAK-STAT 通路異常激活的BCR-ABL1-like ALL 中,激酶并未異常激活,而是其他基因異常使整條通路處于異常激活的狀態(tài),這些病例中通常會發(fā)生涉及轉(zhuǎn)錄因子基因(EBF1、PAX5和ETV6)和(或)表觀遺傳調(diào)控因子(CREBBP、SETD2和ASXL1)的染色體異常。

4.4 ABL 族融合基因

含有ABL族融合基因的BCR-ABL1-like ALL 是另一個重要的亞群,包括ABL1、ABL2、PDGFRA、PDGFRB、CSF1R和LYN等ABL族基因的重排,約占全部BCRABL1-like ALL 的10%[4-5]。這些融合基因所表達(dá)的融合蛋白在結(jié)構(gòu)上與BCR-ABL1 相似,能夠被ABL1 抑制劑伊馬替尼和(或)ABL/SRC 雙抑制劑達(dá)沙替尼等酪氨酸激酶抑制劑(tyrosine kinase inhibitors,TKIs)所抑制,所以被統(tǒng)稱為“ABL族”[24]。野生型ABL族基因均表達(dá)不同的蛋白酪氨酸激酶(protein tyrosine kinase,PTK),能催化ATP 上的磷酸基轉(zhuǎn)移到下游蛋白質(zhì)酪氨酸殘基上,使其殘基磷酸化,從而激活各種底物酶,通過一系列反應(yīng)影響細(xì)胞的生長、增殖和分化,在生理條件下有一系列上游信號通路嚴(yán)密調(diào)控PTK 的激活[28]。而ABL族融合基因表達(dá)的融合蛋白通常保留了PTK 的激酶結(jié)構(gòu)域,由于失去生理調(diào)控,能夠持續(xù)激活,從而賦予細(xì)胞持續(xù)異常增殖的 能力[29]。

4.5 RAS 信號通路相關(guān)基因突變

約5%的BCR-ABL1-like ALL,含有RAS 通路相關(guān)基因(包括KRAS、NRAS、PTPN11、NF1和BRAF等)的突變,不涉及其他通路異常。但由于該類基因突變也會同時存在于上述CRLF2過表達(dá)、JAK-STAT 信號通路基因異常和ABL族融合基因3 類BCR-ABL1-like ALL 中,有文獻(xiàn)[4-5]報道其在BCR-ABL1-like 中的總發(fā)生率可達(dá)40%左右。RAS 通路相關(guān)基因突變也存在于其他ALL 亞型中,如超 二 倍 體ALL、MLL重 排ALL、BCR-ABL1陽 性ALL等[24]。RAS表達(dá)的RAS 蛋白是受體酪氨酸激酶(receptor tyrosine kinase,RTK)的下游蛋白,生理情況下,其受到RTK 的調(diào)控,參與細(xì)胞的生長、分化、蛋白質(zhì)運輸和分泌等一系列生理反應(yīng)[30]。而突變的Ras 蛋白可持續(xù)活化,造成下游Ras-Raf-MEK-ERK 通路過度激活,從而導(dǎo)致細(xì)胞的過度增殖與腫瘤的發(fā)生[30-31]。

4.6 其他激酶異常

其他罕見的激酶相關(guān)基因異常包括NTRK3、BLNK、DGKH、PTK2B、FLT3和FGFR1等, 約 占BCR-ABL1-like ALL 的5%[4-5]。

還有約5%的BCR-ABL1-like ALL,使用目前的方法進(jìn)行基因組分析,未能發(fā)現(xiàn)與激酶激活相關(guān)的基因異常[4-5]。

5 治療

BCR-ABL1-like ALL 是近10 年新發(fā)現(xiàn)的一類高危、預(yù)后不良的ALL,單一使用常規(guī)化療很難取得理想的療效,如何提高對BCR-ABL1-like ALL 的療效是當(dāng)下受到關(guān)注的重要問題之一。目前臨床上主要的治療手段為化療、靶向治療、細(xì)胞免疫治療及異基因造血干細(xì)胞移植等。

5.1 化療

BCR-ABL1-like ALL 預(yù)后不佳,對目前常規(guī)聯(lián)合化療中普遍應(yīng)用的柔紅霉素、門冬酰胺酶及糖皮質(zhì)激素等藥物均有較高的耐藥率,誘導(dǎo)化療后緩解持續(xù)時間短,通常MRD 陽性且持續(xù)存在,復(fù)發(fā)率高[3-5,7,32]。因此,對于BCR-ABL1-like ALL 患者,在常規(guī)化療基礎(chǔ)上,聯(lián)合其他先進(jìn)治療手段是提高療效的必要途徑。

5.2 靶向治療

在對BCR-ABL1-like ALL 基因組的不斷研究中,一系列可作為潛在治療靶點的激酶相關(guān)基因異常被發(fā)現(xiàn)。雖然其遺傳學(xué)特點復(fù)雜多樣,但是大部分BCR-ABL1-like ALL都含有涉及CRLF2、JAK-STAT 通路、ABL 激酶或RAS通路的基因異常,可作為治療靶點。目前,已有相關(guān)體外及動物實驗提供了靶向藥物對治療BCR-ABL1-like ALL 有效的證據(jù),亦有臨床病例報道BCR-ABL1-like ALL 的患者在接受了靶向治療后療效良好[24,26,29,33-35]。

CRLF2過表達(dá)、JAK2基因重排、EPOR基因重排及其他JAK-STAT 通路相關(guān)基因異常均可導(dǎo)致JAK-STAT 通路的異常激活,并可被蘆可替尼等JAK 抑制劑所抑制[24,26,33-35]; 影響JAK2 激酶結(jié)構(gòu)域的G935R、Y931C 和E864K 位點基因突變可使疾病產(chǎn)生對JAK2 抑制劑的耐藥性,而JAK2作為熱休克蛋白90(heat shock protein 90,HSP90)的“客戶”蛋白,HSP90 的抑制可導(dǎo)致野生型和突變的JAK2 降解,因而對JAK2 耐藥的突變?nèi)詫SP90 抑制劑敏感,用人CRLF2過表達(dá)ALL 細(xì)胞構(gòu)建小鼠PDX 模型中,HSP90抑制劑的療效更優(yōu)于JAK 抑制劑[36],但目前尚缺乏HSP90抑制劑在BCR-ABL1-like ALL 患者中的臨床應(yīng)用結(jié)果。

含有ABL類融合基因(ABL1、ABL2、PDGFRA、PDGFRB和CSF1R等基因的重排)的BCR-ABL1-like ALL 患者對伊馬替尼、達(dá)沙替尼等TKIs 敏感[24,35,37-39],其中PDGFRB基因重排的BCR-ABL1-like ALL 患者也被報道對MEK 抑制劑敏感[29];但是,與Ph/BCR-ABL1陽性ALL 相似,這一類BCR-ABL1-like ALL 患者中ABL族基因突變同樣可導(dǎo)致其對部分甚至全部TKIs 耐藥,需根據(jù)突變的基因調(diào)整TKIs 治療[40-41]。

雖然直接抑制RAS 通路的基因突變?nèi)匀痪哂刑魬?zhàn)性,但靶向RAS 通路下游效應(yīng)物(如MEK)已顯示出顯著的效果,或可作為RAS 通路異常激活的BCR-ABL1-like ALL的治療選擇[31]。

在小鼠試驗中,PI3K/mTOR 抑制劑可有效治療CRLF2過表達(dá)、JAK-STAT 通路基因異常及ABL族基因重排的BCR-ABL1-like ALL,當(dāng)其與JAK 抑制劑聯(lián)用治療CRLF2/JAK突變的BCR-ABL1-like ALL 及與ABL 抑制劑聯(lián)用治療ABL族基因重排的BCR-ABL1-like ALL 時療效更佳[35]。

除直接針對基因異常靶點從而殺傷白血病細(xì)胞外,目前許多研究表明,一些靶向藥物還可以通過與常規(guī)化療或其他靶向藥物聯(lián)合應(yīng)用以增強其療效或降低耐藥性等治療BCR-ABL1-like ALL:① 體外實驗證實,凋亡調(diào)節(jié)因子的小分子模擬劑birinapant 對B-ALL 具有強選擇性細(xì)胞毒作用,其作用在BCR-ABL1-like ALL 中尤為顯著;并且當(dāng)其與常規(guī)誘導(dǎo)化療聯(lián)用時,可表現(xiàn)出明顯的協(xié)同作用,增強常規(guī)化療的效果[42]。②有研究[32]表明,存在CRLF2重排的BCR-ABL1-like ALL 對糖皮質(zhì)激素耐藥率高,而在PDX細(xì)胞實驗中,MEK 或Akt 抑制劑的聯(lián)合使用可克服這一情況。③HDAC 抑制劑在BCR-ABL1-like ALL 細(xì)胞系及小鼠PDX 模型中均表現(xiàn)出增強常規(guī)化療效果的作用,同時其還可抑制CRLF2 激活的JAK-STAT 通路,促進(jìn)白血病細(xì)胞凋亡,對JAK2 抑制劑耐藥的白血病細(xì)胞也存在有效的殺傷作用[43]。④在ABL 族基因重排的BCR-ABL1-like ALL 細(xì)胞系及PDX 小鼠模型中證實,mTOR 抑制劑與達(dá)沙替尼聯(lián)用可增強后者的療效[44]。

然而,有研究表明,在BCR-ABL1-like ALL 的維持治療中,PI3K/mTOR 的抑制可導(dǎo)致疾病對MTX 和6-MP 這2 種維持治療期的主要化療藥物耐藥,提示在臨床中當(dāng)與細(xì)胞周期特異性化療藥物聯(lián)用時,應(yīng)用mTOR 抑制劑或靶向mTOR 上游信號通路的藥物時應(yīng)慎重[45]。

5.3 細(xì)胞免疫治療

目前在復(fù)發(fā)難治 B-ALL 中廣泛應(yīng)用的細(xì)胞免疫治療主要包括抗體治療和嵌合抗原受體(chimeric antigen receptor,CAR) -T 細(xì)胞治療2 類[46]。抗體治療是靶向白血病細(xì)胞上表達(dá)的特異性抗原,通過內(nèi)化偶聯(lián)毒素、激活補體、直接的細(xì)胞毒作用和患者T 細(xì)胞的募集等機制消滅白血病細(xì)胞[46]。包括抗CD20、CD22 等表面抗原的單克隆抗體及可以同時募集T 細(xì)胞的CD19 和CD3 雙特異性抗體等[46]。CAR-T 細(xì)胞治療是指通過白細(xì)胞分離獲得患者的T 細(xì)胞,然后通過插入必要的遺傳信息來調(diào)控這些T 細(xì)胞以表達(dá)識別白血病細(xì)胞的靶向蛋白復(fù)合物,使其回輸至患者體內(nèi)后攻擊白血病細(xì)胞[46]。目前在B-ALL 中主要應(yīng)用的有CD19-CAR-T、CD22-CAR-T 等[46]。同時,專門針對BCR-ABL1-like ALL 的細(xì)胞免疫治療也在研究中,例如TSLPR CAR-T 細(xì)胞治療CRLF2重排ALL 在體外實驗及PDX 小鼠模型中證實有效,在臨床中相關(guān)治療尚未開展,有待進(jìn)一步研究[47]。

5.4 異基因造血干細(xì)胞移植

異基因造血干細(xì)胞移植(allogeneic hematopoietic stem cell transplantation,allo-HSCT)是ALL 治療中重要的一部分[48]。NCCN 指南建議所有有條件移植的具有高危因素的ALL 患者在第一次緩解后應(yīng)進(jìn)行allo-HSCT。對于復(fù)發(fā)難治ALL,allo-HSCT 是唯一能夠治愈的方法,是目前臨床上對該病常規(guī)應(yīng)用的治療手段[48]。雖然目前尚無大量臨床資料明確證實異基因造血干細(xì)胞移植在BCR-ABL1-like ALL 中的療效,但是BCR-ABL1-like ALL 預(yù)后不良,MRD 持續(xù)陽性,復(fù)發(fā)率高,因此BCR-ABL1-like ALL 患者在第一次完全緩解后,尤其是MRD 陰性后,應(yīng)盡早進(jìn)行allo-HSCT,以提高長期生存率[48-50]。

6 總結(jié)

BCR-ABL1-like ALL 是近10 年來新定義的一組基因表達(dá)譜與Ph/BCR-ABL1陽性ALL 高度相似但Ph/BCR-ABL1陰性的ALL 亞型,預(yù)后不良。由于其定義的特殊性,即由一種基因表達(dá)譜規(guī)律而并非某種特定的基因或染色體異常所定義,目前尚無能迅速有效應(yīng)用在臨床中的統(tǒng)一的診斷標(biāo)準(zhǔn)和檢測方法。這是目前診療中的一大難點,因此,建立一種臨床上可行的、準(zhǔn)確的診斷標(biāo)準(zhǔn)是目前亟待解決的問題。

BCR-ABL1-like ALL 細(xì)胞遺傳學(xué)及分子生物學(xué)表現(xiàn)多樣,影響細(xì)胞因子受體和激酶信號通路的基因異常為主要特征。體內(nèi)外試驗及臨床結(jié)果表明,BCR-ABL1-like ALL對靶向治療敏感。在化療的基礎(chǔ)上,根據(jù)其細(xì)胞因子受體和激酶相關(guān)信號通路的異常,可針對性地選用靶向治療和細(xì)胞免疫治療,制定個體化的治療方案,一旦患者獲得緩解,MRD 陰性,盡早行allo-HSCT,從而改善疾病的預(yù)后,延長患者的生存期。

參·考·文·獻(xiàn)

[1] Arber DA, Orazi A, Hasserjian R, et al. The 2016 revision to the World Health Organization classification of myeloid neoplasms and acute leukemia[J]. Blood, 2016, 128(3): 462-463.

[2] Mullighan CG, Su XP, Zhang JH, et al. Deletion of IKZF1 and prognosis in acute lymphoblastic leukemia[J]. N Engl J Med, 2009, 360(5): 470-480.

[3] Den Boer ML, van Slegtenhorst M, De Menezes RX, et al. A subtype of childhood acute lymphoblastic leukaemia with poor treatment outcome: a genome-wide classification study[J]. Lancet Oncol, 2009, 10(2): 125-134.

[4] Roberts KG, Gu ZH, Payne-Turner D, et al. High frequency and poor outcome of Philadelphia chromosome-like acute lymphoblastic leukemia in adults[J]. J Clin Oncol, 2017, 35(4): 394-401.

[5] Jain N, Roberts KG, Jabbour E, et al. pH-like acute lymphoblastic leukemia: a high-risk subtype in adults[J]. Blood, 2017, 129(5): 572-581.

[6] Boer JM, Marchante JR, Evans WE, et al. BCR-ABL1-like cases in pediatric acute lymphoblastic leukemia: a comparison between DCOG/Erasmus MC and COG/St. Jude signatures[J]. Haematologica, 2015, 100(9): e354-e357.

[7] Boer JM, Koenders JE, van der Holt B, et al. Expression profiling of adult acute lymphoblastic leukemia identifies a BCR-ABL1-like subgroup characterized by high non-response and relapse rates[J]. Haematologica, 2015, 100(7): e261-e264.

[8] Tasian SK, Hurtz C, Wertheim GB, et al. High incidence of Philadelphia chromosome-like acute lymphoblastic leukemia in older adults with B-ALL[J]. Leukemia, 2017, 31(4): 981-984.

[9] Yap KL, Furtado LV, Kiyotani K, et al. Diagnostic evaluation of RNA sequencing for the detection of genetic abnormalities associated with Ph-like acute lymphoblastic leukemia (ALL)[J]. Leuk Lymphoma, 2017, 58(4): 950-958.

[10] Chiaretti S, Messina M, Grammatico S, et al. Rapid identification of BCR/ABL1-like acute lymphoblastic leukaemia patients using a predictive statistical model based on quantitative real time-polymerase chain reaction: clinical, prognostic and therapeutic implications[J]. Br J Haematol, 2018, 181(5): 642-652.

[11] Siegele BJ, Nardi V. Laboratory testing in BCR-ABL1-like (Philadelphia-like) B-lymphoblastic leukemia/lymphoma[J]. Am J Hematol, 2018, 93(7): 971-977.

[12] Herold T, Schneider S, Metzeler KH, et al. Adults with Philadelphia chromosome-like acute lymphoblastic leukemia frequently have IGH-CRLF2 and JAK2 mutations, persistence of minimal residual disease and poor prognosis[J]. Haematologica, 2017, 102(1): 130-138.

[13] Perez-Andreu V, Roberts KG, Xu H, et al. A genome-wide association study of susceptibility to acute lymphoblastic leukemia in adolescents and young adults[J]. Blood, 2015, 125(4): 680-686.

[14] Mi JQ, Wang X, Yao Y, et al. Newly diagnosed acute lymphoblastic leukemia in China ( Ⅱ): prognosis related to genetic abnormalities in a series of 1 091 cases[J]. Leukemia, 2012, 26(7): 1507-1516.

[15] Churchman ML, Mullighan CG. Ikaros: exploiting and targeting the hematopoietic stem cell niche in B-progenitor acute lymphoblastic leukemia[J]. Exp Hematol, 2017, 46: 1-8.

[16] Marke R, van Leeuwen FN, Scheijen B. The many faces of IKZF1 in B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia[J]. Haematologica, 2018, 103(4): 565-574.

[17] Ge Z, Gu Y, Zhao G, et al. High CRLF2 expression associates with IKZF1 dysfunction in adult acute lymphoblastic leukemia without CRLF2 rearrangement[J]. Oncotarget, 2016, 7(31): 49722-49732.

[18] Witkowski MT, Hu YF, Roberts KG, et al. Conserved IKAROS-regulated genes associated with B-progenitor acute lymphoblastic leukemia outcome[J]. J Exp Med, 2017, 214(3): 773-791.

[19] Tasian SK, Doral MY, Borowitz MJ, et al. Aberrant STAT5 and PI3K/mTOR pathway signaling occurs in human CRLF2-rearranged B-precursor acute lymphoblastic leukemia[J]. Blood, 2012, 120(4): 833-842.

[20] Konoplev S, Lu XY, Konopleva M, et al. CRLF2-positive B-cell acute lymphoblastic leukemia in adult patients: a single-institution experience[J]. Am J Clin Pathol, 2017, 147(4): 357-363.

[21] Russell LJ, Jones L, Enshaei A, et al. Characterisation of the genomic landscape of CRLF2-rearranged acute lymphoblastic leukemia[J]. Genes Chromosomes Cancer, 2017, 56(5): 363-372.

[22] Roberts KG, Mullighan CG. Genomics in acute lymphoblastic leukaemia: insights and treatment implications[J]. Nat Rev Clin Oncol, 2015, 12(6): 344-357.

[23] Sadras T, Heatley SL, Kok CH, et al. Differential expression of MUC4, GPR110 and IL2RA defines two groups of CRLF2-rearranged acute lymphoblastic leukemia patients with distinct secondary lesions[J]. Cancer Lett, 2017, 408: 92-101.

[24] Roberts KG, Morin RD, Zhang JH, et al. Genetic alterations activating kinase and cytokine receptor signaling in high-risk acute lymphoblastic leukemia[J]. Cancer Cell, 2012, 22(2): 153-166.

[25] Schinnerl D, Fortschegger K, Kauer M, et al. The role of the Janus-faced transcription factor PAX5-JAK2 in acute lymphoblastic leukemia[J]. Blood, 2015, 125(8): 1282-1291.

[26] Iacobucci I, Li YJ, Roberts KG, et al. Truncating erythropoietin receptor rearrangements in acute lymphoblastic leukemia[J]. Cancer Cell, 2016, 29(2): 186-200.

[27] Watowich SS. The erythropoietin receptor: molecular structure and hematopoietic signaling pathways[J]. J Investig Med, 2011, 59(7): 1067- 1072.

[28] Hubbard SR, Till JH. Protein tyrosine kinase structure and function[J]. Annu Rev Biochem, 2000, 69: 373-398.

[29] Ishibashi T, Yaguchi A, Terada K, et al. Ph-like ALL-related novel fusion kinase ATF7IP-PDGFRB exhibits high sensitivity to tyrosine kinase inhibitors in murine cells[J]. Exp Hematol, 2016, 44(3): 177-188.e5.

[30] Asati V, Mahapatra DK, Bharti SK. PI3K/Akt/mTOR and Ras/Raf/MEK/ERK signaling pathways inhibitors as anticancer agents: Structural and pharmacological perspectives[J]. Eur J Med Chem, 2016, 109: 314-341.

[31] Jerchel IS, Hoogkamer AQ, Ari?s IM, et al. RAS pathway mutations as a predictive biomarker for treatment adaptation in pediatric B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia[J]. Leukemia, 2018, 32(4): 931-940.

[32] Meyer LK, Delgado-Martin C, Maude SL, et al. CRLF2 rearrangement in Phlike acute lymphoblastic leukemia predicts relative glucocorticoid resistance that is overcome with MEK or Akt inhibition[J]. PLoS One, 2019, 14(7): e0220026.

[33] Wu SC, Li LS, Kopp N, et al. Activity of the type Ⅱ JAK2 inhibitor CHZ868 in B cell acute lymphoblastic leukemia[J]. Cancer Cell, 2015, 28(1): 29-41.

[34] Ding YY, Stern JW, Jubelirer TF, et al. Clinical efficacy of ruxolitinib and chemotherapy in a child with Philadelphia chromosome-like acute lymphoblastic leukemia with GOLGA5-JAK2 fusion and induction failure[J]. Haematologica, 2018, 103(9): e427-e431.

[35] Tasian SK, Teachey DT, Li Y, et al. Potent efficacy of combined PI3K/mTOR and JAK or ABL inhibition in murine xenograft models of Ph-like acute lymphoblastic leukemia[J]. Blood, 2017, 129(2): 177-187.

[36] Weigert O, Lane AA, Bird L, et al. Genetic resistance to JAK2 enzymatic inhibitors is overcome by HSP90 inhibition[J]. J Exp Med, 2012, 209(2): 259-273.

[37] Duployez N, Grzych G, Ducourneau B, et al. NUP214-ABL1 fusion defines a rare subtype of B-cell precursor acute lymphoblastic leukemia that could benefit from tyrosine kinase inhibitors[J]. Haematologica, 2016, 101(4): e133-e134.

[38] Roberts KG, Yang YL, Payne-Turner D, et al. Oncogenic role and therapeutic targeting of ABL-class and JAK-STAT activating kinase alterations in Ph-like ALL[J]. Blood Adv, 2017, 1(20): 1657-1671.

[39] Piekarska A, Sadowska-Klasa A, Libura M, et al. Successful use of nilotinib in the therapy of a patient with a chemoresistant relapse of BCR-ABL1-like phenotype acute lymphoblastic leukemia[J]. Oncol Res Treat, 2018, 41(9): 550-553.

[40] Zhang YC, Gao YF, Zhang H, et al. PDGFRB mutation and tyrosine kinase inhibitor resistance in Ph-like acute lymphoblastic leukemia[J]. Blood, 2018, 131(20): 2256-2261.

[41] Yeung DT, Moulton DJ, Heatley SL, et al. Relapse of BCR-ABL1-like ALL mediated by the ABL1 kinase domain mutation T315I following initial response to dasatinib treatment[J]. Leukemia, 2015, 29(1): 230-232.

[42] Richmond J, Robbins A, Evans K, et al. Acute sensitivity of ph-like acute lymphoblastic leukemia to the SMAC-mimetic birinapant[J]. Cancer Res, 2016, 76(15): 4579-4591.

[43] Savino AM, Sarno J, Trentin L, et al. The histone deacetylase inhibitor givinostat (ITF2357) exhibits potent anti-tumor activity against CRLF2-rearranged BCP-ALL[J]. Leukemia, 2017, 31(11): 2365-2375.

[44] Gotesman M, Vo TT, Herzog LO, et al. mTOR inhibition enhances efficacy of dasatinib in ABL-rearranged Ph-like B-ALL[J]. Oncotarget, 2018, 9(5): 6562-6571.

[45] Vo TT, Lee JS, Nguyen D, et al. mTORC1 inhibition induces resistance to methotrexate and 6-mercaptopurine in Ph+and Ph-like B-ALL[J]. Mol Cancer Ther, 2017, 16(9): 1942-1953.

[46] Papadantonakis N, Advani AS. Recent advances and novel treatment paradigms in acute lymphocytic leukemia[J]. Ther Adv Hematol, 2016, 7(5): 252-269.

[47] Erratum: Qin H, Cho M, Haso W, et al. Eradication of B-ALL using chimeric antigen receptor-expressing T cells targeting the TSLPR oncoprotein[J]. Blood, 2016, 128(10): 1441.

[48] Saadeh SS, Litzow MR. Hematopoietic stem cell transplant in adults with acute lymphoblastic leukemia: the present state[J]. Expert Rev Hematol, 2018, 11(3): 195-207.

[49] Aldoss I, Kamal MO, Forman SJ, et al. Adults with Philadelphia chromosomelike acute lymphoblastic leukemia: considerations for allogeneic hematopoietic cell transplantation in first complete remission[J]. Biol Blood Marrow Transplant, 2019, 25(2): e41-e45.

[50] Inbar T, Rowe JM, Horowitz NA. Which patients should I transplant with acute lymphoblastic leukemia?[J]. Best Pract Res Clin Haematol, 2017, 30(3): 249-260.

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