丁萌萌,賈儒林,趙平
(1.中國醫(yī)科大學附屬盛京醫(yī)院麻醉科,沈陽 110004;2.中國刑事警察學院法醫(yī)系,沈陽 110854)
椎間盤退行性病變 (disc degeneration disease,DDD) 是一個或多個椎間盤退化引起的疾病,是現(xiàn)代社會最重要的公共健康問題之一[1]。椎間盤變性是細胞外基質蛋白 (extracellular matrix protein,ECM) 降解和破壞的慢性過程。一方面,DDD出現(xiàn)細胞外基質降解,導致椎間盤結構破壞[2]。另一方面,ECM的降解產(chǎn)物可能引發(fā)或進一步促使椎間盤退變和腰痛相關的炎癥反應[3]。Tenascin-C (TNC) 是一種ECM,在分化、疾病發(fā)展或損傷時表達[4],它在癌癥與炎癥中的作用已被廣泛研究[5-7],但在DDD中的研究仍是空白。DDD被普遍認為是某種炎性細胞因子,如白細胞介素 (interleukin,IL) -1增加了基質金屬蛋白酶 (matrix metalloproteinases,MMP) 的表達,導致椎間盤ECM的丟失,從而使椎間盤發(fā)生退行性病變[8]。許多文獻[9-12]已經(jīng)報道炎性細胞因子可以促進TNC在多種細胞中的表達。鑒于ECM與DDD的相互作用,TNC或許與兩者存在某種聯(lián)系,本研究對TNC在DDD中的作用及其機制進行探討。
1.1.1 動物:Balb-c小白鼠36只,雌性,8~12 周齡,由Jackson Laboratory提供。所用的實驗動物、所有動物操作和體內(nèi)實驗均獲得弗吉尼亞大學動物保護與使用研究委員會批準。
1.1.2 細胞:人髓核細胞第2~6代,小鼠椎間盤細胞第2~6代。
1.1.3 主要儀器與試劑:IL-1β (美國Abcam公司) ;TRIzol reagent (美國Sigma公司) ;MMP activety assay kit(美國Anaspec公司) 兔抗人Tenascin-C抗體;biotinlyza goat anti rabbit IgG抗體;山羊抗兔抗體680;bio-rad RT-PCR;bio-rad iscript;odyssey membrane scan;細胞培養(yǎng)箱、恒溫高速離心機 (美國Thermo公司)。
1.2.1 人髓核細胞與小鼠椎間盤細胞分離與培養(yǎng):所有涉及人體材料的實驗均獲得美國弗吉尼亞大學衛(wèi)生科學研究機構審查委員會批準。按照美國國家衛(wèi)生研究機構對手術廢物用于人體項目研究的規(guī)定,獲取的人椎間盤樣本來自于弗吉尼亞大學醫(yī)院接受脊柱側彎椎間盤切除術手術治療的患者。將人髓核組織分離,并切成碎末;小鼠實施安樂死,取出脊柱,分離椎間盤,剪碎。用含有0.5%膠原蛋白酶/胰蛋白酶的培養(yǎng)液在37 ℃消化30 min,放入15%FBS和1%青霉素-鏈霉素的細胞培養(yǎng)液 (DMEM/F12) 中繼續(xù)培養(yǎng),孵育在具有5%CO2,37 ℃的潮濕培養(yǎng)箱中。細胞第2~6代使用于此研究。
1.2.2 樣品收集:人髓核細胞和小鼠椎間盤細胞培養(yǎng)4~5 d (根據(jù)以往最佳培養(yǎng)時間)。在炎性環(huán)境TNC水平表達的實驗中,IL-1β組加入IL-1β 10 ng/mL培養(yǎng)24 h;對照組不加IL-1β,為空白對照。在炎性環(huán)境TNC的表達水平隨時間變化實驗中,IL-1β組加入IL-1β 10 ng/mL培養(yǎng)4、8、12、24和48 h;對照組不加IL-1β組,為空白對照。根據(jù)TNC的時間變化選取24 h作為后續(xù)實驗中IL-1β的作用時間。完成刺激時間后收集細胞培養(yǎng)液,用TRIzol reagent提取RNA,用細胞裂解液裂解細胞提取蛋白進行后續(xù)實驗。
1.2.3 實時PCR:根據(jù)產(chǎn)品說明使用iScript cDNA synthesis kit (Bio-Rad Laboratories,美國) 將相同質量的RNA 逆轉合成互補DNA (cDNA)。實時逆轉錄聚合酶鏈反應術采用RT^2 SYBR Green Fluo FAST Mastermix (Qiagen Sciences,美 國) 在iQ5 multicolor real-time PCR Detection System (Bio-Rad Laboratories,美國) 上進行。檢測靶向基因包括TNC、膠原蛋白Ⅱ、蛋白聚糖、MMP-9和MMP-13,使用18s來標準化。
1.2.4 Western blotting:收集的細胞裂解液、細胞培養(yǎng)基在bio-rad mini protein tetra system儀器上完成Western blotting檢測。一抗 (兔抗人Tenascin-C 抗體)1 ∶500 稀釋4 ℃過夜,二抗 (山羊抗兔抗體680)1 ∶1 000稀釋,室溫孵育1 h,緩慢搖動。掃描蛋白膜。
1.2.5 酶譜法:收集的細胞培養(yǎng)基電泳結束后,加入staining buffer搖晃1 h,destained buffer脫色3 h,使用Precision Plus Protein Standard (Bio-Rad,美國) 獲取影像,并使用Image J分析。
1.2.6 MMP活性檢測:根據(jù)試劑盒說明對樣本中MMP的活性進行檢測。根據(jù)反應物濃度與相對的熒光強度制定標準曲線,根據(jù)標準曲線判斷合適的反應時間,測定細胞培養(yǎng)液中MMP活性的表達水平。
1.2.7 TNC預處理后培養(yǎng)人髓核細胞:使用TNC 提前預處理的培養(yǎng)盤培養(yǎng)人髓核細胞,分為controlcollagen coated,IL-1β-collagen coated,control-TNC coated和IL-1β-TNC coated 4組。后續(xù)給予刺激方式與時間同1.2.2。
1.2.8 體內(nèi)實驗:手術組開腹暴露小鼠的椎間盤,用27 g針頭針刺小鼠的椎間盤 (L3~4) 后關腹;對照組只暴露椎間盤不針刺椎間盤。術后1、3、7 d對小鼠實施安樂死,收取小鼠的椎向盤 (L2~5),進行石蠟包埋,石蠟切片,進行TNC的免疫組化染色。
2.1.1 Western blotting檢測人髓核細胞TNC蛋白的表達:與對照組 (1.000±0.094 9) 相比,IL-1β刺激的人髓核細胞TNC蛋白表達顯著增高 (3.879±0.583 2,P<0.05)。見圖1。
2.1.2 實時PCR檢測小鼠椎間盤細胞TNCmRNA表達:與對照組 (1.170±0.122 3) 相比,IL-1β刺激的小鼠椎間盤細胞TNCmRNA水平表達顯著增高(14.300±0.443 2,P< 0.05)。
圖1 炎性環(huán)境下TNC蛋白水平在人髓核細胞中的表達變化Fig.1 Changes in TNC protein expression in human nucleus pulposus cells under inflammatory conditions
2.1.3 實時PCR檢測小鼠椎間盤細胞膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖 mRNA的表達水平:與對照組 (1.000±0.038)相比,IL-1β刺激的小鼠椎間盤細胞 膠原蛋白ⅡmRNA水平表達顯著降低 (0.155±0.044,P< 0.05)。與對照組 (1.000±0.090) 相比,IL-1β刺激的小鼠椎間盤細胞蛋白聚糖 mRNA水平表達顯著降低 (0.074±0.022,P< 0.05)。
2.2.1 實時PCR檢測人髓核細胞TNC、膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖 mRNA水平在不同時間的表達:在IL-1β介導的炎性刺激下,與對照組相比,TNCmRNA水平在12 h達到峰值 (P< 0.05),在24 h開始下降;膠原蛋白Ⅱ mRNA水平在24 h開始顯著降低 (P< 0.001) ;蛋白聚糖 mRNA水平在12 h開始顯著降低 (P< 0.001)。見表1。
2.2.2 實時 PCR 檢測小鼠的椎間盤細胞TNC、膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖 mRNA水平在不同時間的表達:與人髓核細胞PCR 結果相似,小鼠椎間盤細胞在IL-1β介導的炎性刺激下,與對照組相比,TNCmRNA水平在8 h開始增高 (P< 0.05),12 h達到峰值 (P<0.05),在24 h開始下降;膠原蛋白Ⅱ mRNA水平在24 h開始顯著降低 (P< 0.001) ;蛋白聚糖 mRNA水平在24 h開始顯著降低 (P< 0.001)。見表2。
表1 人髓核細胞中不同時間TNC,膠原蛋白Ⅱ,蛋白聚糖 mRNA表達的變化Tab.1 TNC,collagenⅡ,and aggrecan mRNA expression in human NP cells over time
表2 小鼠椎間盤細胞中不同時間TNC、膠原蛋白Ⅱ、蛋白聚糖 mRNA表達的變化Tab.2 TNC,collagenⅡ,and aggrecan mRNA expression in mouse disc cells over time
2.3.1 實時PCR檢測小鼠椎間盤細胞MMP-9/MMP-13mRNA的表達:與對照組 (1.022±0.028) 相比,IL-1β刺激的小鼠椎間盤細胞MMP-9mRNA水平表達顯著增高 (5.430±0.526,P< 0.05)。與對照組 (1.018±0.035) 相比,IL-1β刺激的小鼠椎間盤細胞MMP-13mRNA水平表達顯著增高 (16.393±0.922,P< 0.05)。
2.3.2 酶譜法測定人髓核細胞培養(yǎng)液MMP的活性變化:與對照組相比,IL-1β刺激的人髓核細胞MMP-2的活性在8h開始增高(1.910±0.520,P<0.05) ;在24 h達到峰值 (13.078±0.888,P< 0.001)。見圖2。
圖2 炎性環(huán)境下MMP-2在人髓核細胞培養(yǎng)液中的活性變化Fig.2 Changes in MMP activity in human nucleus pulposus cells medium under inflammatory conditions
2.3.3 酶譜法測定小鼠椎間盤細胞培養(yǎng)液中MMP的活性變化:與對照組相比,IL-1β刺激小鼠椎間盤細胞后MMP-2 (26.943±21.183),MMP-9 (95.312±3.889)的表達顯著增高 (P< 0.001)。見圖3。
圖3 炎性環(huán)境下MMP-2在小鼠椎間盤細胞培養(yǎng)液中的活性變化Fig.3 The expression of MMP-2 activity changes in mouse disc degeneration cells medium under inflammatory environment
2.3.4 MMP活性檢測測定小鼠椎間盤細胞培養(yǎng)液中MMP的活性變化:與對照組相比,IL-1β刺激小鼠椎間盤細胞后MMP-2和MMP-9的活性顯著增高 (P<0.001)。見表3。
表3 MMP 活性檢測結果Tab.3 MMP activity assay results
實時PCR結果顯示,加入外源性TNC 后,膠原蛋白Ⅱ的表達由降低變?yōu)轱@著高于對照組 (P<0.001) ;蛋白聚糖的表達由降低變?yōu)榕c對照組無統(tǒng)計學差異 (P> 0.05)。見表4。
酶譜法檢測結果顯示,與IL-1β-collagen coated組相比,IL-1β-TNC coated組MMP-9和MMP-2的水平明顯增高 (P< 0.001)。見圖4、表5。
對照組小鼠椎間盤結構完整,纖維環(huán)結構排列整齊,髓核組織紅染,細胞核藍染,為正常椎間盤;與對照組相比,手術組椎間盤結構破壞,纖維環(huán)結構不規(guī)則,髓核組織丟失,為病變的椎間盤,見圖5。免疫組化染色可見,與對照組相比,TNC在手術組的小鼠椎間盤中表達明顯增高 (P< 0.05)。
表4 給予外源性TNC后膠原蛋白 II和蛋白聚糖 mRNA表達水平的變化Tab.4 Changes in collagen II and aggrecan mRNA expressions after exogenous TNC administration
圖4 給予外源性TNC后人髓核細胞中MMP的活性變化Fig.4 Changes in MMP activity after exogenous TNC administration
正常的椎間盤中,分子的合成與降解處于平衡狀態(tài)。當降解的速度大于合成的速度時,椎間盤的組織與生物功能就會降低[13]。IL-1β是一種炎性細胞因子,常用于模擬DDD體外實驗[14-15]。為了驗證TNC在DDD中的表達,本研究給予人和小鼠椎間盤細胞IL-1β刺激,并采用Western blotting、實時PCR和免疫組化染色檢測TNCmRNA和蛋白水平的表達情況。結果顯示,在人與小鼠的椎間盤細胞中,TNC的蛋白與mRNA水平在IL-1β介導的炎性刺激下表達增高。膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖的mRNA水平降低。本研究結果顯示,IL-1β介導的炎性刺激下,膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖表達降低的時間在TNC表達水平降低開始后,TNC的降低也許與椎間盤細胞病變的發(fā)生有著某種聯(lián)系。
DDD發(fā)生時,MMP降解ECM,使其含量變少,導致椎間盤變性,被降解的外基質蛋白產(chǎn)物又進一步激活MMP的活性[16]。MMP-2,MMP-9主要降解蛋白聚糖;MMP-3,MMP-13主要降解膠原蛋白。目前的研究[17-19]已經(jīng)證明,在IL-1β介導的炎性刺激下,椎間盤細胞的MMP活性增高。本研究結果顯示,IL-1β介導的炎性刺激下,MMPmRNA水平及活性增高。為了驗證TNC對DDD的作用且與MMP表達的關系,給予外源性的TNC蛋白,觀察膠原蛋白Ⅱ,蛋白聚糖,MMP活性的水平。結果顯示,外源性TNC對膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖mRNA水平有保護作用。在給予外源性TNC后,MMP的活性降低,這也許是膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖mRNA水平表達增高的原因。免疫組化染色可見TNC在手術組的小鼠椎間盤及周圍組織均有明顯的陽性結果。
表5 給予外源性TNC后MMP的活性變化Tab.5 Changes in MMP activity after exogenous TNC administration
圖5 免疫組化檢測針刺小鼠椎間盤術后1、3、7 d TNC在小鼠椎間盤及周圍的表達水平 ×20Fig.5 TNC expression levels in and around the intervertebral discs in mice detected by immunohistochemical staining 1,3,and 7 days after acupuncture ×20
本研究驗證了在IL-1β介導的炎性刺激下,人和小鼠的椎間盤細胞及小鼠的椎間盤及周圍組織 (體外實驗與體內(nèi)實驗) TNC表達均增高,在給予外源性TNC后,MMP的活性降低,膠原蛋白Ⅱ和蛋白聚糖的表達升高,這可能是TNC調節(jié)MMP活性,從而對退變的椎間盤細胞起到保護作用,但以何種機制及何種通路發(fā)揮作用還需進一步研究。