張維 任錦麗 楊嬌 廖章伊 張雅琴
摘要:目的:探討燕麥β葡聚糖(oat βglucan,OG)對糖尿病大鼠腎功能及腸道菌群的影響。方法:采用單側(cè)腎切除+鏈脲佐菌素(65mg/kg·BW)一次性腹腔注射方式構(gòu)建糖尿病腎?。╠iabetes nephropathy,DN)大鼠模型,將造模成功32只SD雄性大鼠隨機(jī)分為4組:模型對照組(蒸餾水灌胃)和低、中、高燕麥β葡聚糖干預(yù)組(分別用0275、055、11g/kg·BW燕麥β葡聚糖灌胃),每組8只。另取16只大鼠行假手術(shù)并隨機(jī)分組:正常對照組(蒸餾水灌胃)和燕麥β葡聚糖對照組(055g/kg·BW 燕麥β葡聚糖灌胃)。飼養(yǎng)8周,在第8周末采集血液、尿液和糞便,進(jìn)行血糖、腎功能檢測,用HE染色進(jìn)行腎臟形態(tài)學(xué)觀察,16S rDNA檢測分析腸道菌群多樣性。結(jié)果:高劑量燕麥β葡聚糖能顯著降低DN大鼠血糖(P<005),低、中劑量燕麥β葡聚糖能顯著降低DN大鼠血尿素氮、肌酐;中、高劑量燕麥β葡聚糖能降低DN大鼠的尿酸/肌酐比值(P<005);高劑量燕麥β葡聚糖對DN大鼠的腎小球系膜基質(zhì)增生和基底膜增厚,腎小管上皮細(xì)胞腫脹變形、脫落,系膜細(xì)胞增生有顯著改善作用;高劑量燕麥β葡聚糖能顯著升高DN大鼠腸道菌群豐度和多樣性、厚壁菌門/擬桿菌門的比值(P<005)。結(jié)論:燕麥β葡聚糖能改善糖尿病大鼠腎功能,增加腸道菌群豐度和多樣性及升高厚壁菌門/擬桿菌門的比值,這可能是其延緩DN的機(jī)制之一。
關(guān)鍵詞:燕麥β葡聚糖;糖尿病腎病;腸道菌群
糖尿病腎?。╠iabetic nephropathy,DN)是糖尿病最主要的并發(fā)癥之一,是導(dǎo)致糖尿病患者死亡的主要病因之一[1]。研究證實(shí),燕麥的主要功能成分是β葡聚糖,燕麥β葡聚糖(oat βglucan,OG)是一種水溶性膳食纖維,主要存在于燕麥胚乳和糊粉層細(xì)胞壁中,由β(1,3)和β(1,4)糖苷鍵連接形成一種不可消化的βD葡聚糖,而這一特殊結(jié)構(gòu)使得燕麥β葡聚糖具有降低血糖、調(diào)節(jié)腸道菌群的作用[25]。近年來,DN與腸道菌群的相關(guān)性引起了科學(xué)界的關(guān)注,腸道菌群的變化與DN的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)[68]。因此,我們推測改善腸道菌群是從源頭上減少DN的發(fā)生的一個重要環(huán)節(jié),本研究建立DN大鼠模型,觀察燕麥β葡聚糖對糖尿病大鼠腎功能及其腸道菌群的影響。
1材料與方法
11實(shí)驗(yàn)動物及受試物
56只雄性SD大鼠,體重(200±20)g,由北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部實(shí)驗(yàn)動物中心提供。飼養(yǎng)于SPF級動物室,溫度20~26℃,相對濕度40%~70%,動物自由進(jìn)食與飲水,基礎(chǔ)飼料為(American Institute of Nutrition1993 Maintenance),AIN93M配方。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后開始實(shí)驗(yàn),本項目經(jīng)北京大學(xué)生物醫(yī)學(xué)動物倫理委員會審查通過。燕麥β葡聚糖(陜西森弗天然制品有限公司)純度70%,HPLC級。
12糖尿病腎病大鼠模型建立與分組
選擇40只大鼠行左側(cè)腎切除術(shù),術(shù)后一次性腹腔注射65mg/kg鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)(001mol/L pH 45檸檬酸鈉檸檬酸緩沖液配制)。尾靜脈采血檢測血糖水平,7d后空腹血糖>111mmol/L確定DN模型成功。造模成功的32只DN大鼠,隨機(jī)分為4組:模型對照組(蒸餾水灌胃)和低、中、高燕麥β葡聚糖干預(yù)組(分別用0275、055、11g/kg·BW燕麥β葡聚糖灌胃),每組8只。另取16只大鼠行假手術(shù)并隨機(jī)分組:正常對照組(蒸餾水灌胃)和燕麥β葡聚糖對照組(055g/kg·BW 燕麥β葡聚糖灌胃)。飼養(yǎng)8周,實(shí)驗(yàn)結(jié)束后采集血清、尿液及新鮮糞便,股動脈采血(禁食12h)后處死大鼠,迅速取出右側(cè)腎臟轉(zhuǎn)入凍存管,-80℃下保存待測。
13檢測指標(biāo)
(1)體重、進(jìn)食量監(jiān)測:每周進(jìn)行體重、進(jìn)食量監(jiān)測。(2)血糖及腎功能指標(biāo)檢測:采用全自動生化分析儀檢測大鼠血糖、血清尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)、尿酸(uric acid,UA)、肌酐(creatinine,CR)的含量。(3)腎臟形態(tài)學(xué)檢測:以10%多聚甲醛固定腎臟組織,將組織脫水、透明、浸蠟,包埋后切片,切片厚度為4μm,進(jìn)行蘇木精伊紅(hematoxylineosin,HE)染色,用顯微鏡觀察組織形態(tài)。(4)16S rDNA腸道菌群測序:利用Thermo NanoDrop 2000紫外微量分光光度計和1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行總DNA質(zhì)檢,具體步驟按照說明書操作,所提取的DNA于-80℃保存。前引物序列:CCTACGGGRSGCAGCAG;后引物序列:GGACTACVVGGGTATCTAATC。將得到的PCR產(chǎn)物構(gòu)建測序文庫,采用Illumina Miseq 平臺測序,對高質(zhì)量測序數(shù)據(jù)進(jìn)行生物信息學(xué)分析,該部分由上海銳翌生物科技有限公司完成。
14統(tǒng)計分析
采用SPSS 200統(tǒng)計學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,連續(xù)變量均以±s表示,組間比較采用單因素方差分析,P<005為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2結(jié)果與分析
21大鼠進(jìn)食量變化情況
實(shí)驗(yàn)第0周,正常對照組進(jìn)食量[(1134±2258)g]與燕麥β葡聚糖對照組進(jìn)食量[(11517±1942)g]無顯著差異,模型對照組[(18058±2217)g]與低[(17565±2044)g]、中[(17914±2474)g]、高[(1709±1168)g]燕麥β葡聚糖干預(yù)組進(jìn)食量無顯著差異。隨著實(shí)驗(yàn)進(jìn)展,各組大鼠的進(jìn)食量都增加。但正常對照組,燕麥β葡聚糖對照組,低、中燕麥β葡聚糖干預(yù)組進(jìn)食量增加不明顯(P>005),模型對照組、高劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組進(jìn)食量顯著增加(P<005),且3個燕麥β葡聚糖干預(yù)組進(jìn)食量均低于模型對照組(P<005)(圖1)。
22大鼠體重變化情況
實(shí)驗(yàn)第0周,正常對照組體重[(33035±2676)g]與燕麥β葡聚糖對照組體重[(34261±1985)g]無顯著差異。模型對照組[(22530±2432)g]與低[(20760±2629)g]、中[(24121±1916)g]、高[(23120±2665)g]燕麥β葡聚糖干預(yù)組體重?zé)o統(tǒng)計學(xué)差異。干預(yù)第8周,正常對照組與燕麥β葡聚糖對照組體重均上升,但兩組體重上升趨勢相似,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>005);模型對照組、3個燕麥β葡聚干預(yù)組的體重均下降,各組體重下降趨勢相似,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>005)(圖2)。
23燕麥β葡聚糖對大鼠血糖的影響
干預(yù)第8周,與正常對照組相比,模型對照組血糖升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<005);與模型對照組相比,3個燕麥β葡聚糖干預(yù)組血糖均下降,且高劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組血糖顯著下降(P<005)(表1)。
24燕麥β葡聚糖對大鼠腎功能的影響
干預(yù)第8周,與正常對照組相比,模型對照組的BUN、CR、UA、尿酸/肌酐均顯著升高(P<005);與模型對照組相比,低、中劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組BUN、CR顯著下降(P<005);中、高劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組尿酸/肌酐比值顯著下降(P<001);燕麥β葡聚糖干預(yù)組對UA無影響(P>005)(表2)。
25燕麥β葡聚糖對大鼠腎臟結(jié)構(gòu)的影響
干預(yù)第8周,與正常對照組相比,模型對照組腎小球系膜基質(zhì)增生和基底膜增厚,腎小管上皮細(xì)胞腫脹變形、脫落,細(xì)胞增生,可見輕度玻璃樣改變(圖3C);與模型對照組相比,燕麥β葡聚糖干預(yù)組腎小球系膜基質(zhì)增生和基底膜增厚,腎小管上皮細(xì)胞腫脹變形、脫落,系膜細(xì)胞增生均有改善,高劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組改善最明顯,與正常對照組的腎小球系膜基質(zhì)、腎小管上皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)相近(圖3F),但低劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組仍有輕度玻璃樣改變(圖3D)。
26腸道菌群多樣性分析
干預(yù)第8周,與正常對照組相比,模型對照組腸道菌群豐度和多樣性指數(shù)Chao1和Shannon顯著降低(P<005);與模型對照組相比,3個燕麥β葡聚糖干預(yù)組腸道菌群豐度指數(shù)Chao1均升高,且高劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組Chao1指數(shù)顯著升高(P<005);低、中、高劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組多樣性指數(shù)Shannon均升高,且低、中劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組顯著升高(P<005)(表3)。
27菌落的群落結(jié)構(gòu)
干預(yù)第8周,在門水平上(圖4A),與正常對照組相比,模型對照組的厚壁菌門豐度顯著下降、擬桿菌門豐度顯著升高、厚壁菌門/擬桿菌門比值顯著下降(P<005);燕麥β葡聚糖干預(yù)組與模型對照組相比,擬桿菌門豐度均降低、厚壁菌門的豐度和厚壁菌門/擬桿菌門比值均升高,低劑量燕麥β葡聚糖干預(yù)組擬桿菌門豐度顯著下降(P<005)、厚壁菌門豐度顯著升高及厚壁菌門/擬桿菌門比值顯著升高(P<005)。在屬水平上(圖4B),與正常對照組相比,模型對照組Prevotella(普氏菌屬)、Ruminococcus(瘤胃球菌屬)豐度顯著升高(P<005),
3討論
本研究通過單側(cè)腎切除+鏈脲佐菌素(65mg/kg·BW)一次性腹腔注射方式構(gòu)建DN大鼠模型,因其方法簡便易行,對胰島β細(xì)胞損傷特異性高,且死亡率較低而成為當(dāng)前最常見的DN大鼠的造模方式。當(dāng)前研究結(jié)果顯示,單側(cè)腎切除+鏈脲佐菌素(65mg/kg·BW)一次性腹腔注射之后大鼠BUN、CR、UA、尿酸/肌酐比值均升高;HE染色可見大鼠腎小球系膜基質(zhì)增生和基底膜增厚,腎小管上皮細(xì)胞腫脹變形、脫落,系膜細(xì)胞增生;腸道菌群豐度和多樣性均降低,擬桿菌門豐度升高、厚壁菌門豐度及厚壁菌門/擬桿菌門比值均下降,而正常對照組以上指標(biāo)均無明顯變化。以上說明,在當(dāng)前研究中單側(cè)腎切除+鏈脲佐菌素(65mg/kg·BW)一次性腹腔注射方式成功構(gòu)建了DN大鼠模型。本研究還發(fā)現(xiàn),經(jīng)燕麥β葡聚糖干預(yù)后的DN大鼠血清中的尿素氮、CR、尿酸/肌酐與未處理的DN大鼠相比有顯著差異;DN大鼠的腎小球、腎小管出現(xiàn)明顯的病理學(xué)變化;腸道菌群豐度和多樣性升高,擬桿菌門豐度下降、厚壁菌門豐度以及厚壁菌門/擬桿菌門比值升高。以上說明,燕麥β葡聚糖對DN大鼠有積極的治療作用。
本研究結(jié)果顯示,燕麥β葡聚糖干預(yù)組血糖、BUN、CR含量及尿酸/肌酐比值均低于模型對照組中的含量且改善了DN引起的腎小球系膜基質(zhì)增生和基底膜增厚,腎小管上皮細(xì)胞腫脹變形、脫落,系膜細(xì)胞增生的情況。這說明燕麥β葡聚糖對DN具有保護(hù)作用。這與我們之前的研究結(jié)果一致,即燕麥β葡聚糖可能是DN的一種潛在的治療物質(zhì)。此外,在我們的結(jié)果中,燕麥β葡聚糖干預(yù)組腸道菌群Alpha多樣性升高(Alpha 多樣性反映的是單個樣品內(nèi)部的物種多樣性,利用腸道菌群豐度和多樣性指數(shù)Chao1、Shannon來衡量,此數(shù)值越大說明樣品物種的豐度和多樣性越高[910])。在門水平上,燕麥β葡聚糖干預(yù)組厚壁菌門豐度相對上升,擬桿菌門豐度相對下降,且厚壁菌門/擬桿菌門比值升高。這提示燕麥β葡聚糖對DN大鼠的治療作用可能與改變其腸道菌群Alpha多樣性,厚壁菌門、擬桿菌門的豐度以及二者之間的比值有關(guān)。已有研究顯示[11],腸道菌群與2型糖尿病等代謝性疾病的發(fā)病密切相關(guān),其潛在機(jī)制與腸道菌群豐度和多樣性的變化有關(guān)。Larsen等[11]研究表明,厚壁菌門/擬桿菌門的比值和2型糖尿病的發(fā)生呈負(fù)相關(guān),且2型糖尿病患者厚壁菌門相對豐度降低,而擬桿菌門等豐度相對升高[1213],原因可能是厚壁菌門中多數(shù)細(xì)菌產(chǎn)生丁酸鹽菌[14]。丁酸鹽是一種短鏈脂肪酸鹽,它能促進(jìn)腸內(nèi)分泌L細(xì)胞分泌胰高血糖素樣肽1(GLP1)和肽YY(PYY),GLP1可改善胰島功能并調(diào)節(jié)胰島素的釋放,從而起到降低血糖的作用[15]。本研究通過構(gòu)建大鼠DN模型進(jìn)一步說明了腸道菌群在2型DN發(fā)生發(fā)展中所發(fā)揮的重要作用,并提供了燕麥β葡聚糖對DN大鼠具有保護(hù)作用的證據(jù)。
綜上所述,燕麥β葡聚糖能改善DN大鼠血糖及腎功能,其機(jī)制可能是調(diào)節(jié)腸道菌群豐富、多樣性以及厚壁菌門/擬桿菌門的比值?!?/p>
參考文獻(xiàn)
[1]Cooper M EPathogenesis,prevention,and treatment of diabetic nephropathy[J].Lancet,1998,352(9123):213219
[2]汪海波燕麥中β葡聚糖的化學(xué)結(jié)構(gòu)、溶液行為及降血糖作用的機(jī)制研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2004
[3]劉博,林親錄,羅非君燕麥葡聚糖的生理功能研究進(jìn)展[J].糧食與油脂,2016,29(2):15
[4]Koh A,De Vadder F,Kovatchevadatchary P,et alFrom dietary fiber to host physiology:shortchain fatty acids as key bacterial metabolites[J].Cell,2016,165(6):13321345
[5]任錦麗,等燕麥β葡聚糖對糖尿病大鼠腎病干預(yù)作用及機(jī)制[J].中國公共衛(wèi)生,2018,34(6):819822
[6]Hu J,Luo H,Wang J,et alEnteric dysbiosislinked gut barrier disruption triggers early renal injury induced by chronic high salt feeding in mice[J].Exp Mol Med,2017,49(8):e370
[7]Vaziri N D,et alChronic kidney disease alters intestinal microbial flora[J].Kidney Int,2013,83(2):308315
[8]Caporaso J G,Kuczynski J,Stombaugh J,et alQiime allows analysis of highthroughput community sequencing data[J].Nat Methods,2010,7(5):335336
[9]Kemp P F,Aller J YBacterial diversity in aquatic and other environments:what 16S rDNA libraries can tell us[J].FEMS Microbiol Ecol,2004,47(2):161177
[10]Harris K,Kassis A,Major G,et alIs the gut microbiota a new factor contributing to obesity and its metabolic disorders?[J].J Obes,2012,2012:879151
[11]Larsen N,Vogensen F K,van den Berg F W,et alGut microbiota in human adults with type 2 diabetes differs from nondiabetic adults[J].PLoS One,2010,5(2):e9085
[12]Karlsson F H,Tremarol V,Nookaew I,et alGut metagenome in European women with normal,impaired and diabetic glucose control[J].Nature,2013,498(7452):99103
[13]Sato J,et alGut dysbiosis and detection of “l(fā)ive gut bacteria” in blood of Japanese patients with type 2 diabetes[J].Diabetes Care,2014,37(8):23432350
[14]Zhao L,Zhang F,Ding X,et alGut bacteria selectively promoted by dietary fibers alleviate type 2 diabetes[J].Science,2018,359(6380):11511156
[15]武欣,李勇,徐美虹燕麥β葡聚糖與疾病關(guān)系[J].中國食物與營養(yǎng),2019,25(2):6872
[16]劉欣然,劉思奇,侯超,等燕麥低聚肽對糖尿病大鼠血糖的影響[J].中國食物與營養(yǎng),2018,24(4):4650