丁希勝，馬徐發(fā),2,#，余麗琴,2,*

1. 華中農(nóng)業(yè)大學(xué)水產(chǎn)學(xué)院，武漢 430070 2. 湖北省池塘養(yǎng)殖工程實驗室，武漢 430070

有機磷阻燃劑被廣泛添加在電子設(shè)備、紡織品和家具等日常用品中，用于避免易燃物被引燃和延遲火災(zāi)的蔓延[1-2]。作為主要的有機磷阻燃劑，磷酸三(1,3-二氯異丙基)酯(TDCIPP)通常添加在家具、兒童泡沫玩具和汽車裝潢物中[3]。作為一種新型的環(huán)境污染物，在地表水、自來水、室內(nèi)空氣和水生生物體中，甚至人體代謝物中都有一定濃度的TDCIPP被檢出[4-5]。據(jù)報道，國內(nèi)松花江水樣中TDCIPP濃度范圍是2.5～40 ng·L-1[6-7]。在我國青島、廈門和連云港附近水域采集的水樣中，TDCIPP的最高濃度達(dá)377 ng·L-1[8]。我國南京市10個自來水廠水樣中TDCIPP的平均含量為8.5 ng·L-1[9]。在我國珠江三角洲區(qū)域生活的淡水魚肌肉中TDCIPP的蓄積量達(dá)到251 μg·kg-1[10]。

近年來，大量的離體和活體實驗研究都表明了TDCIPP具有神經(jīng)毒性。例如，離體實驗結(jié)果表明，TDCIPP暴露降低了細(xì)胞的活力，提高了多種類型神經(jīng)細(xì)胞的凋亡率[11-13]，并干擾大鼠腎上腺嗜鉻細(xì)胞瘤細(xì)胞(PC12)的細(xì)胞分化和細(xì)胞遷移[13]。一項活體研究表明，TDCIPP暴露導(dǎo)致稀有鮈鯽(Gobiocyprisrarus)成魚體內(nèi)的神經(jīng)營養(yǎng)因子及其受體的基因表達(dá)顯著性降低[14]。在斑馬魚中，TDCIPP暴露可降低神經(jīng)遞質(zhì)(例如血清素和多巴胺)的水平，下調(diào)成魚和母體暴露后產(chǎn)下的子代仔魚(受精后5 d，5-day post-fertilization，5 dpf)中神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因的表達(dá)，包括髓鞘堿性蛋白(myelin basic protein,mbp)和突觸素Ⅱ(synapsin Ⅱa,syn2a)[15-16]。早期生命階段的研究表明，TDCIPP急性暴露會引起魚類顯著的行為改變，特別是仔魚游泳活動[17-21]，推測魚類游泳行為的變化可能是TDCIPP暴露的敏感終點。但是，這些研究均是基于較高劑量的暴露實驗，有關(guān)環(huán)境劑量TDCIPP對魚類游泳行為的影響尚未知。此外，生物體在自然生態(tài)系統(tǒng)中往往長達(dá)多代都暴露于環(huán)境污染物中。所以，有必要研究環(huán)境劑量TDCIPP多代暴露對斑馬魚子代仔魚神經(jīng)發(fā)育的影響。

在斑馬魚中，一些與胚胎/仔魚神經(jīng)發(fā)育相關(guān)的候選基因可以作為評價化合物神經(jīng)發(fā)育毒性的生物標(biāo)志物[22]。其中，神經(jīng)元特異性RNA結(jié)合蛋白(ELAV like neuron-specific RNA binding protein 3,elavl3)和神經(jīng)原素1 (neurogenin-related gene 1,ngn1)是神經(jīng)元發(fā)育的標(biāo)志基因[23-24]。α1微管蛋白(α1-tubulin)基因在神經(jīng)元軸突和樹突的發(fā)育和再生中起著非常重要的作用[25]，生長相關(guān)蛋白(growth associated protein 43,gap43)基因在神經(jīng)元中軸突再生和發(fā)育時高表達(dá)[26]，神經(jīng)生長因子(netrins)基因可以刺激斑馬魚胚胎中神經(jīng)元軸突的生長[27]，zn5是第二運動神經(jīng)元軸突的標(biāo)志基因[28-29]。音猬基因(shha)的功能主要是連接視網(wǎng)膜神經(jīng)調(diào)節(jié)細(xì)胞與脊髓軸突間的軸突索[30-31]。膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic protein, GFAP)是一種中間絲蛋白，在中樞神經(jīng)系統(tǒng)的星形膠質(zhì)細(xì)胞和放射狀神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞中高度表達(dá)，被作為星形膠質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)志物[32]。髓鞘堿性蛋白(myelin basic protein, MBP)是斑馬魚正在發(fā)育的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中軸突的髓鞘形成所必需的[33]。

本文以斑馬魚為研究模型，將3代斑馬魚暴露于環(huán)境劑量的TDCIPP，評價每一代的子代仔魚生長發(fā)育以及運動行為所受到的影響，并考察神經(jīng)發(fā)育標(biāo)志基因的表達(dá)變化，分析其與行為變化的相關(guān)性，探討影響行為的可能原因，評價TDCIPP多代暴露對其子代仔魚神經(jīng)發(fā)育的毒性效應(yīng)，研究結(jié)果對全面評價TDCIPP的環(huán)境和人類健康風(fēng)險具有重要的參考意義。

1 材料與方法(Materials and methods)

1.1 實驗試劑

磷酸三(1,3-二氯異丙基)酯(TDCIPP)純度>95%，購自東京化成工業(yè)株式會社(東京，日本)。用于儲存和稀釋TDCIPP的二甲基亞砜(DMSO)純度>99%，間氨基苯甲酸乙酯甲磺酸鹽(MS-222)純度98%，二者均購自Sigma-Aldrich公司(密西根州圣路易斯，美國)。Trizol試劑、PrimeScript?RT reagent試劑盒和SYBR?Real-Time PCR Master購自TaKaRa公司(大連，中國)。氯仿、異戊醇和無水乙醇均為國產(chǎn)分析純。

1.2 斑馬魚飼養(yǎng)及TDCIPP暴露實驗

實驗所用AB純系斑馬魚的養(yǎng)殖以及暴露實驗根據(jù)Yu等[34]提供的實驗方案實施。斑馬魚胚胎(野生型AB品系)購于中國科學(xué)院水生生物研究所。挑選發(fā)育正常的囊胚期胚胎(受精后2 h，2 hpf)，隨機分配至含有0、3、30和300 ng·L-1TDCIPP暴露液的培養(yǎng)皿中，每個皿中放置100顆胚胎，每個濃度設(shè)置3個平行，所有暴露組DMSO濃度為0.001% (V/V)。將培養(yǎng)皿置于光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，5 d后將孵化出的仔魚從培養(yǎng)皿中轉(zhuǎn)移到魚房中25 L的魚缸內(nèi)，每隔2天全部更換一次暴露液。控制水溫穩(wěn)定在(28±0.5) ℃，光照控制為14 h光照∶10 h黑暗，每日投喂2次豐年蟲。實驗中所投喂的豐年蟲均于實驗室中孵化，豐年蟲卵從天津豐年水產(chǎn)養(yǎng)殖有限公司購得。從F0胚胎開始暴露，持續(xù)暴露3代(F0代、F1代和F2代)，每一代暴露120 d，然后以1∶1的比例將雄魚和雌魚混在一起產(chǎn)卵，收集每一代的子代(F1代、F2代和F3代)，于暴露液中持續(xù)培養(yǎng)至5 dpf，統(tǒng)計F1代、F2代和F3代胚胎/仔魚3 dpf的孵化率、5 dpf的存活率、5 dpf的畸形率和5 dpf的體長。

1.3 斑馬魚仔魚運動行為分析

斑馬魚仔魚的游泳行為的檢測參照筆者之前的實驗方法[20]。簡單的說，針對每一代斑馬魚仔魚(F1代、F2代和F3代)，每個濃度每個平行缸取8尾仔魚進行游泳行為測定，采用ZebraLab行為圖像監(jiān)測器中Video-Track系統(tǒng)(View Point Life Sciences，蒙特利爾，加拿大)中的攝像頭記錄仔魚運動軌跡，從而分析獲得相關(guān)行為數(shù)據(jù)，定量分析5 dpf仔魚的游泳行為。測定之前，先將斑馬魚放入裝有TDCIPP暴露液的12孔板中適應(yīng)10 min，調(diào)節(jié)水溫保持在(28±0.5) ℃，每個孔中一條仔魚；然后進行40 min的光暗交替(5 min光照—5 min黑暗—5 min光照—5 min黑暗)刺激，每30秒采集一次仔魚運動頻率、行進距離和運動持續(xù)時間，試驗中保持安靜的環(huán)境。記錄的數(shù)據(jù)用在線Open Office.Org 2.4軟件分析。

1.4 實時熒光定量PCR (qRT-PCR)

斑馬魚仔魚的神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因的檢測參照筆者之前的實驗方法[35]。對F1代、F2代和F3代120 hpf的斑馬魚仔魚進行神經(jīng)相關(guān)基因表達(dá)分析。每個平行缸隨機取50尾仔魚(n=3)置于Trizol中，根據(jù)筆者之前的方法[33]進行總RNA的提取，采用分光光度計檢測260/280比值來確定cDNA的合成。使用在線引物設(shè)計軟件Primer 3 software (http://bioinfo.ut.ee/primer3-0.4.0/primer3/)進行設(shè)計，引物序列如表1所示。

1.5 數(shù)據(jù)分析方法

實驗數(shù)據(jù)采用SPSS 13.0軟件(SPSS, Chicago, IL, USA)處理分析。首先采用Kolmogorov-Smirnov方法對數(shù)據(jù)進行正態(tài)分布檢驗，對不符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)進行轉(zhuǎn)換使其符合正態(tài)分布。然后采用Levene’檢驗方法進行數(shù)據(jù)的方差齊性檢驗。暴露組和對照組采用單因素方差分析方法(one-way analysis of variance, ANOVA)中Tukey’s多重比較法進行數(shù)據(jù)的差異性檢驗。結(jié)果表示為3次獨立重復(fù)試驗數(shù)據(jù)的算術(shù)平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)。使用Spearman相關(guān)分析來檢驗仔魚在光暗刺激下的平均游泳速度和神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因表達(dá)之間的相關(guān)性，P<0.05為顯著性差異。

2 結(jié)果(Results)

2.1 TDCIPP多代暴露對各自子代5 dpf仔魚存活率和孵化率的影響

如表2所示，與對照組相比，經(jīng)環(huán)境劑量的TDCIPP (300 ng·L-1)暴露后，F(xiàn)0代斑馬魚的子代F1代的孵化率顯著性降低(P<0.05)，5 dpf子代的存活率也顯著性下降(P<0.01)(表2)，但其畸形率和體長無顯著性變化。隨著暴露代數(shù)的增加，與對照組相比，F(xiàn)2代和F3代仔魚的生長、存活率以及畸形率均無顯著性差異(表2)。

2.2 TDCIPP多代暴露對各自子代5 dpf仔魚神經(jīng)行為的影響

如圖1所示，在光暗周期刺激下，與對照組相比，在初始黑暗狀態(tài)下300 ng·L-1TDCIPP暴露組中F0代斑馬魚120 d后所產(chǎn)子代F1代仔魚的游泳速度顯著性降低(P<0.05)；在處于光照環(huán)境中時，3和300 ng·L-1TDCIPP暴露組仔魚的游泳速度均顯著性下降(P<0.05、P<0.05)；當(dāng)環(huán)境再次處于黑暗周期時，最高劑量(300 ng·L-1)暴露導(dǎo)致子代仔魚的游泳速度顯著性下降(P<0.05)。

表1 研究中的目的基因與引物序列Table 1 Genes and primers used in this study

表2 環(huán)境劑量磷酸三(1,3-二氯異丙基)酯(TDCIPP)多代暴露對F1代、F2代和F3代斑馬魚胚胎/仔魚的孵化率、畸形率、成活率和體長的影響Table 2 Effects of multigenerational exposure to tris (1,3-dichloro-2-propyl) phosphate (TDCIPP) at environmental concertation on the hatching rate, survival rate, malformation rate and body length of F1, F2 or F3 embryos/larvae

注：數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)，每個濃度3個平行樣，每個平行樣50條胚胎或仔魚。*P<0.05、**P<0.01表示暴露組與溶劑對照組相比具有顯著差異。

Note: The data are expressed as mean ±SD of three replicates (50 embryos/larvae per replicate); *P<0.05, **P<0.01 indicate significant difference detected between solvent control and TDCIPP exposure group.

如圖2所示，與對照組相比，300 ng·L-1TDCIPP暴露組中F1代120 d后所產(chǎn)子代F2代的游泳速度在黑暗刺激下顯著性降低(P<0.05)，在光照周期下無顯著性差異。

如圖3所示，與對照組相比，3、30和300 ng·L-1TDCIPP暴露組中F2代120 d后所產(chǎn)子代F3代的游泳速度在黑暗和光照刺激下均無顯著性變化。

2.3 TDCIPP多代暴露對各自子代5 dpf仔魚神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因表達(dá)的影響

檢測了F1代、F2代和F3代5 dpf仔魚在TDCIPP暴露下神經(jīng)細(xì)胞生長發(fā)育及分化相關(guān)的幾種基因的相對表達(dá)量(圖4)。如圖4(a)，在F1代中，與對照組相比，300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致神經(jīng)元標(biāo)志基因ngn1表達(dá)量顯著性升高(P<0.01)，3和300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致神經(jīng)元軸突再生和發(fā)育相關(guān)的基因α1-tubulin顯著性上調(diào)(P<0.001、P<0.01)，30 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致刺激軸突生長的netrin1b基因顯著性上調(diào)(P<0.05)，3和300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致運動神經(jīng)元軸突標(biāo)志基因zn5顯著性上調(diào)(P<0.05，P<0.05)，但星形膠質(zhì)細(xì)胞的標(biāo)志基因gfap在300 ng·L-1TDCIPP暴露下顯著性下調(diào)(P<0.01)。

圖1 F0代斑馬魚暴露于TDCIPP 120 d后對所產(chǎn)F1代5 dpf仔魚運動行為的影響注：(a)光暗周期刺激下斑馬魚仔魚的運動模式，(b)光暗周期刺激下的斑馬魚仔魚在各階段的平均游泳速率；數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)，每個濃度3個平行樣，每個平行樣8條仔魚；* P<0.05表示暴露組與溶劑對照組相比具有顯著差異。Fig. 1 Locomotor behavior of the 5 dpf larvae of F1 after F0 parental zebrafish exposed to TDCIPP for 120 dNote: (a) locomotor patterns in response to an alternating light change; (b) the average swimming speed of 5-min intervals for each light state (light or dark); the data are expressed as mean±SD of three replicates (8 larvae per replicate); * P<0.05 indicates significant difference detected between solvent control and TDCIPP exposure group.

圖2 F1代斑馬魚暴露于TDCIPP 120 d后對所產(chǎn)F2代5 dpf仔魚運動行為的影響注：(a)光暗周期刺激下斑馬魚仔魚的運動模式，(b)光暗周期刺激下的斑馬魚仔魚在各階段的平均游泳速率；數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)，每個濃度3個平行樣，每個平行樣8條仔魚；* P<0.05表示暴露組與溶劑對照組相比具有顯著差異。Fig. 2 Locomotor behavior of the 5 dpf larvae of F2 after F1 parental zebrafish exposed to TDCIPP for 120 dNote: (a) locomotor patterns in response to an alternating light change; (b) the average swimming speed of 5-min intervals for each light state (light or dark); the data are expressed as mean±SD of three replicates (8 larvae per replicate); * P<0.05 indicates significant difference detected between solvent control and TDCIPP exposure group.

圖3 F2代斑馬魚暴露于TDCIPP 120 d后對所產(chǎn)F3代5 dpf仔魚運動行為的影響注：(a)光暗周期刺激下斑馬魚仔魚的運動模式，(b)光暗周期刺激下的斑馬魚仔魚在各階段的平均游泳速率；數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)，每個濃度3個平行樣，每個平行樣8條仔魚。Fig. 3 Locomotor behavior of the 5 dpf larvae of F3 after F2 parental zebrafish exposed to TDCIPP for 120 dNote: (a) locomotor patterns in response to an alternating light change; (b) the average swimming speed of 5-min intervals for each light state (light or dark); the data are expressed as mean±SD of three replicates (8 larvae per replicate).

如圖4(b)所示，在F2代中，與對照組相比，最高劑量TDCIPP (300 ng·L-1)暴露導(dǎo)致神經(jīng)元標(biāo)志基因elavl3顯著性下調(diào)(P<0.05)，與神經(jīng)元軸突生長和再生相關(guān)的標(biāo)記基因gap43顯著性下調(diào)(P<0.05)，30和300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致shha基因顯著性下調(diào)(P<0.05、P<0.05)，3和300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致gfap基因表達(dá)量顯著性下調(diào)(P<0.05、P<0.05)。但對其他基因的表達(dá)均無顯著性影響。

如圖4(c)所示，在F3代中，與對照組比較，300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致gap43表達(dá)量顯著性下降(P<0.05)，3和300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致gfap基因表達(dá)量顯著性下降(P<0.05、P<0.05)，但對其他基因無顯著性影響。

2.4 相關(guān)分析

F1代、F2代和F3代5 dpf仔魚神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因表達(dá)的變化與各自游泳速度變化之間的相關(guān)性分析如表3所示。由Spearman相關(guān)性分析可知，F(xiàn)1代5 dpf仔魚在光暗刺激下的游泳速度與神經(jīng)元標(biāo)記基因ngn1、神經(jīng)元軸突生長密切相關(guān)的基因α1-tubulin和運動神經(jīng)元標(biāo)志基因zn5的表達(dá)顯著負(fù)相關(guān)。而F2代和F3代仔魚在光暗刺激下的游泳速度與神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因的表達(dá)都無顯著相關(guān)性。

表3 F1代、F2代和F3代5 dpf仔魚在光暗刺激下的平均游泳速度與神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因表達(dá)的Spearman rank相關(guān)系數(shù)Table 3 Spearman rank correlation coefficients between the average swimming speed of 5-min intervals for each light state (light or dark) and the expressions of genes related to neural development in the 5 dpf zebrafish larvae of F1, F2, F3

注：*0.05水平的顯著相關(guān)(雙尾)，** 0.01水平的顯著相關(guān)(雙尾)。

Note: * correlation is significant at the 0.05 level (two-tailed); ** correlation is significant at the 0.01 level (two-tailed).

圖4 環(huán)境劑量TDCIPP多代暴露對斑馬魚F1代(a)、F2代(b)和F3代(c)的5 dpf仔魚神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因的影響注：數(shù)據(jù)表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)，每個濃度3個平行樣，每個平行樣50條仔魚；*P<0.05、** P<0.01和*** P<0.001表示暴露組與溶劑對照組相比具有顯著差異。Fig. 4 Expressions of genes related to neural development in 5 dpf zebrafish larvae (F1 generation (a), F2 generation (b), F3 generation (c)) under multigenerational exposure to environmental concentration of TDCIPPNote: The data are expressed as mean±SD of three replicates (50 larvae per replicate); * P<0.05, ** P<0.01 and *** P<0.001 indicate significant difference detected between solvent control and TDCIPP exposure group.

3 討論(Discussion)

TDCIPP作為一種新型污染物，經(jīng)常在自然水體中檢測到(<μg·L-1)。筆者所在團隊前期的研究結(jié)果表明，環(huán)境劑量的TDCIPP暴露，會導(dǎo)致TDCIPP在斑馬魚母體內(nèi)蓄積[36-37]，并會傳遞到子代魚卵中[36]。此外，斑馬魚持續(xù)暴露于環(huán)境劑量的TDCIPP 2代后，會在第2代斑馬魚成魚體內(nèi)檢測到其蓄積[38]。目前，這些蓄積的TDCIPP是否會對斑馬魚子代持續(xù)產(chǎn)生不利影響還是未知的。早期發(fā)育階段對化合物暴露更為敏感，尤其是大腦發(fā)育階段[39]，斑馬魚早期發(fā)育階段神經(jīng)系統(tǒng)中專一表達(dá)的一些基因已證實可以作為發(fā)育神經(jīng)毒性的生物標(biāo)志[22]。此外，斑馬魚的游泳行為是在早期發(fā)育后期出現(xiàn)的一個較復(fù)雜的行為，需要化學(xué)遞質(zhì)傳遞和后腦神經(jīng)系統(tǒng)的輸出[40]，仔魚的運動行為也可用于指示神經(jīng)毒性效應(yīng)[41]。本實驗采用環(huán)境劑量TDCIPP對斑馬魚進行3代暴露實驗，探究其對子代斑馬魚仔魚生長發(fā)育和神經(jīng)發(fā)育的影響，以此來評估TDCIPP的生態(tài)毒性風(fēng)險效應(yīng)。

F0代暴露于環(huán)境劑量TDCIPP (300 ng·L-1) 120 d后所產(chǎn)子代F1代仔魚的孵化率和成活率均顯著性降低。這與筆者所在團隊前期的研究結(jié)果是類似的，斑馬魚暴露于5 000 ng·L-1TDCIPP 240 d導(dǎo)致子代仔魚的存活率下降、體長減小和生長發(fā)育受阻[36]。但在后面2代的持續(xù)暴露中，F(xiàn)2代和F3代仔魚的孵化率、存活率、畸形率以及體長均未受到顯著性影響，這些結(jié)果表明，隨著暴露代數(shù)的增加，TDCIPP對子代斑馬魚的發(fā)育毒性減弱。

環(huán)境劑量TDCIPP多代暴露對子代斑馬魚仔魚F1代和F2代的游泳行為具有顯著抑制作用，但是對F3代的游泳行為無顯著性影響。目前，有關(guān)環(huán)境劑量TDCIPP多代暴露對生物體影響的研究非常少，而其對神經(jīng)行為的影響更是鮮有報道。在筆者的實驗中，300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致F1代仔魚在黑暗刺激下的游泳速度均顯著性下降，暴露于3和300 ng·L-1TDCIPP的F1代仔魚在光照刺激下的行為也顯著性下降。類似的結(jié)果在之前的研究中也有報道，Wang等[16]將斑馬魚暴露于100 μg·L-1TDCIPP 3個月后，成魚的運動行為未受到顯著性影響，但所產(chǎn)子代仔魚的平均游泳速率在光照和黑暗下均顯著性下降。此外，筆者所在團隊前期的實驗結(jié)果表明，較高劑量TDCIPP (>300 μg·L-1)短期暴露會導(dǎo)致斑馬魚仔魚的游泳行為在最初黑暗適應(yīng)期的活動有所增加，而在光照時反應(yīng)有所減弱[20]，而濃度>100 μg·L-1的TDCIPP暴露不會影響仔魚的游泳行為[16,20]。在13 μg·L-1的TDCIPP暴露下，仔魚在最初黑暗適應(yīng)期的活動有所增加，而逃逸反應(yīng)有所減弱[42]。而有研究發(fā)現(xiàn)，暴露于較高濃度(1.353和2.413 mg·L-1；3和6 μmol·L-1)TDCIPP下，在光照和黑暗2種條件下斑馬魚仔魚的游泳速度均顯著性降低[17,21]。這些研究結(jié)果表明，TDCIPP暴露對斑馬魚仔魚的游泳行為具有顯著的干擾效應(yīng)，且母體TDCIPP暴露后的F1代仔魚比F0代成魚和仔魚都要敏感。對F2代仔魚，300 ng·L-1TDCIPP暴露導(dǎo)致在黑暗下的斑馬魚仔魚游泳速率顯著性下降，但在光照刺激下其運動速度無顯著性變化。但到F3代仔魚時，TDCIPP的持續(xù)暴露未引起斑馬魚的游泳行為的顯著性變化。結(jié)果表明，環(huán)境劑量的TDCIPP暴露會導(dǎo)致F1代仔魚的神經(jīng)發(fā)育毒性，但是TDCIPP持續(xù)多代暴露并未導(dǎo)致毒性的增強，反而隨著暴露代數(shù)的增加，斑馬魚仔魚對TDCIPP的敏感性呈現(xiàn)降低的趨勢。

有研究表明，斑馬魚運動行為的改變與運動神經(jīng)元的發(fā)育受影響相關(guān)[43-44]。為探究TDCIPP可能的神經(jīng)發(fā)育毒性機制，分析了仔魚神經(jīng)相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄水平，并將其與運動行為進行了相關(guān)性分析。在F1代仔魚中，神經(jīng)元標(biāo)記基因ngn1表達(dá)量顯著性升高，與神經(jīng)元軸突生長密切相關(guān)的基因α1-tubulin、netrin1b和zn5顯著性上調(diào)，這些基因表達(dá)的上調(diào)可能是對神經(jīng)元軸突損傷的一個補償性反饋。在之前的研究中，α1-tubulin表達(dá)量的上調(diào)被認(rèn)為是對化學(xué)品暴露后斑馬魚仔魚軸突生長受到的抑制作用的補償性反饋(如得克隆(DP)和2,2’,4,4’-四溴聯(lián)苯醚(BDE-47)暴露實驗)[43-44]。實際上，在筆者所在團隊的前期實驗中也發(fā)現(xiàn)，TDCIPP急性暴露會導(dǎo)致運動神經(jīng)元軸突的損傷，并伴隨著軸突生長相關(guān)基因α1-tubulin、netrin表達(dá)量的上調(diào)[20]。環(huán)境劑量TDCIPP暴露主要影響了F1代神經(jīng)元和軸突生長相關(guān)基因的表達(dá)，而對神經(jīng)遞質(zhì)乙酰膽堿酶活基因(acetylcholinesterase,ache)、髓磷脂堿性蛋白基因(myelin basic protein,mbp)等均無顯著性影響，相關(guān)性分析顯示，游泳速度的抑制與ngn1、α1-tubulin、gap43和zn5這4個基因的表達(dá)顯著負(fù)相關(guān)，這些結(jié)果表明，TDCIPP可能主要通過影響神經(jīng)元軸突的生長來導(dǎo)致游泳行為受阻，這與前期的實驗結(jié)果類似[20]。在F2代斑馬魚仔魚中，TDCIPP暴露導(dǎo)致神經(jīng)元標(biāo)志基因elavl3(編碼HuC)表達(dá)量顯著性下調(diào)，表明神經(jīng)發(fā)育受到了損傷。生長相關(guān)蛋白gap43基因的表達(dá)量也顯著性降低，gap43常常用作神經(jīng)損傷后再生時重新誘導(dǎo)軸突生長的標(biāo)志[20]，該基因的下調(diào)表明受損神經(jīng)的再生受到了影響。此外，星形膠質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記基因gfap以及連接視網(wǎng)膜和脊髓間的軸突索基因shha均顯著性下降。這些基因表達(dá)的下調(diào)表明TDCIPP暴露可能對神經(jīng)元、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞的數(shù)量和再生均產(chǎn)生了影響，表現(xiàn)出明顯的神經(jīng)發(fā)育毒性。然而，相關(guān)性分析表明，F(xiàn)2代仔魚游泳速度的降低與這些基因表達(dá)的下降無顯著相關(guān)性，提示TDCIPP可能不是通過影響神經(jīng)細(xì)胞的數(shù)量而影響魚的游泳行為。在F3代中，僅gap43和gfap這2個基因的表達(dá)量受到TDCIPP暴露的抑制，表明隨著暴露代數(shù)的增加，TDCIPP的神經(jīng)發(fā)育毒性在減弱，這與游泳行為以及生長發(fā)育的結(jié)果是一致的。

綜上所述，環(huán)境劑量TDCIPP暴露對斑馬魚子代仔魚具有神經(jīng)發(fā)育毒性，但是隨著暴露代數(shù)的增加TDCIPP的毒性效應(yīng)呈現(xiàn)減弱的趨勢。TDCIPP暴露導(dǎo)致F0代所產(chǎn)F1代仔魚的生長發(fā)育以及運動行為受到顯著的抑制，其對運動速度的影響可能主要源于神經(jīng)元軸突的生長受到了影響，表現(xiàn)為運動行為抑制與神經(jīng)軸突生長相關(guān)基因(ngn1、α1-tubulin和zn5)的表達(dá)量顯著負(fù)相關(guān)。繼續(xù)暴露后，F(xiàn)2代仔魚的生長發(fā)育不再受到顯著性影響，運動行為僅在最高劑量組黑暗處理下受到抑制，神經(jīng)發(fā)育相關(guān)基因(elavl3、gap43、gfap和shha)表達(dá)量顯著下降，但運動的抑制與基因表達(dá)無顯著相關(guān)性。暴露至F3代仔魚，其生長發(fā)育和神經(jīng)行為均不再受影響，僅gap43和gfap這2個基因表達(dá)量下調(diào)。表明隨著暴露代數(shù)的增加，TDCIPP的神經(jīng)發(fā)育毒性效應(yīng)降低。筆者首次研究了生物體多代處于環(huán)境劑量TDCIPP暴露后的毒性效應(yīng)，為TDCIPP的生態(tài)風(fēng)險評價提供了理論依據(jù)。在進一步的研究中，將結(jié)合化學(xué)分析和分子生物學(xué)手段，開展深層次的研究，力圖從化合物在生物體內(nèi)的蓄積、代謝以及生物體的解毒代謝等多方面來揭示TDCIPP多代持續(xù)暴露后毒性減弱的機制。